СПОСОБ РАННЕЙ ДИАГНОСТИКИ ТУБЕРКУЛЕЗА ЖИВОТНЫХ Российский патент 2009 года по МПК A61K39/04 

Изобретение относится к ветеринарии, в частности к экспресс-способам дифференциальной диагностики туберкулеза, вызываемого микобактериями разных видов.

Известно, что в благополучных хозяйствах первичный диагноз на туберкулез устанавливают комплексным способом - эпизоотологическим, клиническим, аллергическим, патологоанатомическим и лабораторным (1.)

Перечисленные способы диагностики во многих случаях не позволяют в короткие сроки исследования поставить окончательный диагноз на туберкулез.

Для массовых прижизненных исследований на туберкулез используют аллергическую диагностическую пробу (2). Однако появление массовых неспецифических реакций на туберкулин у нетуберкулезных животных не позволяет поставить в благополучных хозяйствах диагноз на туберкулез по положительной туберкулиновой пробе (1; 2).

Для дифференциации неспецифических туберкулиновых реакций ставят симультанную пробу (прототип) с двумя аллергенами - ППД для млекопитающих и аллергеном КАМ, изготовленным из нескольких штаммов атипичных микобактерий (2; 3; 4).

Симультанную аллергическую пробу применяют при первичной постановке диагноза на туберкулез крупного и мелкого рогатого скота и кур в благополучных хозяйствах и в случае, если реакции на туберкулин обусловлены атипичными микобактериями и кислотоустойчивыми сапрофитами (3).

Владельцы высокоудойных коров оспаривают правомерность контрольно-диагностического убоя животных, давших положительную реакцию на туберкулиновую пробу, и требуют прижизненных способов диагностики для переисследования высокопродуктивных животных на туберкулез. Использование предлагаемого нами «Способа ранней диагностики туберкулеза животных» вносит ясность в этот спорный вопрос, так как позволяет установить однозначно специфичность или неспецифичность реакции организма животного на внутрикожное введение туберкулина и окончательно поставить диагноз.

Более того, проведение симультанной пробы допускается через 30 и более дней после последней туберкулинизации животных, что не отвечает требованиям ранней (доклинической) диагностики туберкулеза в короткие сроки исследования.

Таким образом, недостатками известных способов постановки диагноза на туберкулез являются трудоемкость, продолжительные сроки исследования и невозможность определения вида микобактерий в первые дни после заражения.

Способ основан на немедленно появляющейся повышенной чувствительности лейкоцитов к повторному контакту с антигеном (аллергеном) вне организма. Целью изобретения является разработка нового способа. Поставленная задача достигается использованием реакции специфического лизиса лейкоцитов (РСЛЛ).

Способ осуществляется путем исследования крови РСЛЛ от положительно реагирующих на туберкулин животных, выявленных в благополучных хозяйствах и дворах плановыми аллергическими исследованиями, с использованием в качестве диагностикума туберкулинов (ППД для млекопитающих, ППД для птиц и КАМ).

Причем при диагностике туберкулеза у крупного рогатого скота РСЛЛ проводится с ППД-туберкулином для млекопитающих, ППД-туберкулином для птиц и КАМ - комплексным аллергеном из атипичных микобактерий.

Диагностику туберкулеза у свиней выполняют с ППД-туберкулином для млекопитающих и ППД-туберкулином для птиц.

При диагностике туберкулеза у собак и плотоядных РСЛЛ используют ППД-туберкулин для млекопитающих.

Диагностику туберкулеза у кроликов и пушных зверей РСЛЛ проводят с ППД-туберкулином для млекопитающих, ППД-туберкулином для птиц и КАМ.

Организация исследований на туберкулез РСЛЛ

В опытах на кроликах, собаках, свиньях и телятах для сенсибилизации организма животных использовали живые микобактерии вакцинного штамма БЦЖ-1 в прививочных дозах: одна (0,05 мг), две (0,1 мг), три (0,15 мг), пять (0,25 мг) и десять (0,50 мг).

Исследования проводили в экспериментальных условиях на лейкоцитах крови интактных вакцинированных БЦЖ животных и в производственных условиях - коровах, дважды давших положительную реакцию на внутрикожное введение ППД-туберкулина для млекопитающих, в СПК « Рассвет» Матвеево-Курганского района.

Основная цель исследований - использовать результаты РСЛЛ для дифференциальной диагностики и определения:

1) сенсибилизации лейкоцитов организма животных микобактериями вакцины БЦЖ;

2) инфицирования коров, давших дважды положительную туберкулиновую реакцию;

3) неспецифических реакций на туберкулин при его внутрикожном введении.

В опыт отобрали клинически здоровых интактных животных, которые служили фоновым контролем. Группы формировали животными, у которых при 3-кратном исследовании проб крови получены стабильные величины значений гематологических показателей (количество лейкоцитов,% лизиса и др.).

В каждую опытную группу брали не менее трех животных. От каждого животного брали кровь, которую делили на контрольную и опытные пробы. В контрольной пробе к крови добавляли 0,9% физиологический раствор натрия хлорида, а в опытных пробах крови - туберкулины - ППД для млекопитающих, ППД для птиц и КАМ.

Для исключения ошибок внимания техники подсчета форменных элементов и получения достоверных средних величин значений показателей реакции крови каждую пробу (контрольную и опытные) исследовали в трех повторах.

Порядок проведения исследования на туберкулез РСЛЛ

Исследование животных на туберкулез вначале проводят методом туберкулинизации в порядке и сроки, предусмотренные «Эпизоотическим контролем и постановкой диагноза на туберкулез у животных разных видов» (2).

В качестве диагностикумов берут ППД-туберкулин для млекопитающих, ППД-туберкулин для птиц и комплексный аллерген из атипичных микобактерий (КАМ).

В благополучных по туберкулезу гуртах, группах и отдельных животных основным методом исследования является внутрикожная туберкулиновая проба. В случае выявления животных, реагирующих на туберкулин, то положительно реагирующих изолируют, ставят на привязь и берут от них кровь для исследования в реакции специфического лизиса лейкоцитов (РСЛЛ) со следующими диагностикумами:

- у крупного рогатого скота антикоагулянтную кровь в РСЛЛ берут с

а) физиологическим раствором хлористого натрия (контрольная проба);

б) ППД-туберкулином для млекопитающих;

в) КАМ;

г) ППД-туберкулином для птиц.

При этом животных, давших положительные результаты исследования РСЛЛ с ППД-туберкулином для млекопитающих, считают туберкулезными

- у свиней антикоагулянтную кровь в РСЛЛ берут с

а) физиологическим раствором поваренной соли;

б) ППД-туберкулином для млекопитающих;

в) ППД-туберкулином для птиц.

Свиней, у которых РСЛЛ с ППД-туберкулином для млекопитающих оказалась положительной, признают туберкулезными, а животных, у которых РСЛЛ положительна с ППД-туберкулином для птиц, считают инфицированными микобактериями птичьего вида;

- у собак и др. мелких животных РСЛЛ берут с

а) физиологическим раствором;

б) ППД-туберкулином для млекопитающих;

- у кроликов антикоагулянтную кровь в РСЛЛ берут с

а) физиологическим раствором натрия хлорида;

б) ППД-туберкулином для млекопитающих;

в) ППД-туберкулином для птиц;

г) КАМ.

При этом кролики, давшие положительную РСЛЛ с ППД-туберкулином для млекопитающих, считаются инфицированными бычьим видом возбудителя туберкулеза, а с ППД-туберкулином для птиц - зараженными птичьим видом возбудителя, с КАМ - сенсибилизированными атипичными нетуберкулезными микобактериями.

Целью изобретения является сокращение сроков обнаружения в организме животных возбудителя туберкулеза и определение вида микобактерий, вызвавшего сенсибилизацию.

Достижение поставленной цели основано на явлении немедленного приобретения после внедрения возбудителя иммунокомпетентными клетками повышенной чувствительности организма, выявляемой при повторном воздействии вне организма того же антигена на лейкоциты крови. Повышенная чувствительность после инфицирования представляет собой клеточный феномен, в котором клетками-эффекторами, вступающими во взаимодействие с туберкулином вне организма, являются сенсибилизированные лейкоциты крови, что отличается от повышенной чувствительности замедленного типа (ПЧЗТ) организма, которая развивается у животных через 2-3 недели после заражения их возбудителем туберкулеза.

Осуществления способа

Способ ранней диагностики туберкулеза животных осуществляется следующим образом. В лунку планшета, содержащую 0,05 мл 3,8%-ного раствора цитрата натрия (гепарина, трилона Б или любой другой антикоагулянт) вносят 0,1 мл исследуемой крови и рабочую дозу туберкулина в объеме 0,05 мл (опытные пробирки). Контрольные пробирки заполняют в том же объеме физиологическим раствором без туберкулина. Кровь в лунках планшета инкубируют в течение 2 часов при t=37°C, встряхивая через каждые 30 минут. Затем из контрольной и опытной лунок по 0,02 мл крови переносят в лунку с 0,4 мл жидкостью Тюрка (3-5% раствор уксусной кислоты, подкрашенный несколькими каплями раствора метиленового синего) для разрушения эритроцитов и окраски ядер лейкоцитов. Подсчитывают число лейкоцитов (в камере Горяева) во всех лунках и рассчитывают показатели реакции специфического лизиса лейкоцитов (в процентах) по формуле

,

где Л_к и Л_о - абсолютное количество лейкоцитов в контрольной и опытной пробе. РСЛЛ считают положительной при показателе 10% и выше.

Пример 1. Рабочая доза туберкулинов

Схема опытов по определению рабочей дозы туберкулинов (соотношения антикоагулянта, крови и туберкулина)

Пробы 3,8% раствор цитрата натрия (мл) Кровь (мл) Туберкулин (мл) 1 0,05 0,1 0,05 2 0,05 0,1 0,1 3 0,05 0,1 0,15

В схеме опытов по определению рабочей дозы туберкулинов показано, что объемные соотношения антикоагулянта и крови в пробах оставались одинаковыми, а дозы туберкулинов возрастали: 0,05; 0,1 и 0,15 мл

Таблица 1
Определение рабочей дозы туберкулинов (в среднем по группам) для КРС и свиней в РСЛЛ Доза антигена КРУПНЫЙ РОГАТЫЙ СКОТ СВИНЬИ Количество лейкоцитов при взаимодействии «in vitro» (10^9//л) РСЛЛ в % Количество лейкоцитов при взаимодействии «in vitro» (10^9/ л) РСЛЛ в % Физ.р-р ППД, мл. КАМ ППД птиц ППД, мл. КАМ ППД птиц Физ. р-р ППД мл. ППД птиц ППД мл. ППД птиц 0,05 9,5 9,6 9,4 9,5 -1% 1% 0 9,3 9,2 9,4 1% 1% 0,1 9,5 9,5 9,4 9,4 0% 1% 1 8,6 8,7 8,7 1% 1% 0,15 9,3 9,0 9,1 9,2 3% 2% 1 8,7 8,4 8,8 3% 2%

Таблица 2
Определение рабочей дозы туберкулинов (в среднем по группам) для собак и кроликов Доза антигена СОБАКИ КРОЛИКИ Количество в цитратной крови при взаимодействии «in vitro» (10^9/л) РСЛЛ в % Количество в цитратной крови при взаимодействии «in vitro» (10^9/л) РСЛЛ в % Физ. р-р ППД мл. ППД мл. Физ. р-р ППД мл. ППД птиц КАМ ППД мл. ППД птиц КАМ 0,05 4,45 4,45 0% 7,8 7,7 7,7 7,8 1% 1% 0% 0,1 5,5 5,2 5,6% 7,9 7,8 7,8 7,7 1% 1% 2,5% 0,15 4,05 3,75 7,4% 8,2 8,0 8,1 8,3 2% 1% -1%

Как видно из табл.1 и 2, РСЛЛ во всех пробах не превышает 3% у крупного рогатого скота, свиней, 7,4% у собак и 2% у кроликов, поэтому экономнее в качестве рабочей дозы использовать дозу 0,05 мл туберкулина, т.к. РСЛЛ у нее оказалась ниже, чем при дозе 0,15. И величина ее была практически одинаковой для ППД млекопитающих, ППД птиц и КАМ.

Таким образом, рабочая доза туберкулинов определена величиной 0,05 мл для РСЛЛ.

Пример 2. Специфичность и активность РСЛЛ крови бычков, вакцинированных БЦЖ-1

В опытах на 4-6-месячных бычках изучали специфичность и активность РСЛЛ. Для этого животным вводили живые микобактерии вакцинного штамма БЦЖ-1 в прививочных дозах: 0,05 мг, 0,15 мг, 0,25 мг и 0,50 мг (одна, три, пять, десять доз), а затем исследовали кровь в РСЛЛ в день вакцинации и через каждые 24 часа в течение 10 суток (240 часов).

Количество лейкоцитов в пробах крови с ППД для млекопитающих колебалось от 8,2 до 9,1·10⁹/л. Отличительно, что в пробах крови от бычков, вакцинированных БЦЖ, при взаимодействии с ППД для млекопитающих отмечали снижение количества лейкоцитов через 48-120 часов после введения вакцины по сравнению с другими пробами, однако число их было в границах нормы.

В эти же часы после введения живых микобактерий в пробах крови с физиологическим раствором ППД для птиц и КАМ количество лейкоцитов практически было одинаковым и колебалось от 9,2 до 11,3·10⁹/л, т.е. обнаруживали лейкоцитоз, который был тем сильнее, чем больше была прививочная доза микобактерий вакцинного шт. БЦЖ-1.

Как видно из табл.3, в пробах крови с ППД для млекопитающих положительная РСЛЛ обнаруживалась уже через 24 часа после сенсибилизации КРС вакциной БЦЖ, в пробах крови с ППД для птиц и КАМ показатели РСЛЛ были отрицательными.

Таблица 3
Показатели РСЛЛ у крупного рогатого скота сенсибилизированного вакциной БЦЖ с туберкулинами: ППД для млекопитающих, ППД для птиц и КАМ Время после вакцинации, ч Количество прививочных доз вакцины БЦЖ Одна (0,05 мг) Три (0,15 мг) Пять (0,25 мг) Десять (0,50 мг) ППД мл. ППД пт. КАМ ППД мл. ППД пт. КАМ ППД мл. ППД пт. КАМ ППД мл. ППД пт. КАМ в день сенсибилизации 1 0 0 0 0 1 1,2 0 1 0 0 1 24 14 0 1 14,3 0 0 16,2 1 1 34,3 1 1 48 27 0 0 32,5 0 0 28,6 1 0 48,3 0 0 72 23 0 1 25,5 0 1 21,6 -1 1 41,3 -1 1 96 17 0 0 10,8 0 0 19,5 0 0 35 0 1 120 13 0 0 5 1 0 10,3 0 0 24,2 0 1 144 7 1 1 1 0 0 6,3 0 1 20 1 1 168 1 0 0 0 0 1 2,4 0 1 15,1 0 1 192       1 0 0 1,2 0 1 8,6 0 1 216       0 0 0       6 -1 1 240                   0 0 0 - ППД мл. - ППД для млекопитающих - ППД пт. - ППД для птиц

Полученные результаты исследований свидетельствуют о специфичности РСЛЛ. РСЛЛ может быть использована для выявления животных, сенсибилизированных микобактериями с антигенами, родственными туберкулину.

Активность РСЛЛ характеризуется тем, что с повышением дозы живых микобактерий вакцинного шт. БЦЖ-1 с 0,05 мг до 0,50 мг на животное возрастает показатель РСЛЛ.

Так, установлено, что при вакцинации одной прививочной дозой БЦЖ-1 наибольший показатель РСЛЛ с ППД для млекопитающих был через 48-72 ч после инъекции (27-23%)

При сенсибилизации крупного рогатого скота тремя прививочными дозами положительные показатели РСЛЛ также наблюдаются в это же время. Максимальный процент лизиса достигает 32,5% после введения вакцины БЦЖ.

При введении животным пяти прививочных доз лизис лейкоцитов был более продолжительным и имел тенденцию к увеличению показателя. Особенно четко эта тенденция наблюдалась при введении животным 10 прививочных доз вакцины БЦЖ, когда лизис лейкоцитов через 48 часов после инъекции вакцины достигал 48,3% и был более продолжительным, т.е. с увеличением количества прививочных доз процент сенсибилизированных лейкоцитов возрастал и это сказывалось на показателях РСЛЛ (табл.3).

Результаты показателей РСЛЛ в зависимости от количества прививочных доз вакцины БЦЖ-1 свидетельствуют о выраженной активности РСЛЛ.

Так, среднесуточный показатель РСЛЛ с ППД для млекопитающих за 120 часов при одной прививочной дозе микобактерии БЦЖ составил 18,8%, трех - 20,8%, пяти - 19,24% и десяти - 32,2%. При десяти прививочных дозах БЦЖ положительные показатели РСЛЛ с ППД для млекопитающих удлиняются до семи суток.

Выполненные исследования с инъекциями живых микобактерии вакцинного шт. БЦЖ позволили установить специфичность и активность РСЛЛ, что необходимо для дифференциальной диагностики специфических и неспецифических реакций на туберкулин.

Пример 3. Исследование по определению у свиней сенсибилизации, вызванной введением живых микобактерий вакцинного шт. БЦЖ-1

Опыты выполняли на поросятах-отъемышах трех групп, которым инъекцировали по одной, три и пять прививочных доз вакцины БЦЖ. Количество лейкоцитов у сенсибилизированных свиней одной дозой вакцины БЦЖ с ППД для млекопитающих колебалось от 7,2 до 8,8·10⁹/л, а с физиологическим раствором ППД для птиц колебания составляли от 8,7 до 14,3·10⁹/л. Наибольшее количество лейкоцитов было через 48 часов после вакцинации. Та же закономерность отмечалась при введении трех и пяти прививочных доз вакцины БЦЖ, где количество лейкоцитов с физиологическим раствором и ППД для птиц через 48 часов достигало 15,4 и 18,6·10⁹/л соответственно. В результате показатель РСЛЛ с ППД для млекопитающих у сенсибилизированных свиней через 24 часа при одной прививочной дозе составил 26,9%, трех - 28,9%, пяти - 38,1%. Наибольший показатель РСЛЛ был через 48-72 часов после сенсибилизации и составил 46,6-49,7%; 41,5-46,7%; 49,7-55,4% соответственно дозам (табл.4).

Таблица 4
Показатели РСЛЛ у свиней, сенсибилизированных вакциной БЦЖ с туберкулинами: ППД для млекопитающих, ППД для птиц Время после вакцинации, ч Количество прививочных доз вакцины БЦЖ Одна (0,05 мг) Три (0,15 мг) Пять (0,25 мг) ППД мл. ППД птиц ППД мл. ППД птиц ППД мл. ППД птиц в день сенсибилизации -1 0 0,9≈1 0 0 1 24 26,9 1 28,9 1 38,1 0 48 49,65 1 46,7 1 55,4 0 72 46,61 0 41,5 1 49,7 1 96 34,45 0 26,9 1 19 0 120 17,82 0 20,9 1 13 0 144 1,15 -1 7,8 0 6,4 1 168 0 0 1,8 1 1,8 -1 192         0 1 - ППД мл. - ППД для млекопитающих - ППД пт. - ППД для птиц

У вакцинированных поросят положительные показатели РСЛЛ обнаруживали через 24-120 часов после введения одной, трех и пяти прививочных доз вакцины БЦЖ.

РСЛЛ с ППД для птиц была отрицательной, что подтверждает специфичность РСЛЛ с ППД для млекопитающих.

Пример 4. Исследование по определению у собак сенсибилизации, вызванной введением живых микобактерий вакцинного шт. БЦЖ-1

В опытах на собаках после введения одной, трех, пяти прививочных доз вакцины БЦЖ установлено, что через 24-72 часа при взаимодействии крови с физиологическим раствором численность лейкоцитов составила 5,2-6,2 10⁹/л, а с ППД для млекопитающих 3,4-4,7 10⁹/л, т.е. отмечалась лейкопения.

Количество лейкоцитов с физиологическим раствором было увеличено по сравнению с нормой в два и более раз. В результате показатели РСЛЛ составили при одной дозе 14-25%, при трех 20,8-60,6%, при пяти 22-68%. Наибольший показатель РСЛЛ был через 48 часов после вакцинации. Положительные показатели РСЛЛ отмечали при одной дозе через 24-96 часов, при трех через 24-120 часов, при пяти через 24-240 часов, т.е. с увеличением дозы вакцины увеличивалась продолжительность сенсибилизации лейкоцитов и возрастала активность - показатели РСЛЛ (табл.5).

Таблица 5
Показатели РСЛЛ у собак и кроликов, сенсибилизированных вакциной БЦЖ Время после вакцинации (час) Количество прививочных доз вакцины БЦЖ СОБАКИ КРОЛИКИ одна (0,05 мг) три (0,15 мг) пять (0,25 мг) пять (0,25 мг) десять (0,50 мг) ППД мл. ППД мл. ППД мл. ППД мл. ППД птиц КАМ ППД мл. ППД птиц КАМ В день сенсибилизации 1 0 0,7 1 0 1 0 0 1 24 24 45,9 60,5 58 1 0 56 1 0 48 25 60,6 68 71 0 0 72 0 0 72 23 50 63,8 71 0 1 41 1 0 96 14 43,6 62,6 36 1 0 26 1 0 120 1,9 20,8 57,4 2 0 1 30 0 1 144 1 3,4 54,9 0 1 0 25 0 0 168 1 1 41,2 0 0 0 19 0 1 192     0 0 0 0 17 1 1 216     32 0 0 1 17 0 0 240     22 0 1 0 13,7 0 0 264     0 0 1 1 16,0 1 0 288     1,4 0 0 0 0 0 1 336       1 0 1 0 0 0 408             23 1 1 672             1 0 0 - ППД мл. - ППД для млекопитающих - ППД пт. - ППД для птиц

Пример 5. Исследование по определению у кроликов сенсибилизации, вызванной введением живых микобактерий вакцинного шт. БЦЖ-1

При вакцинации кроликов пятью прививочными дозами вакцины БЦЖ самое низкое содержание лейкоцитов в крови при взаимодействии с ППД для млекопитающих обнаруживали через 24 и 72 часа (4,6-4,7 10⁹/л), а при десяти дозах наименьшее количество лейкоцитов при взаимодействии с ППД для млекопитающих было через 24 часов (3,8 10⁹/л) и 48 часов (4, 7 10⁹/л). Особенностью является то, что при взаимодействии крови с ППД для млекопитающих через 72-264 часа и через 408 часов после вакцинации количество лейкоцитов было в несколько раз выше, чем в норме, и составляло 11-28,5 10⁹/л, т.е. вместо лейкопении отмечался лейкоцитоз. И в это же время количество лейкоцитов в пробах с физиологическим раствором (контрольные пробы) значительно превышало численность их в опытных пробах и составляло 25,0-38,7 10⁹/л. Установлено, что на фоне лейкоцитоза, вызванного введением больших доз вакцины БЦЖ, РСЛЛ у кроликов была положительной и составляла от 13,7 до 72% (табл.5).

Пример 6. Исследование проб крови РСЛЛ коров, давших дважды положительную реакцию на туберкулин

Диагностику туберкулеза реакций специфического лизиса лейкоцитов РСЛЛ в производственных условиях выполняли в СПК « Рассвет» Матвеево-Курганского района.

В октябре 2006 г. на ранее благополучной ферме положительно прореагировали на туберкулин семь коров из 198 исследованных. При повторной туберкулинизации через 45 дней они вновь дали положительную реакцию. При внутрикожном введении туберкулина образовывались тестоватой консистенции разлитые припухлости, кожная складка утолщалась на 5-10 мм.

27 ноября 2006 г. на бойне СПК « Рассвет» была произведена контрольная диагностическая экспертиза убитых коров комиссией в составе врача-эпизоотолога Рудаш Г.П., директора районной ветлаборатории Перекопского Н.А., доцента кафедры паразитологии и ветсанэкспертизы ДонГАУ Соловьева Н.А., соискателя кафедры эпизоотологии и фармакологии Поляковой О.Н.

Перед убоем коров взяли кровь для исследования в реакции специфического лизиса лейкоцитов (РСЛЛ). Результаты исследований по количеству лейкоцитов и показателям РСЛЛ у коров, с выраженной реакцией на туберкулин, представлены в табл.6.

Таблица 6
РСЛЛ и патологоанатомические данные у коров, положительно прореагировавших на туберкулин Инвентарные номера коров Кол-во лейкоцитов и показатель РСЛЛ крови при взаимодействии с Физиологич. раствор ППД для мл. ППД для птиц КАМ кол-во лейк. кол-во лейк. РСЛЛ% кол-во лейк. РСЛЛ% кол-во лейк. РСЛЛ% 1 2 3 4 5 6 7 8 6827 7,7 5,5 29 7,6 1 7,55 2 071 11,0 7,1 36 11,0 0 10,5 1 4006 5,05 5,0 1 5,0 1 5,05 1 4018 9,5 2,75 71 9,35 2 9,4 1 162 5,0 4,8 4 4,9 1 4,9 1 109 5,0 4,9 2 5,0 0 4,9 1 148 5,75 4,2 27 5,7 1 5,7 1

Как видно из табл.6, из семи коров, реагировавших на внутрикожное введение туберкулина, только у четырех РСЛЛ была положительна (инвен. №6827; №071; №4018; №148) при взаимодействии проб крови с ППД-туберкулином для млекопитающих. Пробы крови с ППД-туберкулином для птиц и КАМ дали отрицательные показатели РСЛЛ.

Ветеринарная экспертиза контрольно-диагностического убоя положительно реагирующих на туберкулин коров показала, что из четырех животных с положительными показателями РСЛЛ только у двух обнаружены в лимфатических узлах изменения, характерные для туберкулеза: у одной туши в подчелюстных и заглоточных, а у второй средостенных и брыжеечных лимфатических узлах. В тушах двух коров с положительной реакцией на туберкулиновую пробу и положительными показателями РСЛЛ патологоанатомических изменений, характерных для туберкулеза, во внутренних органах и лимфатических узлах визуально не обнаружено. Это, вероятно, связано с недавним инфицированием животных возбудителем туберкулеза, и патологоанатомические изменения еще не успели сформироваться. Кроме этого, при послеубойной контрольно-диагностической экспертизе было установлено, что положительные реакции на внутрикожное введение туберкулина дали две глубокостельные (7-8,5 мес. беременности) коровы и одна с острым эндометритом при стрептококковой инфекции. Патологоанатомические изменения у положительно прореагировавших на туберкулин коров показаны в табл.7.

Таблица 7
Патологоанатомические изменения у положительно прореагировавших на туберкулин коров Номер коров Патологоанатомические изменения 6827 Патологоанатомических изменений во внутренних органах и лимфатических узлах не обнаружено 071 Надартериальный лимфатический узел гиперимирован, печеночный лимфатический узел на разрезе имеет саловидные фокусы, других патологоанатомических изменений во внутренних органах и лимфатических узлах не обнаружено 4006 Послеродовой эндометрит, других патологоанатомических изменений во внутренних органах и лимфатических узлах не обнаружено 4018 Подчелюсной левый лимфатический узел на разрезе имел некротические фокусы серо-белого цвета, других патологоанатомических изменений во внутренних органах и лимфатических узлах не обнаружено 162 Патологоанатомических изменений во внутренних органах и лимфатических узлах не обнаружено, стельность 7 месяцев 109 Патологоанатомических изменений во внутренних органах и лимфатических узлах не обнаружено, стельность 7,5 месяцев 148 Патологоанатомических изменений во внутренних органах и лимфатических узлах не обнаружено, стельность 8 месяцев

Контрольно-диагностическая экспертиза убитых коров, реагировавших положительно на туберкулин, показала, что в четырех случаях из семи положительная туберкулиновая проба совпадала с положительной РСЛЛ (В=4:7=0,57); в одном случае (В=1:7=0,14) из трех коров с беременностью 7-8 мес. положительная туберкулиновая проба совпала с глубокостельностью (8 мес.; В=1:3=0,33); в одном случае - со стрептококковой инфекцией (острый эндометрит; В=1:7=0,14).

РСЛЛ в двух случаях из четырех положительных показателей совпадала с обнаружением патологоанатомических изменений, характерных для туберкулеза (В=2:4=0,5), и в двух случаях из четырех (В=2:4=0,5) визуальных патологоанатомических данных не обнаружено, что не может быть основанием для исключения раннего инфицирования микобактериями, когда еще патологоанатомические изменения не сформировались.

Литература

1. Диагностика туберкулеза. // В.П.Урбан, М.А.Сафин, А.А..Сидорчук, М.В.Харитонов, Р.С.Сигбатулин, Ф.Г. Акберов. // Практикум по эпизоотологии и инфекционным болезням с ветеринарной санитарией. Учебник. Москва: «Колос», 2003, с.82-86.

2. Эпизоотологический контроль и постановка диагноза на туберкулез у животных разных видов. Профилактика и борьба с заразными болезнями, общими для человека и животных. Сборник санитарных и ветеринарных правил. Изд. официальное. Госкомсанэпиднадзор России. Минсельхозпром России. Москва. 1996, с.164-167.

3. Наставление по проведению симультанной пробы с применением туберкулина и комплексного Аллергена из атипичных микобактерий (КАМ) при диагностике туберкулеза животных. Ветеринарное законодательство. Том 3. Москва: «Колос», 1981, с.220-224.

4. Шаров А.Н. Туберкулез «Ветеринарные препараты» Справочник (под ред. д.б.н. Д.Ф.Осидзе). Москва: «Колос», 1981, с.192-201.

Изобретение относится к области биотехнологии. Способ включает выявление в благополучных хозяйствах и дворах плановыми аллергическими исследованиями реагирующих на туберкулин животных. От положительно реагирующих на туберкулин животных исследуют кровь реакцией специфического лизиса лейкоцитов (РСЛЛ) с использованием в качестве диагностикума туберкулинов ППД для млекопитающих, ППД для птиц и КАМ. Способ позволяет провести дифференциацию специфических и неспецифических положительных реакций на туберкулиновую пробу и диагностировать туберкулез на ранней стадии заболевания. 4 з.п. ф-лы, 7 табл.

1. Способ ранней диагностики туберкулеза животных, включающий выявление в благополучных хозяйствах и дворах плановыми аллергическими исследованиями реагирующих на туберкулин животных, отличающийся тем, что от положительно реагирующих на туберкулин животных исследуют кровь реакцией специфического лизиса лейкоцитов (РСЛЛ) с использованием в качестве диагностикума туберкулинов ППД для млекопитающих, ППД для птиц и КАМ.

2. Способ ранней диагностики туберкулеза по п.1, отличающийся тем, что при диагностике туберкулеза у крупного рогатого скота РСЛЛ проводят с ППД-туберкулином для млекопитающих, ППД-туберкулином для птиц и КАМ-комплексным аллергеном из атипичных микобактерий.

3. Способ ранней диагностики туберкулеза по п.1, отличающийся тем, что при диагностике туберкулеза у свиней РСЛЛ выполняют с ППД-туберкулином для млекопитающих и ППД-туберкулином для птиц.

4. Способ ранней диагностики туберкулеза по п.1, отличающийся тем, что при диагностике туберкулеза у собак и плотоядных РСЛЛ используют с ППД-туберкулином для млекопитающих.

5. Способ ранней диагностики туберкулеза по п.1, отличающийся тем, что при диагностике туберкулеза у кроликов и пушных зверей РСЛЛ берут с ППД-туберкулином для млекопитающих, ППД-туберкулином для птиц и КАМ.