Изобретение относится к области медицины, а именно к микробиологии, фармакологии и может быть использовано для определения антимикробной активности гелей, содержащих в своем составе антибактериальные препараты, в отношении широкого спектра микроорганизмов.
Известен диско-диффузионный метод определения чувствительности бактерий к антибиотикам. На поверхность агара Мюллера-Хинтона наносят готовую взвесь тестируемых бактерий с оптической плотностью 0,5 по McF (1*108 КОЕ/мл) и затем помещают диски, содержащие один антибактериальный препарат. Диффузия антибиотика в агар приводит к формированию зоны подавления роста (ЗПР) микроорганизмов вокруг диска. Результат учитывают через 18 часов по величине ЗПР в мм [1, 2].
Недостатками данного метода являются невозможность определения совместного действия двух и более антибактериальных веществ, содержащихся на одном диске, а также оценка действия геля, так как в настоящее время не зарегистрированы стандартные диски с различными по составу антимикробными гелями.
Наиболее распространенным является способ определения антимикробной активности гелей, при котором чашки с агаром Мюллера-Хинтона готовят таким образом, чтобы в толще агара были сформированы лунки ("колодцы"). Лунки формируют с помощью стерильных полых металлических цилиндров высотой 10 мм и диаметром 5 мм. Цилиндры из агара удаляют пинцетом, и остается лунка диаметром 5 мм. Готовят взвесь бактерий с оптической плотностью 0,5 по McF (1*108 КОЕ/мл) и наносят ватным тампоном на поверхность агара. Дозатором в соответствующую лунку вносят 100 мкл исследуемого геля, оставляют на 10 минут и инкубируют при температуре 35°-37°С. Через 18-20 часов с помощью линейки измеряют диаметр зоны подавления роста (в мм). В случаях, если зоны подавления роста имеют овальную форму, то измеряют наибольший и наименьший диаметры зоны, вычисляют среднюю величину и принимают за показатель [3].
Недостатками данного метода являются его трудоемкость и точность соблюдения методики подготовки материалов, необходимость наличия в лаборатории металлических цилиндров, используемых для формирования лунок ("колодцев"), и их дополнительная стерилизация. Кроме того, необходимость формирования определенной толщины слоя агара в чашках Петри ограничивает применение этого метода в лабораториях с автоматическим разливом питательных сред и требует индивидуального подхода к каждой чашке.
Наиболее близким к заявленному способу является метод определения ингибирующей способности гелей диско-диффузионным методом. Исследуемую композицию геля лиофилизируют на дисках (диаметр 13 мм). Суспензию бактерий (30 мкл) дозатором вносят в чашки Петри, содержащие полутвердый агар Луриа-Бертани, равномерно распределяют по поверхности питательной среды. На поверхность бактериального газона вносят готовые диски с гелем и инкубируют 16 часов при 37°С. Антибактериальную активность приготовленных гелей оценивают путем измерения (в мм) ЗПР бактерий вокруг диска, насыщенного антимикробным агентом [4].
Недостатки известного способа: необходимость посева на полутвердый агар, что может искажать полученные результаты, особенно в случаях изучения активности в отношении облигатных аэробных микроорганизмов, которые при таком методе посева попадают в толщу питательной среды. Большой диаметр диска при высокой антимикробной активности гелей обеспечивает диффузию значительного количества действующего вещества и полное подавление видимого роста культуры, что ведет к невозможности учета полученных результатов. Также диаметр используемого диска не соответствует требованиям существующих нормативных документов по определению антибиотикочувствительности микроорганизмов.
Технический результат изобретения состоит в повышении точности определения антибактериальной активности гелей диско-диффузионным методом и возможности применения в рутинной практике бактериологической лаборатории определения активности антимикробных гелей.
Результат изобретения достигается за счет стандартизации нагрузки действующего вещества на бумажные диски диаметром 8 мм, соответствующим методическим указаниям и другим нормативным документам по оценке антибиотикочувстивительности бактерий, с последующей лиофилизацией и возможностью их хранения более 8 месяцев, применения плотных питательных сред и возможностью интерпретации результатов согласно нормативным документам (МУК 4.2.1892-04, EUCAST, CLSI) по оценке антибиотикочувствительности микроорганизмов.
Предлагаемый способ определения антимикробной активности гелей, содержащих антибактериальные компоненты, состоит из следующих этапов: 1. подготовка дисков, 2. выполнение исследования чувствительности бактерий к компонентам геля, 3. оценка и интерпретация результатов.
1. Подготовка дисков включает нанесение тестируемого геля на стандартные бумажные диски, соответствующих методическим указаниям и другим нормативным документам по оценке антибиотикочувстивительности бактерий.
В одном из вариантов на диск наносят 10 мкл исследуемого геля.
В одном из вариантов предварительно рассчитывают нагрузку геля на диск, исходя из требований нормативных документов (МУК 4.2.1892-04, EUCAST, CLSI) к конкретному микроорганизму и антибактериальному препарату.
Затем диски подвергают быстрой заморозке при температуре -80°С и лиофилизируют при отрицательном давлении с постепенным нагревом от -40°С до +40°С (нагревание на +20°С каждые 8 часов, общее время 40 часов, 5 этапов нагрева по 8 часов). Готовые диски хранят в холодильнике при температуре +2 - +4°С.
2. Выполнение исследования чувствительности бактерий к компонентам геля включает подготовку взвеси бактерий с мутностью 0,5 по шкале McF (1*108 КОЕ/мл), далее ватным тампоном взвесь наносят на поверхность агара Мюллера-Хинтона в чашке Петри. На готовый бактериальный газон вносят диск с лиофилизированным препаратом. Чашки инкубируют при температуре 35°-37°С в течение 18-20 часов.
3. Оценка и интерпретация результатов включает измерение зоны подавления роста вокруг диска (в мм) при ее наличии.
В первом варианте, когда диск нагружали 10 мкл тестируемого геля без предварительного расчета нагрузочной дозы, результат считают положительным если диаметр зоны подавления роста составляет более 12 мм и расценивают как наличие антимикробной активности у тестируемого геля в отношении тестируемого микроорганизма.
Во втором варианте, когда на диск наносили гель в соответствии с предварительным расчетом нагрузочной дозы, интерпретацию полученных результатов выполняют в соответствии с требованиями нормативных документов (МУК 4.2.1892-04, EUCAST, CLSI) к конкретному антибиотику в составе тестируемого геля в отношении тестируемого микроорганизма. Если в составе геля присутствует два и более антимикробных компонента, то учет результатов выполняют по препарату с наибольшим значением диаметра зоны подавления роста в контрольной точке резистентности.
Приготовленные первым и вторым вариантом диски с препаратом хранят в условиях санитарного холода (+2° - +4°С). Лиофилизированные диски сохраняют свою первоначальную активность не менее 8 месяцев.
Это позволяет применять методики изучения чувствительности патогенов к гелям с антибактериальными компонентами в рутинной практике бактериологов и использовать данные гели для местного этиотропного лечения инфекционных заболеваний.
На фигурах изображено:
Фиг. 1. Зоны подавления роста, сформированные в течение 18 часов инкубации под действием геля с фосфомицином. Sa - Staphylococcus aureus АТСС 29213, MRSA - Staphylococcus aureus MRSA ATCC 43300.
Фиг. 2. Активность дисков с гелем в отношении MRSA через 8 месяцев хранения. MRSA - Staphylococcus aureus MRSA ATCC 43300.
Фиг. 3. Фотографии зон подавления роста бактерий вокруг дисков с гелем, содержащих амикацин (Р.а. - Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853, K.р. - Klebsiella pneumoniae ATCC 33495).
Фиг. 4. Зоны подавления роста, сформированные в течение 18 часов инкубации под действием геля с амикацином и диоксидином. Sa - Staphylococcus aureus ATCC 29213, MRSA - Staphylococcus aureus MRSA ATCC 43300.
Пример 1. Определение антимикробной активности геля с фосфомицином на основе поливинилпирролидона в отношении S. aureus и метициллин-резистентного S. aureus по первому варианту
Готовили взвесь бактерий Staphylococcus aureus ATCC 43300 (MRSA) или Staphylococcus aureus ATCC 29213 и приводили к оптической плотности 0,5 по McF (1*108 КОЕ/мл). Суспензию засевали на агар Мюллера-Хинтона. На поверхность бактериального газона вносили лиофилизированные диски с образцами геля в 3х повторах. Для этого предварительно готовили бумажный диск диаметром 6 мм и наносили 10 мкл исследуемого геля. Затем диск подвергали быстрой заморозке при температуре -80°С и лиофилизировали при отрицательном давлении с постепенным нагревом от -40°С до +40°С (нагревание на +20°С каждые 8 часов, общее время 40 часов, 5 этапов нагрева по 8 часов). Чашки инкубировали при температуре 37°С. Оценку антимикробного действия выполняли по наличию зоны подавления роста вокруг дисков с образцами через 18-20 часов.
На фиг. 1 представлена фотография зон подавления роста бактерий вокруг дисков с образцами геля, содержащего фосфомицин через 20 часов инкубации. Отчетливо видно, что гель оказывал выраженное антибактериальное действие в отношении S. aureus и MRSA.
Пример 2. Сохранение активности действующего вещества гелей, лиофилизированных на диске, в течение 8 месяцев
Изучена антимикробная активность геля с фосфомицином на основе поливинилпиролидона в отношении метициллин-резистентного Staphylococcus aureus через 6 месяцев хранения дисков.
Диски готовили как в примере 1 и хранили 8 месяцев в условиях санитарного холода (+2° - +4°С). Протокол дальнейшего исследования прописан в примере 1.
На фиг. 2 представлены зоны подавления роста MRSA вокруг дисков, с образцами геля, содержащего фосфомицин, хранившиеся в течение 6 месяцев.
Полученные результаты подтверждают возможность хранения дисков в течение длительного времени с сохранением их антимикробной активности.
Пример 3. Определение антимикробной активности геля с амикацином на основе поливинилпирролидона в отношении Klebsiella pneumoniae ATCC 33495 и Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853 no второму варианту
Готовили взвесь бактерий K. pneumoniae и P. aeruginosa и приводили к оптической плотности 0,5 по McF (1*108 КОЕ/мл). Суспензию засевали на агар Мюллера-Хинтона. На поверхность бактериального газона вносили лиофилизированные диски с образцами геля в 3х повторах. Диски готовили как в примере 1. Протокол дальнейшего исследования представлен в примере 1.
На фиг. 3 представлена фотография зон подавления роста K. pneumoniae и P. aeruginosa вокруг дисков с образцами геля, содержащего 30 мкг амикацина, через 20 часов инкубации.
Диаметр зоны подавления роста K. pneumoniae составил 22 мм, P. aeruginosa - 30 мм. Так как концентрация амикацина на диске соответствовала требованиям EUCAST 2020 года, то в дальнейшем была выполнена оценка антибиотикочувствительности данных штаммов к гелю с амикацином, которая показала, что данные культуры были чувствительны к действующему веществу геля.
Пример 4. Определение антимикробной активности геля с амикацином и диоксидином на основе поливинилпирролидона в отношении Staphylococcus aureus MRSA ATCC 43300 и Staphylococcus aureus ATCC 29213 по второму варианту
Готовили взвесь бактерий Staphylococcus aureus MRSA ATCC 43300 или Staphylococcus aureus ATCC 29213 и приводили к оптической плотности 0,5 по McF (1*108 КОЕ/мл). Суспензию засевали на агар Мюллера-Хинтона. На поверхность бактериального газона вносили лиофилизированные диски с образцами геля в 3х повторах. Диски готовили как в примере 1. Протокол дальнейшего исследования представлен в примере 1.
На фиг. 4 представлена фотография зон подавления роста бактерий вокруг дисков с образцами геля, содержащего амикацин и диоксидин через 20 часов инкубации. Отчетливо видно, что гель оказывал выраженное антибактериальное действие в отношении S. aureus и MRSA.
Диаметр зоны подавления роста S. aureus - 25 мм, MRSA - 29 мм. В соответствии с требованиями EUCAST (2020) для золотистых стафилококков прописаны контрольные значения чувствительности/резистентности к амикацину - 18 мм, и, так как концентрация антибиотика на диске соответствовала требованиям нормативного документа, то полученные результаты были интерпретированы как наличие антимикробной активности тестируемого геля к изученным.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Решедько Г.К., Стецюк О.У. Особенности определения чувствительности микроорганизмов диско-диффузионным методом. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. №4 (3), 2001. 348-354, МУК 4.2.1890-04.
2. Методические указания. Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам. Клиническая Микробиология и Антимикробная Химиотерапия 2004; 6(4): 306-359.
3. Государственная Фармакопея. - XI изд. - М.: Медицина, 1987. - Вып. 2. - 398 с.
4. Sa Y., Wang М., Deng Н., Wang Y., Jiang Т. Beneficial effects of biomimetic nano-sized hydroxyapatite/antibiotic gentamicin enriched chitosanglycerophosphate hydrogel on the performance of injectable polymethylmethacrylate. The Royal Society of Chemistry. 2015; 5: 91082-92. DOI: 10.1039/C5RA15915F.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Способ комплексной эмпирической антибактериальной терапии имплантат-ассоциированных ортопедических инфекций | 2015 |
|
RU2641608C2 |
Полимерный гель для локальной антибактериальной терапии инфекционных осложнений травм и операций на опорно-двигательном аппарате и способ его приготовления | 2023 |
|
RU2822155C1 |
Применение наночастиц Fe-FeO со структурой ядро-оболочка для повышения чувствительности бактерий к антибиотикам | 2020 |
|
RU2760677C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АНТИМИКРОБНОГО ГЕЛЯ | 2020 |
|
RU2746709C1 |
КОМБИНАЦИЯ, ВКЛЮЧАЮЩАЯ ФУЛЬВОВУЮ КИСЛОТУ И АНТИБИОТИКИ | 2009 |
|
RU2505295C2 |
СПОСОБ ПРЕОДОЛЕНИЯ УСТОЙЧИВОСТИ К ГЕНТАМИЦИНУ У МЕТИЦИЛЛИНОРЕЗИСТЕНТНЫХ ШТАММОВ СТАФИЛОКОККА | 2013 |
|
RU2553601C2 |
СПОСОБЫ ЛЕЧЕНИЯ БАКТЕРИАЛЬНЫХ ИНФЕКЦИЙ | 2014 |
|
RU2666605C2 |
СПОСОБ МИКРОРАЗБАВЛЕНИЯ В ЖИДКОЙ СРЕДЕ ДЛЯ ОЦЕНКИ И ОПРЕДЕЛЕНИЯ МИНИМАЛЬНОЙ ИНГИБИРУЮЩЕЙ КОНЦЕНТРАЦИИ АНТИБАКТЕРИАЛЬНЫХ ПОЛИПЕПТИДОВ | 2017 |
|
RU2754667C2 |
(2Z)-2-[(3β, 4α, 8α, 11α, 14β, 16β)-16-(АЦЕТИЛОКСИ)-3-({ 3-[(4-АМИНОБУТИЛ)АМИНО]ПРОПИЛ} АМИНО)-11-ГИДРОКСИ-4,8,10,14-ТЕТРАМЕТИЛГОНАН-17-ИЛИДЕН]-6-МЕТИЛГЕПТ-5-ЕНОВАЯ КИСЛОТА С ПРОТИВОМИКРОБНОЙ И ФУНГИЦИДНОЙ АКТИВНОСТЬЮ И СПОСОБ ЕЁ ПОЛУЧЕНИЯ | 2019 |
|
RU2730604C1 |
СОЕДИНЕНИЯ И СПОСОБЫ ЛЕЧЕНИЯ ИНФЕКЦИЙ | 2018 |
|
RU2779024C2 |
Изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение представляет собой способ, состоящий из последовательных этапов: 1. Исследуемый гель наносят на стандартный бумажный диск. 2. Диск с гелем подвергают быстрой заморозке и лиофилизируют. 3. Взвесь бактерий наносят на поверхность агара Мюллера-Хинтона. 4. На готовый бактериальный газон вносят диск с лиофилизированным препаратом. 5. Через 18-20 часов инкубации проводят оценку антимикробного действия в соответствии с нормативными документами, регламентирующими контрольные точки чувствительности/резистентности для конкретного антибиотика и микроорганизма (МУК 4.2.1892-04, EUCAST, CLSI). Изобретение позволяет повысить точность определения антибактериальной активности гелей и возможность применения в рутинной практике бактериологической лаборатории определения активности антимикробных гелей в конкретных клинических случаях. 4 пр., 4 ил.
Способ определения антимикробной активности гелей, содержащих антибактериальные компоненты, включающий следующие этапы: подготовку диска путем нанесения 10 мкл тестируемого геля на диски, диаметром 8 мм, с последующей быстрой заморозкой при температуре -80°С, лиофилизацией при отрицательном давлении с постепенным нагревом от -40°С до +40°С, при этом нагревают на +20°С каждые 8 часов, 5 этапов нагрева по 8 часов общее время 40 часов, далее хранят готовые диски при температуре +2 - +4°С, приготовление взвеси бактерий и приведение к оптической плотности 0,5 по McF (1*108 КОЕ/мл), засев суспензии на плотную питательную среду, внесение на поверхность бактериального газона лиофилизированных дисков с образцами геля, при этом наличие зоны подавления роста микроорганизма вокруг диска более 12 мм интерпретируют как наличие антимикробной активности у тестируемого геля в отношении тестируемого микроорганизма.
SA Y., et al., Beneficial effects of biomimetic nano-sized hydroxyapatite/antibiotic gentamicin enriched chitosanglycerophosphate hydrogel on the performance of injectable polymethylmethacrylate | |||
The Royal Society of Chemistry | |||
Устройство для закрепления лыж на раме мотоциклов и велосипедов взамен переднего колеса | 1924 |
|
SU2015A1 |
Печь-кухня, могущая работать, как самостоятельно, так и в комбинации с разного рода нагревательными приборами | 1921 |
|
SU10A1 |
РЕШЕДЬКО Г.К | |||
и др., Особенности определения чувствительности |
Авторы
Даты
2021-12-30—Публикация
2021-04-23—Подача