Способ получения субстанции из каллусных культур зверобоя продырявленного (Hypericum perforatum L.) Российский патент 2022 года по МПК A01H4/00 

Описание патента на изобретение RU2786911C1

Изобретение относится к области биотехнологии, фармации, медицины, сельского хозяйства.

В пат. RU 2771960 A01H 4/00 (2006.01) предложен способ введения в культуру in vitro, получения каллусов и растений-регенерантов вздутоплодника сибирского (PHLOJODICARPUS SIBIRICUS (STEPH.) К.-POL.), с использованием в качестве первичных эксплантов вегетативных или генеративных органов. Заявленный способ обеспечивает получение каллусных культур и растений-регенерантов вздутоплодника сибирского (Phlojodicarpus sibiricus (Steph.) K.-Pol.), относящегося к редким лекарственным видам растений, с целью сохранения и воспроизводства как в природе, так и питомниках, а также для дальнейшего использования каллусов в качестве ценного источника вторичных метаболитов. Способ микроклонального размножения in vitro вздутоплодника сибирского (Phlojodicarpus sibiricus (Steph.) К.-Pol.) осуществляют на питательной среде Мурасиге-Скуга из соцветий, оберточного листа и корня материнского растения.

Недостатком данного способа является невозможность его использования для других видов растений, например, для Hypéricum perforátum L. (зверобоя продырявленного), так как известно, что каждое растение требует своих индивидуально подобранных стерилизаторов, времени воздействия и концентрации и определенного состава питательных сред и регуляторов роста для выращивания растений регенерантов и калллусных тканей.

В статье Бабаян А.М.,Исаджян С.А.,Петросян М.Т.,Саакян Н.Ж.,Трчунян А.А. Оценка антимикробной и антиоксидантной активностей изолированной культуры (интернет ссылка: https://publikacia.net/archive/2014/6/1/9?) предложен способ получения каллусных тканей растений с антибактериальной и антиоксидантной активностью из растений зверобоя вытянутого (Hypericum elongatum Ledeb.) .

Особенностью данного способа является то, что он предназначен для получения каллусных тканей для другого вида, а именно зверобой вытянутый (Hypericum elongatum Ledeb.), а не для зверобоя продырявленного (Hypericum perforatum L.), что обусловило использование других регуляторов роста и их концентраций. Так, авторы получали каллусные ткани на модифицированной питательной среде Мурасиге-Скуга (МС), отличающейся составом фитогормонов 0.5мг/л нафтилуксусной кислоты (НУК), 1.0 мг/л кинетина и 0.2мг/л гиббереллиновой кислоты (ГК).

Из статьи Е.Н. Щербакова, А.Н. Арзуманян, Ю.Г. Попов, Ереван, 2004 г. Фармакологическое действие вторичных метаболитов изолированных культур некоторых растений рода Hypericum (интернет ссылка:

известно, что антибактериальную активность проявляют экстракты как каллусных тканей, так и интактных растений исследуемых видов зверобоя, причем активность экстрактов из каллусных тканей была выше. Согласно полученным данным ни каллусные ткани, ни интактные растения Н. perforatum, не ингибировали рост Escherichia coli.

Следовательно, есть потребность в разработке способа получения субстанций на основе каллусных культур Hypéricum perforátum L. в лабораторных условиях, обладающих подтвержденной антиоксидатной и антибактериальной активностью, в том числе в отношении Escherichia coli и Staphylococcus aureus.

Техническая задача – разработка способа получения субстанций на основе каллусных культур Hypéricum perforátum L. в лабораторных условиях, обладающих подтвержденной антиоксидатной и антибактериальной активностью.

Технический результат заключается в получении субстанции с антиоксидантными и антибактериальными свойствами, в том числе в отношении Escherichia coli и Staphylococcus aureus, методом культивирования растительных клеток и тканей Hypéricum perforátum L., причем процесс получения каллусной культуры осуществляется в лабораторных условиях и не связан с выращиванием и сбором растений в поле.

Решение технической задачи достигается предложенным способом получения субстанции на основе каллусных культур Hypéricum perforátum L., который характеризуется тем, что в качестве растительных эксплантов используют семена растений, которые дезинфицируют ступенчатой стерилизацией. Для этого первоначально обрабатывают растительные экспланты в мыльном растворе, затем отмывают дистиллированной водой, далее в ламинарном боксе помещают в 70% спирт на 1 минуту, а затем в основной стерилизующий раствор, которым выступает белизна 50% или 100% при воздействии в течение 10-20 минут, или перекись водорода 36% при воздействии в течение 15 минут, или сулема 0,1% при воздействии в течение не более 15 минут. Далее семена отмывают автоклавированной дистиллированной водой в трёхкратной повторности по 15 минут и помещают растительные экспланты на питательную среду Мурасиге и Скуга, без использования фитогормонов для получения проростков, культивируют в термостате при температуре 24°С. Полученные проростки в стерильных условиях разрезают и помещают на питательную среду Мурасиге и Скуга с добавлением фитогормонов 0,2 мг/л ИУК (индолил-уксусная кислота) и 0,5 мг/ л кинетина для индукции каллусогенеза. Через 28-30 дней получают каллусную культуру, которую высушивают при температуре не выше 40°С и далее измельчают и готовят экстракт, для чего 1 грамм исследуемого объекта измельчают, добавляют 2 мл 40% спирта, перемешивают и центрифугируют 15 минут на скорости 10000 оборотов, с последующим сливанием жидкости в пустую стерильную пробирку. Повторно добавляют растворитель и повторяют смешивание и центрифугирование, потом сливают жидкость в ту же пробирку, снова заливают растворителем, перемешивают и ставят в холодильник отстаиваться на сутки при температуре 4°С Через сутки снова повторяют перемешивание и центрифугирование, сливают жидкость в ту же пробирку и высушивают полученный экстракт.

Изобретение характеризуется на следующих графических изображениях.

Фиг. 1 – Антибактериальная активность Hypéricum perforátum

Фиг. 2 – Антиоксидантная активность Hypéricum perforátum

Новизна и изобретательский уровень заявленного способа подтверждается тем, что из уровня техники не выявлены состав и концентрация используемых фитогормонов, для получения субстанции с антиоксидантными и антибактериальными свойствами, в том числе в отношении Escherichia coli и Staphylococcus aureus, а также способ стерилизации растительный эксплантов при введении семян зверобоя продырявленного в условиях in vitro.

Примеры получения субстанции из каллусных культур зверобоя продырявленного (Hypéricum perforátum L.), обладающей антимикробной и антиоксидантной активностью.

Пример 1

Первоначально обрабатывают растительные экспланты в мыльном растворе, затем отмывают дистиллированной водой, далее в ламинарном боксе помещают в 70% спирт на 1 минуту, а затем в основной стерилизующий раствор, которым выступает белизна 50% для воздействия в течение 20 минут. Далее семена отмывают автоклавированной дистиллированной водой в трёхкратной повторности по 15 минут и помещают растительные экспланты на питательную среду Мурасиге и Скуга, без использования фитогормонов для получения проростков, культивируют в термостате при температуре 24°С. Полученные проростки в стерильных условиях разрезают и помещают на питательную среду Мурасиге и Скуга с добавлением фитогормонов 0,2 мг/л ИУК (индолил-уксусная кислота) и 0,5 мг/ л кинетина для индукции каллусогенеза. Через 28-30 дней получают каллусную культуру, которую высушивают при температуре не выше 40°С и далее измельчают и готовят спиртовой экстракт, для чего 1 грамм порошка измельчают в ступке при помощи пестика, затем добавляют 2 мл 40% спирта и перемешивают при помощи «Вортекса», далее центрифугируют 15 минут. Надосадочную жидкость, полученную в результате центрифугирования сливают в пустую стерильную пробирку. К оставшемуся после центрифугирования осадку повторно добавляют 2 мл спирта 40%, вновь перемешивают, центрифугируют и сливают надосадочную жидкость, добавляя ее к первой порции в стерильной пробирке. В третий раз заливают осадок 2 мл спирта 40% и ставят в холодильник при температуре 4°С на сутки. Через сутки снова повторяют все этапы и высушивают трехкратно полученную жидкость в темном месте при комнатной температуре в течение 48 часов.

Пример 2

Первоначально обрабатывают растительные экспланты в мыльном растворе, затем отмывают дистиллированной водой, далее в ламинарном боксе помещают в 70% спирт на 1 минуту, а затем в основной стерилизующий раствор, которым выступает перекись водорода 36% при воздействии в течение 15 минут. Далее семена отмывают автоклавированной дистиллированной водой в трёхкратной повторности по 15 минут и помещают растительные экспланты на питательную среду Мурасиге и Скуга, без использования фитогормонов для получения проростков, культивируют в термостате при температуре 24°С. Полученные проростки в стерильных условиях разрезают и помещают на питательную среду Мурасиге и Скуга с добавлением фитогормонов 0,2 мг/л ИУК (индолил-уксусная кислота) и 0,5 мг/ л кинетина для индукции каллусогенеза. Через 28-30 дней получают каллусную культуру, которую высушивают при температуре не выше 40°С и далее измельчают и готовят спиртовой экстракт, для чего 1 грамм порошка измельчают в ступке при помощи пестика, затем добавляют 2 мл 40% спирта и перемешивают при помощи «Вортекса», далее центрифугируют 15 минут. Надосадочную жидкость, полученную в результате центрифугирования сливают в пустую стерильную пробирку. К оставшемуся после центрифугирования осадку повторно добавляют 2 мл спирта 40%, вновь центрифугируют и сливают надосадочную жидкость, добавляя ее к первой порции в стерильной пробирке. В третий раз заливают осадок 2 мл спирта 40% и ставят в холодильник при температуре 4°С на сутки. Через сутки снова повторяют все этапы и высушивают трехкратно полученную жидкость в термостате при температуре 36°С в течении 24 часов.

Пример 3

Первоначально обрабатывают растительные экспланты в мыльном растворе, затем отмывают дистиллированной водой, далее в ламинарном боксе помещают в 70% спирт на 1 минуту, а затем в основной стерилизующий раствор, которым выступает сулема 0,1% при воздействии в течение 15 минут. Далее семена отмывают автоклавированной дистиллированной водой в трёхкратной повторности по 15 минут и помещают растительные экспланты на питательную среду Мурасиге и Скуга, без использования фитогормонов для получения проростков, культивируют в термостате при температуре 24°С. Полученные проростки в стерильных условиях разрезают и помещают на питательную среду Мурасиге и Скуга с добавлением фитогормонов 0,2 мг/л ИУК (индолил-уксусная кислота) и 0,5 мг/ л кинетина для индукции каллусогенеза. Через 28-30 дней получают каллусную культуру, которую высушивают при температуре не выше 40°С и далее измельчают и готовят спиртовой экстракт, для чего 1 грамм порошка измельчают в ступке при помощи пестика, затем добавляют 2 мл 40% спирта и перемешивают при помощи «Вортекса», далее центрифугируют 15 минут. Надосадочную жидкость, полученную в результате центрифугирования сливают в пустую стерильную пробирку. К оставшемуся после центрифугирования осадку повторно добавляют 2 мл спирта 40%, вновь центрифугируют и сливают надосадочную жидкость, добавляя ее к первой порции в стерильной пробирке. В третий раз заливают осадок 2 мл спирта 40% и ставят в холодильник при температуре 4°С на сутки. Через сутки снова повторяют все этапы и высушивают трехкратно полученную жидкость в темном месте при комнатной температуре 22°С в течении 48 часов.

Пример 4

Первоначально обрабатывают растительные экспланты в мыльном растворе, затем отмывают дистиллированной водой, далее в ламинарном боксе помещают в 70% спирт на 1 минуту, а затем в основной стерилизующий раствор, которым выступает белизна 100% при воздействии в течение 10 минут. Далее семена отмывают автоклавированной дистиллированной водой в трёхкратной повторности по 15 минут и помещают растительные экспланты на питательную среду Мурасиге и Скуга, без использования фитогормонов для получения проростков, культивируют в термостате при температуре 24°С. Полученные проростки в стерильных условиях разрезают и помещают на питательную среду Мурасиге и Скуга с добавлением фитогормонов 0,2 мг/л ИУК (индолил-уксусная кислота) и 0,5 мг/ л кинетина для индукции каллусогенеза. Через 28-30 дней получают каллусную культуру, которую высушивают при температуре не выше 40°С и далее измельчают и готовят спиртовой экстракт, для чего 1 грамм порошка измельчают в ступке при помощи пестика, затем добавляют 2 мл 40% спирта и перемешивают при помощи «Вортекса», далее центрифугируют 15 минут. Надосадочную жидкость, полученную в результате центрифугирования сливают в пустую стерильную пробирку. К оставшемуся после центрифугирования осадку повторно добавляют 2 мл спирта 40%, вновь перемешивают, центрифугируют и сливают надосадочную жидкость, добавляя ее к первой порции в стерильной пробирке. В третий раз заливают осадок 2 мл спирта 40% и ставят в холодильник при температуре 4°С на сутки. Через сутки снова повторяют все этапы и высушивают трехкратно полученную жидкость в термостате при температуре 36°С в течении 24 часов.

Пример 5.

Полученные по примерам 1-4 образцы субстанции растительного происхождения из каллусной культуры зверобоя далее подвергали проверке на антимикробную и антиоксидантную активность.

Для чего сначала готовили 100% экстракт путем разведения 1 части полученной каллусной культуры в 1 части стерильной (автоклавированной) воды. Для получения разбавления 1:10 отбирали с помощью автоматического дозатора 1 мл 100% экстракта и добавляли его в пробирку с 9 мл стерильной (автоклавированной) воды и взбалтывали с помощью «Вортекса». В качестве контроля использовали антибиотик цефепим для Escherichia coli, а для Staphylococcus aureus использовали левофлоксацин.

Антибактериальная активность полученной субстанции растительного происхождения из каллусной ткани Hypéricum perforátum L. доказана по отношению к Escherichia coli и Staphylococcus aureus (Фиг.1). 100% экстракт из каллусной культуры обладал наибольшей антибактериальной активностью по отношению к Escherichia coli и Staphylococcus aureus, а антибактериальную активность к Staphylococcus aureus проявлял и при разведении 1/10.

Полученный экстракт из каллусной ткани H. perforátum был протестирован на антиоксидантную активность. Как видно из фиг. 2, экстракт из каллусной ткани H. perforátum обладает более высокой антиоксидантной активностью, по сравнению с раствором аскорбиновой кислоты (контроль) и интактным растением (экстракт из листьев растений).

Таким образом, поставленная задача решена и заявленный способ обеспечивает получение субстанции из каллусной культуры зверобоя продырявленного (Hypéricum perforátum L.) с антибактериальными свойствами по отношению к Escherichia coli и Staphylococcus aureus, и с высокой антиоксидатной активностью.

Похожие патенты RU2786911C1

название год авторы номер документа
СПОСОБ РАЗМНОЖЕНИЯ МАКЛЕИ СЕРДЦЕВИДНОЙ (MACLEAYA CORDATA (WILLD) R.BR.) (ВАРИАНТЫ) 2003
  • Брыкалов А.В.
  • Мазницына Л.В.
  • Браткова Л.Г.
  • Каширин А.И.
RU2264084C2
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ КЛЕТОЧНОЙ СУСПЕНЗИОННОЙ КУЛЬТУРЫ ТРАНСГЕННОГО ТАБАКА Nicotiana tabacum L., СОДЕРЖАЩЕГО ГЕН UIDA 2012
  • Гвоздева Елена Станиславовна
  • Дейнеко Елена Викторовна
RU2519652C2
Способ ускоренного получения оздоровленных безвирусных растений ягодных культур in vitro 2022
  • Маслова Елена Владимировна
RU2798519C1
СПОСОБ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ IN VITRO КЛЕТОЧНОЙ КУЛЬТУРЫ ТРАНСГЕННОГО ТАБАКА NICOTIANA TABACUM L., СОДЕРЖАЩЕГО ГЕН ИНТЕРЛЕЙКИНА-18 ЧЕЛОВЕКА 2007
  • Карначук Раиса Александровна
  • Гвоздева Елена Станиславовна
  • Дейнеко Елена Викторовна
  • Глухова Любовь Борисовна
  • Дорофеев Вячеслав Юрьевич
RU2354692C2
СПОСОБ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ КАЛЛУСНОЙ ТКАНИ VACCINIUM MYRTILLUS L. 2019
  • Березина Екатерина Васильевна
  • Агеева Мария Николаевна
  • Брилкина Анна Александровна
RU2709175C1
ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ КАЛЛУСНОЙ ТКАНИ SILENE VULGARIS (MOENCH) GARCKE 1999
  • Гюнтер Е.А.
  • Оводов Ю.С.
RU2171841C2
Способ получения каллусной культуры змееголовника дланевидного (Dracocephalum palmatum Steph.) в условиях in vitro 2019
  • Кучарова Елена Валериевна
  • Охлопкова Жанна Михайловна
  • Алексеева Саргылана Ильинична
RU2718253C1
Способ оценки селекционных образцов озимой пшеницы на устойчивость к фузариозной корневой гнили 2019
  • Шутко Анна Петровна
  • Михно Людмила Алексеевна
  • Тутуржанс Людмила Васильевна
  • Шипуля Анна Николаевна
RU2726066C1
СПОСОБ РЕГЕНЕРАЦИИ РАСТЕНИЙ СОРГО В КУЛЬТУРЕ IN VITRO 1999
  • Эльконин Л.А.
RU2175189C2
СПОСОБ ВВЕДЕНИЯ В КУЛЬТУРУ IN VITRO, ПОЛУЧЕНИЯ КАЛЛУСОВ И РАСТЕНИЙ-РЕГЕНЕРАНТОВ ВЗДУТОПЛОДНИКА СИБИРСКОГО (PHLOJODICARPUS SIBIRICUS (STEPH.) К.-POL.), С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ В КАЧЕСТВЕ ПЕРВИЧНЫХ ЭКСПЛАНТОВ ВЕГЕТАТИВНЫХ И ГЕНЕРАТИВНЫХ ОРГАНОВ 2021
  • Филиппова Галина Валерьевна
  • Дарханова Валентина Гаврильевна
  • Строева Наталья Семеновна
  • Андросова Дария Николаевна
RU2771960C1

Иллюстрации к изобретению RU 2 786 911 C1

Реферат патента 2022 года Способ получения субстанции из каллусных культур зверобоя продырявленного (Hypericum perforatum L.)

Способ получения субстанции из каллусных культур зверобоя продырявленного (Hypéricum perforátum L.) относится к области биотехнологии. Способ осуществляют путем ступенчатой стерилизации семян зверобоя продырявленного, для чего первоначально обрабатывают растительные экспланты в мыльном растворе, затем отмывают дистиллированной водой, далее в ламинарном боксе помещают в 70% спирт на 1 минуту, а затем в основной стерилизующий раствор, которым выступает белизна 50% или 100% при воздействии в течение 10-20 минут, или перекись водорода 36% при воздействии в течение 15 минут, или сулема 0,1% при воздействии в течение не более 15 минут. Далее семена отмывают автоклавированной дистиллированной водой в трёхкратной повторности по 15 минут и помещают растительные экспланты на питательную среду Мурасиге и Скуга без использования фитогормонов для получения проростков, культивируют в термостате при температуре 24°С. Полученные проростки в стерильных условиях разрезают и помещают на питательную среду Мурасиге и Скуга с добавлением фитогормонов 0,2 мг/л индолилуксусной кислоты и 0,5 мг/л кинетина для индукции каллусогенеза. Через 28-30 дней получают каллусную культуру, которую высушивают при температуре не выше 40°С и далее измельчают. Затем готовят экстракт путем растворения 1 части каллусной культуры в двух частях 40% спирта, перемешивают и центрифугируют 15 минут на скорости 10000 оборотов с последующим сливанием жидкости в пустую стерильную пробирку, повторяют процедуру и сливают жидкость в ту же пробирку, снова заливают 40% спиртом, перемешивают и ставят в холодильник отстаиваться на сутки при температуре 4°С, затем вновь центрифугируют, сливают жидкость в ту же пробирку и высушивают полученный экстракт. Заявленный способ позволяет получить субстанцию с антиоксидантными и антибактериальными свойствами, в том числе в отношении Escherichia coli и Staphylococcus aureus, методом культивирования растительных клеток и тканей Hypéricum perforátum L., причем процесс получения каллусной культуры осуществляется в лабораторных условиях и не связан с выращиванием и сбором растений в поле. 2 ил., 5 пр.

Формула изобретения RU 2 786 911 C1

Способ получения субстанции из каллусных культур зверобоя продырявленного (Hypéricum perforátum L.) с антиоксидантной и антибактериальной активностью, включающий получение каллусной ткани на модифицированной питательной среде Мурасиге-Скуга, отличающийся тем, что в качестве растительных эксплантов используют семена зверобоя продырявленного, которые дезинфицируют ступенчатой стерилизацией, для чего первоначально обрабатывают растительные экспланты в мыльном растворе, затем отмывают дистиллированной водой, далее в ламинарном боксе помещают в 70% спирт на 1 минуту, а затем в основной стерилизующий раствор, которым выступает белизна 50% или 100% при воздействии в течение 10-20 минут, или перекись водорода 36% при воздействии в течение 15 минут, или сулема 0,1% при воздействии в течение не более 15 минут, далее семена отмывают автоклавированной дистиллированной водой в трёхкратной повторности по 15 минут и помещают растительные экспланты на питательную среду Мурасиге и Скуга без использования фитогормонов для получения проростков, культивируют в термостате при температуре 24°С, полученные проростки в стерильных условиях разрезают и помещают на питательную среду Мурасиге и Скуга с добавлением фитогормонов 0,2 мг/л индолилуксусной кислоты и 0,5 мг/л кинетина для индукции каллусогенеза, через 28-30 дней получают каллусную культуру, которую высушивают при температуре не выше 40°С и далее измельчают; а экстракт готовят путем растворения 1 части каллусной культуры в двух частях 40% спирта, перемешивают и центрифугируют 15 минут на скорости 10000 оборотов с последующим сливанием жидкости в пустую стерильную пробирку, повторяют процедуру и сливают жидкость в ту же пробирку, снова заливают 40% спиртом, перемешивают и ставят в холодильник отстаиваться на сутки при температуре 4°С, затем вновь центрифугируют, сливают жидкость в ту же пробирку и высушивают полученный экстракт.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 2022 года RU2786911C1

АБДУРАХМАНОВ Б.А
и др
Технология получения из отходов переработки травы Hypericum perforatum l
субстанции, обладающей ростостимулирующей активностью, Химия растительного сырья, 2019, N1, c
ПАРОПЕРЕГРЕВАТЕЛЬ ДЛЯ ТРУБЧАТЫХ ПАРОВЫХ КОТЛОВ С ЭЛЕМЕНТАМИ, СОСТОЯЩИМИ ИЗ ДВУХ ПЕТЕЛЬ, ВВОДИМЫХ В ПРОГАРНЫЕ ТРУБЫ КОТЛА 1916
  • Чусов С.М.
SU281A1
СПОСОБ ЭКСТРАКЦИИ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ ВЕЩЕСТВ ИЗ ЗВЕРОБОЯ ПРОДЫРЯВЛЕННОГО (Hypericum perforatum L.) 2014
  • Милевкая Виктория Васильевна
  • Статкус Михаил Александрович
  • Темердашев Зауаль Ахлоович
RU2568912C1
СПОСОБ ВВЕДЕНИЯ В КУЛЬТУРУ IN VITRO, ПОЛУЧЕНИЯ КАЛЛУСОВ И РАСТЕНИЙ-РЕГЕНЕРАНТОВ ВЗДУТОПЛОДНИКА СИБИРСКОГО (PHLOJODICARPUS SIBIRICUS (STEPH.) К.-POL.), С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ В КАЧЕСТВЕ ПЕРВИЧНЫХ ЭКСПЛАНТОВ ВЕГЕТАТИВНЫХ И ГЕНЕРАТИВНЫХ ОРГАНОВ 2021
  • Филиппова Галина Валерьевна
  • Дарханова Валентина Гаврильевна
  • Строева Наталья Семеновна
  • Андросова Дария Николаевна
RU2771960C1
MURASHIGE T, A revised medium for rapid growth and with tohoco tissues cultures., Physiol

RU 2 786 911 C1

Авторы

Маслова Елена Владимировна

Семыкина Валерия Витальевна

Тимошичева Анастасия Васильевна

Даты

2022-12-26Публикация

2022-06-14Подача