Изобретение относится к биотехнологии и может найти применение в ветеринарии.
Изобретение может быть использовано для профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний сельскохозяйственных и домашних животных и птиц. В большинстве случаев эти болезни являются инфекционными и вызываются энтеробактериями разных видов и некоторыми видами вирусов. Часто эти заболевания протекают в виде смешанных вирусно-бактериальных инфекций. Тяжелыми желудочно-кишечными заболеваниями являются также дисбактериозы.
Известен способ производства бактериального препарата для профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний (в частности - колибактериоза) сельскохозяйственных животных, включающий выращивание клеток Escherichia coli BKM CR-322D при рН 7,0-7,5 на питательной среде, содержащей бульон Хоттингера, глюкозу, минеральные соли и воду, с получением бактериальных клеток, последующее смешивание полученных клеток с сахарозожелатиновой средой и лиофильную сушку приготовленной смеси (Патент СССР №1819428, C 12 N 15/30,1990) [1] - прототип способа по п.1.
Однако данным известным способом получают небольшую биомассу клеток, а приготовленный из них препарат в процессе хранения теряет свою биологическую активность.
Известна питательная среда для выращивания клеток E.coli BKM CR-322D, содержащая бульон Хоттингера, глюкозу, MgSО4, соль фосфорной кислоты и воду [1] - прототип питательной среды.
Однако выход клеток при их выращивании на данной известной среде невысокий.
Известен бактериальный препарат, содержащий лиофильно высушенную смесь клеток E.coli BKM CR-322D и сахарозожелатиновой среды [1] - прототип бактериального препарата.
Однако сохранность жизнеспособных клеток при хранении данного известного препарата невысокая.
Известен способ профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний животных, включающий назначение им перорального приема клеток Escherichia coli BKM CR-322D [1] - прототип способа по п.10.
Однако данный известный способ апробирован только на телятах, а назначаемые дозы бактериального препарата, необходимые для профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний у других животных и птиц, не указаны.
Техническим результатом, достигаемым при реализации настоящей группы изобретений, является повышение выхода клеток E.coli BKM CR-322D при их выращивании, повышение сохранности жизнеспособных клеток при хранении приготовленного из них бактериального препарата, расширение возможностей бактериального препарата для профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний у сельскохозяйственных и домашних животных и птиц.
Указанный технический результат достигается тем, что в способе получения бактериального препарата для профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний сельскохозяйственных и домашних животных и птиц, предусматривающем выращивание клеток Escherichia coli CR-322D на питательной среде, содержащей бульон Хоттинтера, глюкозу, сульфат марганца, соль фосфорной кислоты, воду при рН 7,0-7,5, смешивание полученной биомассы с сахарозожелатиновой средой и лиофильную сушку, отличительной особенностью является то, что в состав питательной среды дополнительно вводят дрожжевой экстракт, хлорид натрия, в качестве соли фосфорной кислоты она содержит гидрофосфат калия, в качестве воды - воду водопроводную, глюкозу вводят дробно в процессе выращивания клеток, который ведут при температуре 30-31°С и сопровождают его стабилизацией уровня рН, постоянным перемешиванием и аэрацией, завершают процесс через 10-12 час, а лиофильной сушке подвергают смесь полученной культуральной жидкости с сахарозожелатиновой средой в соотношении 3:1.
Предпочтительно используют сахарозожелатиновую среду, содержащую сахарозу, желатин и воду дистиллированную при их следующем соотношении, мас.%:
сахароза 39-41
желатин 5-6
вода дистиллированная остальное
Аэрацию питательной среды рекомендуется проводить путем подачи в нее стерильного воздуха в количестве 1-2 л/мин на 1 л среды.
Перемешивать питательную среду мешалкой целесообразно со скоростью 300-500 об./мин.
Завершают процесс выращивания клеток при достижении их содержания в культуральной жидкости не ниже 30·109 кл./мл,
Лиофильную сушку рекомендуется проводить до содержания влаги в полученном препарате не выше 3%.
Емкость с высушенным препаратом предпочтительно заполнить азотом.
Достигается указанный технический результат также тем, что питательная среда для выращивания клеток Escherichia coli CR-322D, содержащая бульон Хоттингера, глюкозу, сульфат марганца, соль фосфорной кислоты и воду, дополнительно содержит дрожжевой экстракт, хлорид натрия, в качестве соли фосфорной кислоты - гидрофосфат калия, в качестве воды - воду водопроводную при следующем соотношении компонентов, мас.%:
бульон Хоттингера 18-23
глюкоза 0,35-0,45
дрожжевой экстракт 0,45-0,55
сульфат марганца 0,055-0,065
гидрофосфат калия 0,15-0,16
вода водопроводная остальное
Указанный технический результат достигается также тем, что бактериальный препарат для профилакгики и лечения желудочно-кишечных заболеваний сельскохозяйственных и домашних животных и птиц характеризуется тем, что представляет собой лиофильно-высушенную биомассу клеток Escherichia coli CR-322D, полученную способом по п.1 формулы изобретения.
Указанный технический результат достигается также тем, что способ профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний сельскохозяйственных и домашних животных и птиц, включающий назначение им перорального приема клеток Escherichia coli CR-322D, имеет ту отличительную особенность, что клетки Escherichia coli CR-322D используют в виде бактериального препарата по п.9 формулы изобретения в дозе 0,25-42 условных единиц на прием, принимая за 1 условную единицу 1 млрд микробных клеток.
Указанный технический результат достигается также за счет того, что новорожденным телятам назначают прием клеток Escherichia coli CR-322D в первые 1,5-2,5 часа жизни, а затем на 4-5-е сутки жизни в дозе 38-42 условных единиц.
Телятам при заболевании назначают ежедневный прием клеток Escherichia cоli CR-322D 2 раза в сутки в дозе 38-42 условных единиц до клинического выздоровления.
Новорожденным поросятам назначают прием клеток Escherichia coli CR-322D в первые 4-6 час. жизни, затем на 6-7 дни жизни в дозе 5-7 условных единиц, а в возрасте 2-3 недели - в дозе 6-8 условных единиц.
Поросятам-отъемышам назначают прием клеток Escherichia coli CR-322D за 4-5 дней до отъема, в день отъема и через 4-5 дней после отъема в дозе 18-22 условных единиц.
Собакам при дисбактериозах назначают прием клеток Escherichia coli CR-322D в дозе 6-40 условных единиц 2 раза в день за 1,5-2,0 часа до приема корма.
Кошкам при дисбактериозах назначают прием клеток Escherichia coli CR-322D в дозе 3-5 условных единиц 2 раза в день.
Циплятам в 1-5 дни жизни назначают ежедневный прием клеток Escherichia coli CR-322D в дозе 0,25-0,35 условных единиц 2 раза в день, затем в 20-25 и в 40-45 дни жизни - по 1,8-2,2 условных единиц.
Собственные наблюдения показали, что выход клеток Escherichia coli CR-322D можно повысить, если в питательную среду для их выращивания ввести дрожжевой экстракт, изменить качественное и количественное соотношение входящих в ее состав солей, а глюкозу вводить в нее дозированно, по мере инкубации, что исключает подкисление среды и способствует интенсификации наращивания биомассы клеток.
Установлено, что выращивать клетки E.coli BKM CR-322D на новом составе питательной среды необходимо при постоянном перемешивании ее и аэрации, температура инкубации должна быть 30-31°С, а рН среды следует поддерживать в пределах 7,0-7,5 путем периодического добавления в нее 40%-ного водного раствора NaOH.
Сохранность жизнеспособных клеток E.coli BKM CR-322D, подвергнутых лиофильной сушке, можно повысить, если смешивать с защитной сахарозожелатиновой средой не клетки Е.coli BKM CR-322Д, отделенные от питательной среды, как в известном способе-прототипе [1], а содержащую их культуральную жидкость. Это позволяет обогатить состав лиофильно высушенного препарата биологически активными компонентами, сохранившимися в питательной среде после инкубации на ней клеток E.coli BKM CR-322D. Сохранность жизнеспособных клеток в препарате повышается также за счет его хранения в атмосфере азота.
Ниже приведены примеры реализации группы изобретений.
Пример 1.
Для приготовления препарата использовали штамм Escherichia coli М17(р74), полученный в Институте молекулярной генетики РАН [1], который был задепонирован под номером BKM CR-322D. Ампулу с лиофилизованной культурой E.coli BKM CR-322D вскрыли в асептических условиях, к содержимому ампулы добавили 1-2 мл мясопептонного бульона, полученную суспензию клеток высеяли во флаконы с мясопептонным бульоном и инкубировали при 30°С в течение 18 час.
Полученную культуру высеяли в пробирки со скошенным мясопептонным агаром с канамицином и инкубировали 18 час при 30°С. Выросшие клетки пересеяли в колбу со 100 мл мясопептонного бульона и инкубировали 7 час на качалке при 30°С. Полученную маточную культуру использовали для получения посевного материала. В бутыли с 2 л мясопептонного бульона засеяли маточную культуру в количестве 2% от объема питательной среды в колбе. Засеянные бутыли инкубировали при 30°С на качалке в течение 10-16 час. Выросшую культуру вносили в ферментатор в количестве 2,5% от объема содержащейся в нем питательной среды следующего состава, маc.%:
бульон Хоттингера 18
глюкоза 0,35
дрожжевой экстракт 0,45
MgSO4 0,055
К2НРO4 0,15
NaCl 0,45
вода водопроводная остальное (до 100%).
Среда содержала 125 мг % аминного азота. Культуру инкубировали при температуре 30°С, при перемешивании мешалкой со скоростью 300 об/мин и при аэрации, осуществляемой путем подачи в питательную среду стерильного воздуха в количестве 1 л/мин на 1 л среды.
Глюкозу вводили в среду в виде 40%-ного раствора. Всего добавляли 1% от объема культуральной жидкости 40%-ного раствора стерильной глюкозы.
Через час после начала культивирования добавляли 0,05% глюкозы, через 3 часа - 0,1% глюкозы, через 4 часа - 0,1% (конечная концентрация), после 4-5 часов выращивания глюкозу добавляли до конечной концентрации от 0,8 до 1,2%.
В процессе культивирования рН среды поддерживали на уровне 7,0-7,5, периодически подавая в нее 40%-ный раствор NaOH. После 12 час. инкубации наблюдали прекращение роста популяции. Количество бактериальных клеток в полученной культуральной жидкости составляло 30·109 бак.тел/мл по оптической плотности, измеряемой с помощью ФЭК. Для сравнения: при выращивании клеток E.coli ВКМ СК-322Д в соответствии со способом -прототипом [1] получали культуральную жидкость, содержащую 7-10·109 бак.тел/мл.
По окончании процесса культивирования температуру культуральной жидкости снизили и поддерживали на уровне 16°С путем подачи в рубашку ферментатора оборотной воды с температурой 9-10°С.
Затем в ферментатор с охлажденной взвесью при работающей мешалке подали защитную сахарозожелатиновую среду, приготовленную следующим образом: с помощью 20%-ного раствора NaOH довели рН дистилированной воды до 7,0-7,1. Воду довели до кипения, добавили в нее 5% раствор желатина, с помощью 20%-ного раствора NaOH довели рН полученного раствора до 8,5 и прокипятили 15 мин. Затем к полученному раствору добавили 40% сахарозы. Полученный раствор содержал 5% желатина и 40% сахарозы. После фильтрования и стерилизации полученную сахарозожелатиновую среду использовали в качестве защитной среды. Культуральную жидкость и защитную среду смешивали в соотношении 3:1. После 15 мин перемешивания полученную смесь передали на стадию сублимационной (лиофильной) сушки.
Смесь разлили по 4-10 мл в стерильные флакончики емкостью 20 мл, подвергли замораживанию при -35°С в течение 20 час.
Лиофилизацию осуществляли в вакуум-сушильном аппарате, после герметизации которого из него откачали воздух до вакуума 5·10-2 мм рт.ст.
Высушенная масса имела влажность 3%. По окончании высушивания отключили вакуумный насос и в аппарат через фильтры подали очищенный азот.
Перед укупоркой флаконы заполнили азотом, закрыли стерильными резиновыми пробками, которые затем зафиксировали металлическими колпачками.
Препарат представлял собой сухую пористую массу желтовато-белого цвета.
Пример 2.
По методике примера 1 получили биомассу клеток E.coli BKM CR-322D, которую ввели в питательную среду следующего состава, маc.%:
бульон Хоттингера 23
глюкоза 0,45
дрожжевой экстракт 0,55
MgSO4 0,065
К2НРO4 0,16
NaCl 0,55
вода водопроводная остальное,
содержание аминного азота в среде - 155 мг %.
Инкубацию вели при температуре 31°С. В питательную среду дозированно подавали глюкозу в виде 40%-ного раствора (см. пример 1). Сосуд постоянно перемешивали мешалкой со скоростью 500 об/мин и постоянно вводили стерильный воздух в количестве 2 л/мин на 1 л среды. Процесс завершили через 10 час при содержании в культуральной жидкости 40·109 бак.тел/мл.
Полученную культуральную жидкость (3 части) смешали с 1 частью защитной сахарозожелатиновой среды следующего состава, маc.%, так, чтобы конечная концентрация в сырье была:
сахароза 10,5
желатин 2
вода остальное (до 100%).
Влажность лиофильно высушенного препарата составляла 2,5%.
Пример 3. Для профилактики желудочно-кишечных заболеваний телят им с первой выпойкой молозива, но не позднее чем в первые 2 часа жизни, а затем на 4-е сутки жизни назначали по 40 условных единиц суспензии клеток Escherichia coli BKM CR-322D в виде бактериального препарата, приготовленного по методике примера 1. Случаев заболевания телят не наблюдалось.
Пример 4. При выявлении в хозяйстве случаев желудочно-кишечных заболеваний телят им назначали прием 2 раза в сутки по 40 условных единиц бактериального препарата, приготовленного в соответствии с примером 1. Лечение проводилось в течение 3 дней до полного клинического выздоровления. Случаев рецидива не выявлено.
Пример 5. Поросятам в первые 4-6 часов жизни и затем на 7-й день жизни выпаивали по 6 условных единиц бактериального препарата, приготовленного в соответствии с примером 1. Для профилактики отечной болезни поросятам-отъемышам скармливали по 20 условных единиц препарата, приготовленного по примеру 1, за 5 дней до отъема, в день отъема и через 5 дней после отъема - по 20 условных единиц. Случаи желудочно-кишечных заболеваний и отечной болезни поросят не выявлены.
Пример 6. Для профилактики желудочно-кишечных заболеваний цыплятам 1-5 дней жизни с кормом или с водой давали по 0,3 условных единицы бактериального препарата, приготовленного по примеру 1, ежедневно. Затем им давали по 2 условных единицы в периоды 20-25 дней жизни и 40-45 дней жизни. Желудочно-кишечных заболеваний не наблюдали.
Пример 7. Собакам при дисбактериозе выпаивали бактериальный препарат, приготовленный по примеру 1, - 2 раза в день за 1,5-2 часа до приема корма в количестве 6-40 условных единиц до полного клинического выздоровления (2-5 дней).
Пример 8. Кошкам при дисбактериозе выпаивали бактериальный препарат, приготовленный по примеру 1, - 2 раза в день за 1,5-2 часа до приема корма по 3-5 условных единиц до полного клинического выздоровления (2-5 дней).
Таким образом, группа изобретений позволяет повысить выход клеток E.coli BKM СR-322Д при их выращивании на питательной среде, приготовить лиофильно-высушенный бактериальный препарат, повысить его сохранность при хранении и повысить эффективность профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний сельскохозяйственных и домашних животных и птиц.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
ПЛАЗМИДА p74 , ОПРЕДЕЛЯЮЩАЯ СИНТЕЗ МИКРОЦИНА И ШТАММ БАКТЕРИЙ ESCHERICHIA COLI, ОБЛАДАЮЩИЙ АНТИБАКТЕРИАЛЬНОЙ АКТИВНОСТЬЮ | 1990 |
|
SU1819428A3 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ СИМБИОТИЧЕСКОГО ПРЕПАРАТА НА ОСНОВЕ Escherichia coli VL-613 | 2010 |
|
RU2450051C1 |
Способ получения нативного симбиотического препарата | 2017 |
|
RU2662949C1 |
ШТАММ БАКТЕРИЙ ESCHERICHIA COLI EB387 ДЛЯ ЗАЩИТЫ ЖИВОТНЫХ СЕМЕЙСТВА ПСОВЫХ ОТ ТОКСИКОЗОВ, ВЫЗВАННЫХ ЦИТОТОНИЧЕСКИМИ ТОКСИНАМИ ТИПА AB, И ПРОБИОТИЧЕСКИЙ ПРЕПАРАТ НА ЕГО ОСНОВЕ | 2009 |
|
RU2412992C1 |
ШТАММ БАКТЕРИЙ BACILLUS LICHENIFORMIS, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ ПРОБИОТИЧЕСКОГО ПРЕПАРАТА, ПРЕДНАЗНАЧЕННОГО ДЛЯ ПРОФИЛАКТИКИ И ЛЕЧЕНИЯ ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ ЖИВОТНЫХ, ПТИЦЫ И РЫБЫ | 2001 |
|
RU2203947C1 |
СПОСОБ ПРОИЗВОДСТВА ПРОБИОТИЧЕСКОГО ПРЕПАРАТА НА ОСНОВЕ СПОРООБРАЗУЮЩИХ ШТАММОВ Bac. subtilis И Bac. licheniformis | 2010 |
|
RU2432393C1 |
ШТАММ ESCHERICHIA COLI - ПРОДУЦЕНТ ЛИЗИНА, СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ КОРМОВОЙ ДОБАВКИ, СОДЕРЖАЩЕЙ ДАННЫЙ ШТАММ, КОМПОЗИЦИЯ, ПОЛУЧЕННАЯ ЭТИМ СПОСОБОМ, И СПОСОБ КОРМЛЕНИЯ МОНОГАСТРИЧНЫХ ЖИВОТНЫХ И ПТИЦ | 2007 |
|
RU2347807C1 |
Пробиотик на основе штамма бактерий Bacillus subtilis MG-8 ВКПМ В-12476 и способ применения пробиотика для профилактики желудочно- кишечных заболеваний у сельскохозяйственных животных и птиц | 2017 |
|
RU2663720C1 |
ШТАММ БАКТЕРИЙ BACILLUS SUBTILIS, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ ПРОБИОТИЧЕСКОГО ПРЕПАРАТА, ПРЕДНАЗНАЧЕННОГО ДЛЯ ПРОФИЛАКТИКИ И ЛЕЧЕНИЯ ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ ЖИВОТНЫХ, ПТИЦЫ И РЫБЫ | 2001 |
|
RU2184774C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ПРОБИОТИКА НА ОСНОВЕ ШТАММОВ КИШЕЧНОЙ ПАЛОЧКИ Escherichia coli Г-35-1/59, Escherichia coli Г-35-2/60, Escherichia coli Г-35-3/61 И ФЕКАЛЬНОГО ЭНТЕРОКОККА Enterococcus faecalis Г-35-4/62 | 2004 |
|
RU2292213C2 |
Изобретение относится к биотехнологии, в ветеринарии. Для приготовления препарата клетки Escherichia coli BKM CR-322D выращивают на питательной среде, содержащей бульон Хоттингера, глюкозу, дрожжевой экстракт, сульфат марганца, гидрофосфат калия, хлорид натрия и воду водопроводную, при содержании аминного азота 125-155 мг %. Причем глюкозу вносят дробно в процессе выращивания клеток, который ведут при температуре 30-31°С при перемешивании и аэрации в течение 10-12 ч. Полученную культуральную жидкость, содержащую не менее 3·109 бак.тел/мл, смешивают с защитной сахарозожелатиновой средой и подвергают лиофильной сушке. Высушенную массу хранят под азотом, что повышает сохранность жизнеспособных клеток в препарате. Использование препарата для профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний сельскохозяйственных и домашних животных и птиц показало его эффективность. 4 с. и 13 з.п. ф-лы.
Сахароза 39-41
Желатин 5-6
Вода дистиллированная Остальное
Бульон Хоттингера 18-23
Глюкоза 0,35-0,45
Дрожжевой экстракт 0,45-0,55
Сульфат марганца 0,055-0,065
Гидрофосфат калия 0,15-0,16
Вода водопроводная Остальное
ПЛАЗМИДА p74 , ОПРЕДЕЛЯЮЩАЯ СИНТЕЗ МИКРОЦИНА И ШТАММ БАКТЕРИЙ ESCHERICHIA COLI, ОБЛАДАЮЩИЙ АНТИБАКТЕРИАЛЬНОЙ АКТИВНОСТЬЮ | 1990 |
|
SU1819428A3 |
РЖ Ветеринария, №1, 2001 | |||
Диагностика, лечение и профилактика заболеваний сельскохозяйственных животных., Ставрополь, 1999, с.36-39 | |||
SU 1692029 А, 30.05.1994. |
Авторы
Даты
2005-01-20—Публикация
2002-10-31—Подача