Изобретение относится к области биотехнологий, в частности к культивированию тканей и органов растений, и может быть использовано в сельском и лесном хозяйстве для получения качественного посадочного материала.
Известны способы, направленные на решение проблемы стерилизации эксплантов в культуре in vitro, включающие стерилизацию первичных эксплантов при введении в культуру in vitro с использованием стерилизующего средства «Аламинол» на основе алкилдиметилбензиламмония хлорида (Пат. РФ № 2675510; МПК А01Н 4/00; опубл. 19.12.2018) или последовательное использование водных растворов этанола и препарата «Дезавид+», содержащего полигексаметиленгуанидин гидрохлорид и алкилдиметилбензиламмоний хлорид (Пат. РФ № 2720916; А01Н 4/00; опубл. 14.05.2019).
Недостатками данных способов является токсичность алкилдиметилбензиламмония хлорида для кожных покровов человека и тканей растений (Regulatory Toxicology and Pharmacology. 2020. Т. 116. С. 104717).
Известен способ стерилизации с помощью обработки 95%-ным этанолом в течение 30 с и раствором наночастиц серебра в концентрации 1, 5, 10 и 15 мг/л в течение 10, 15, 20 мин (IET nanobiotechnology. 2015. Т. 9. № 4. С. 239-245).
Данный способ позволяет проводить эффективную стерилизацию листовых эксплантов табака, однако он является затратным по времени, а разовая обработка наночастицами серебра не имеет пролонгированного действия.
Известны способы стимуляции ростовых процессов микроклонов путем введения наночастиц серебра и оксида меди в концентрации от 0,1 до 0,0001 мг/л (Лесотехнический журнал. 2018. Т. 8. № 4 (32). С. 6-11) и наночастиц железа в концентрации 3,0, 0,3, 0,06 мг/л, цинка - 0,4, 0,16, 0,08 мг/л и меди - 0,004, 0,0008, 0,00016 мг/л (Российские нанотехнологии. 2018. Т. 13. № 3-4. С. 57-63) в питательную среду Мурасиге-Скуга (МС).
Известные способы позволяют стимулировать ростовые процессы у микроклонов, но не учитывают стерилизующее действие наночастиц.
Известен способ поддержания стерильности микроклонов березы в культуре in vitro путем использования антибиотиков цефотаксима, карбенициллина, гентомицина в составе питательной среды WPM (Woody plant medium) (Достижения науки и образования. 2018. № 4 (26). C. 4-7).
Недостатком этого способа является возможное негативное влияние антибиотиков на процессы роста и развития микроклонов (Ecotoxicology. 2021. Т. 30. № 8. С. 1598-1609).
Известен способ дезинфекции эксплантов альдрованды путем использования наночастиц серебра в концентрации 5 мг/л в 1/5 питательной среды МС (Applied Sciences. 2021. Т. 11. № 8. С. 3653).
Данный способ позволяет снизить инфекционную нагрузку на экспланты альдрованды, но негативно влияет на их регенерационную способность и скорость роста.
Известен способ использования наночастиц оксида меди (IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. IOP Publishing. 2020. Т. 595. № 1. С. 012001), включающий стадии отмывки молодых побегов в воде с добавлением поверхностно-активных веществ, их разрезки на сегменты длиной 3-5 см, стерилизации в течение 35 мин в растворе, состоящем из 200 мл дистиллированной воды и 200 мкл 5%-ного раствора гипохлорита натрия, с последующей промывкой в дистиллированной воде, основной стерилизации побегов в ламинар-боксе в растворе, содержащем 15 мл 5%-ного раствора гипохлорита натрия и 85 мл стерильной дистиллированной воды, в течение 15 мин, промывки стерильной водой и разрезки стерильных побегов в асептических условиях на сегменты длиной 1,5-2 см с одной пазушной почкой - экспланты, которые впоследствии высаживают на модифицированную питательную среду. Способ применяют для стерилизации эксплантов гибрида тополя×осину. В качестве модифицированной питательной среды используют безгормональную питательную среду Мурасиге-Скуга (МС0), содержащую пластинчатые наночастицы оксида меди длиной 500 нм, шириной 300 нм, толщиной 50 нм, в концентрации 0,75, 1,5, 3, 6 и 15 мкг/л. Принят за прототип.
Недостатками данного способа являются его неотработаннность на эксплантах древесных растений с высоким процентом обсемененности микроорганизмами (40 и более % контаминированных эксплантов), а также сложность подбора концентрации наночастиц оксида меди (1,5-3 мкг/л) из-за их узкого диапазона воздействия.
Задача, на решение которой направлено изобретение, заключается в разработке способа стерилизации эксплантов березы на стадии введения в культуру in vitro.
Это достигается тем, что в способе стерилизации эксплантов березы in vitro с использованием наночастиц оксида меди, включающем стадии отмывки молодых побегов в воде с добавлением поверхностно-активных веществ, их разрезки на сегменты длиной 3-5 см, стерилизации в течение 35 мин в растворе, состоящем из 200 мл дистиллированной воды и 200 мкл 5%-ного раствора гипохлорита натрия, с последующей промывкой в дистиллированной воде, основной стерилизации побегов в ламинар-боксе в растворе, содержащем 15 мл 5%-ного раствора гипохлорита натрия и 85 мл стерильной дистиллированной воды, в течение 15 мин, промывки стерильной водой и разрезки стерильных побегов в асептических условиях на сегменты длиной 1,5-2 см с одной пазушной почкой - экспланты, которые впоследствии высаживают на модифицированную питательную среду, согласно изобретению, в качестве модифицированной питательной среды используют питательную среду WPM, оптимизированную для введения в культуру in vitro эксплантов березы и содержащую сферические наночастицы оксида меди диаметром 30-80 нм в концентрации 0,1 мг/л, что позволяет пролонгировать действие санирующего эффекта, а также сократить сроки получения и увеличить количество стерильных эксплантов.
Наночастицы оксида меди применяются в качестве стимуляторов роста (Лесотехнический журнал. 2018. Т. 8. № 4 (32). С. 6-11); Российские нанотехнологии. 2018. Т. 13. № 3-4. С. 57-63), поверхностного стерилизующего агента семян растений (J Anim Plant Sci. 2019. Т. 29. № 2. С. 453-460), промывочного раствора (IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. IOP Publishing, 2019. Т. 392. № 1. С. 012024) и компонента питательной среды для стерилизации эксплантов при введении в культуру in vitro (Applied Sciences. 2021. Т. 11. № 8. С. 3653).
Технический результат, заключающийся в увеличении количества стерильных эксплантов березы in vitro более чем на 20%, достигается за счет воздействия наночастиц оксида меди на патогенную микрофлору бактериального и грибкового происхождения, которые относятся к III классу опасности - малоопасные вещества, и обладают выраженным стерилизующим действием, являясь альтернативой использованию антибиотиков, и, в то же время, не снижают жизнеспособность эксплантов. Введение наночастиц оксида меди непосредственно в среду культивирования позволяет пролонгировать санирующий эффект, а их низкая концентрация в культивационной среде способствует уменьшению их агломерации и предотвращает токсический эффект от воздействия на микроклоны и кожные покровы человека.
Способ стерилизации эксплантов березы in vitro с использованием наночастиц оксида меди осуществляют следующим образом.
1. Молодые побеги березы предварительно отмывают в воде с добавлением поверхностно-активных веществ (ПАВ) - стеарата калия, разрезают на сегменты длиной 3-5 см, после чего стерилизуют в течение 35 мин в растворе, состоящем из 200 мл дистиллированной воды и 200 мкл 5%-ного раствора гипохлорита натрия, с последующей промывкой в дистиллированной воде.
2. Проводят основную стерилизацию побегов березы в ламинар-боксе в растворе, содержащем 15 мл 5%-ного раствора гипохлорита натрия и 85 мл стерильной дистиллированной воды, в течение 15 мин Последующую промывку также проводят стерильной водой.
3. Разрезают стерильные побеги березы в асептических условиях на сегменты длиной 1,5-2 см с одной пазушной почкой - экспланты, которые впоследствии высаживают на питательную среду WPM, оптимизированную для введения в культуру in vitro эксплантов березы и содержащую сферические наночастицы оксида меди диаметром 30-80 нм в концентрации 0,1 мг/л.
Состав питательной среды WPM, модифицированной наночастицами оксида меди и используемой на стадии введения в культуру березы in vitro, представлен в таблице 1.
Эффективность стерилизации с использованием наночастиц оксида меди представлена в таблице 2.
Как видно из таблицы 2, число стерильных эксплантов березы увеличивалось на 11,7-26,7% с одновременным сохранением жизнеспособности при использовании наночастиц оксида меди в среде культивирования.
Таким образом, способ стерилизации эксплантов березы in vitro с использованием наночастиц оксида меди отличается повышенной безопасностью и эффективностью по сравнению с известными способами и позволяет пролонгировать санирующее воздействие наночастиц оксида меди в составе модифицированной питательной среды WPM при введении в культуру in vitro, а также сократить сроки получения и увеличить количество стерильных эксплантов.
Состав питательной среды WPM, модифицированной наночастицами оксида меди и используемой на стадии введения в культуру березы in vitro
Влияние наночастиц оксида меди в составе модифицированной питательной среды WPM на основные показатели эксплантов березы на стадии введения в культуру in vitro
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Способ получения асептических культур растительных эксплантов in vitro | 2024 |
|
RU2826724C1 |
Способ клонального микроразмножения секвойи вечнозеленой (Sequoia sempervirens L.) | 2023 |
|
RU2815450C1 |
СПОСОБ МИКРОКЛОНАЛЬНОГО РАЗМНОЖЕНИЯ И ПОЛУЧЕНИЯ ПОСАДОЧНОГО МАТЕРИАЛА ВЕЙГЕЛЫ ПРИЯТНОЙ (WEIGELA SUAVIS (КОМ.) L.H.BAILEY) И ВЕЙГЕЛЫ ЦВЕТУЩЕЙ "ВАРИЕГАТА" (WEIGELA FLORIDA "VARIEGATA" BUNGE A. DC.) | 2016 |
|
RU2634431C1 |
СПОСОБ ВЫРАЩИВАНИЯ ПОСАДОЧНОГО МАТЕРИАЛА | 2011 |
|
RU2485755C1 |
СПОСОБ ПОВЕРХНОСТНОЙ СТЕРИЛИЗАЦИИ ЭКСПЛАНТОВ ОСИНЫ IN VITRO | 2017 |
|
RU2675510C2 |
Способ клонального микроразмножения тополя корейского (Populus koreana Render) | 2019 |
|
RU2704839C1 |
Способ клонального микроразмножения княженики арктической (Rubus arcticus L.) | 2023 |
|
RU2824884C1 |
Питательная среда для микроклонального размножения рододендрона и способ микроклонального размножения рододендрона | 2018 |
|
RU2679835C1 |
СПОСОБ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ ЛИМОНА in vitro | 2014 |
|
RU2580033C2 |
Способ многоступенчатой поверхностной стерилизации верхних частей генеративных побегов Beta vulgaris L. перед введением в культуру in vitro | 2022 |
|
RU2796463C1 |
Изобретение относится к области биотехнологий, в частности к культивированию тканей и органов растений, и может быть использовано в сельском и лесном хозяйстве для получения качественного посадочного материала. Способ стерилизации эксплантов березы in vitro с использованием наночастиц оксида меди осуществляют следующим образом. Молодые побеги березы предварительно отмывают в воде с добавлением поверхностно-активных веществ (ПАВ) – стеарата калия, разрезают на сегменты длиной 3-5 см, после чего стерилизуют в течение 35 мин в растворе, состоящем из 200 мл дистиллированной воды и 200 мкл 5%-ного раствора гипохлорита натрия, с последующей промывкой в дистиллированной воде. Проводят основную стерилизацию побегов березы в ламинар-боксе в растворе, содержащем 15 мл 5%-ного раствора гипохлорита натрия и 85 мл стерильной дистиллированной воды, в течение 15 мин. Последующую промывку также проводят стерильной водой. Разрезают стерильные побеги березы в асептических условиях на сегменты длиной 1,5-2 см с одной пазушной почкой – экспланты, которые впоследствии высаживают на питательную среду WPM, оптимизированную для введения в культуру in vitro эксплантов березы и содержащую сферические наночастицы оксида меди диаметром 30-80 нм в концентрации 0,1 мг/л. Способ стерилизации эксплантов березы in vitro с использованием наночастиц оксида меди отличается повышенной безопасностью и эффективностью по сравнению с известными способами и позволяет пролонгировать санирующее воздействие наночастиц оксида меди в составе модифицированной питательной среды WPM при введении в культуру in vitro, а также сократить сроки получения и увеличить количество стерильных эксплантов.
Способ стерилизации эксплантов березы in vitro с использованием наночастиц оксида меди, включающий стадии отмывки молодых побегов в воде с добавлением поверхностно-активных веществ, их разрезки на сегменты длиной 3-5 см, стерилизации в течение 35 мин в растворе, состоящем из 200 мл дистиллированной воды и 200 мкл 5%-ного раствора гипохлорита натрия, с последующей промывкой в дистиллированной воде, основной стерилизации побегов в ламинар-боксе в растворе, содержащем 15 мл 5%-ного раствора гипохлорита натрия и 85 мл стерильной дистиллированной воды, в течение 15 мин, промывки стерильной водой и разрезки стерильных побегов в асептических условиях на сегменты длиной 1,5-2 см с одной пазушной почкой – экспланты, которые впоследствии высаживают на модифицированную питательную среду, отличающийся тем, что в качестве модифицированной питательной среды используют питательную среду WPM, оптимизированную для введения в культуру in vitro эксплантов березы и содержащую сферические наночастицы оксида меди диаметром 30-80 нм в концентрации 0,1 мг/л, что позволяет пролонгировать действие санирующего эффекта, а также сократить сроки получения и увеличить количество стерильных эксплантов.
O ZAKHAROVA,et al, CuO nanoparticles effects on poplar×aspen hybrid clonesat various stages of microclonal propagation, IOP Conf | |||
ПРИБОР ДЛЯ ИЗМЕРЕНИЯ КОЛИЧЕСТВА ПРОХОДЯЩЕГО ПАРА В ТРУБАХ И НАГРУЗОК ПАРОВЫХ КОТЛОВ | 1921 |
|
SU595A1 |
ЕВЛАКОВ П.М., и др., Клональное микроразмножение березы пушистой (Betula pubescens) с использованием |
Авторы
Даты
2022-10-04—Публикация
2022-02-24—Подача