СПОСОБ РАЗМНОЖЕНИЯ МАКЛЕИ СЕРДЦЕВИДНОЙ (MACLEAYA CORDATA (WILLD) R.BR.) (ВАРИАНТЫ) Российский патент 2005 года по МПК A01H4/00 

Описание патента на изобретение RU2264084C2

Изобретение относится к биотехнологии, в частности к способам размножения растений.

Известна разработка методов культивирования тканей копеечника забытого, включающая стерилизацию семян, проращивание их на питательной среде, включающей 0,1 мг/л индолилмасляной кислоты до получения пробирочных растений (см.: Н.С.Ляпкова, Н.В.Хадеева, С.С.Шаин, А.Н.Майсурян. «Разработка методов культивирования тканей копеечника in vitro», журнал «Биотехнология», 1999, №1, с. 55-61).

Известна разработка способов культивирования эфедры односемянной, включающая посадку семян и органов на питательную среду, получение каллусной культуры, морфогенного каллуса и растений-регенерантов (см.: Н.А.Величко. «Культивирование эфедры односемянной в условиях in vitro», журнал «Биотехнология», 2002, №5, с. 59-64).

Однако указанными способами культивирования не удается получить каллусную культуру маклеи сердцевидной (М. cordata (willd.) R.Br.), поскольку выполнение предлагаемых стадий культивирования приводит к некрозу ткани экспланта маклеи сердцевидной.

Наиболее близким по технической сущности и достигаемому положительному эффекту является способ микроразмножения женьшеня. Способ включает вычленение цветочных бутонов, культивирование их на питательной среде до образования зрелых эмбриоидов, посадку их на питательную среду для полного укоренения, высадку полученных растений-регенерантов на твердый субстрат. При этом цветочные бутоны вычленяют из соцветий, индуцированных предварительно при культивировании спящих почек корневища на питательной среде Мурасиге и Скуга (МС), содержащей в своем составе 0,5 мг/л - 6-БАП и 0,5 мг/л ГК3, а для получения укорененных растений-регенерантов эмбриоиды пересаживают на питательную среду Мурасиге и Скуга с половинным содержанием макроэлементов дополнительно - 4,0 мг/л - 6-БАП и 0,5 мг/л ГК3(см.: а.с.СССР №1824114, кл. А 01 Н 4/00, опубл. 30.06.93).

Однако при использовании данного способа так же происходит некроз ткани маклеи сердцевидной. Задачей предлагаемого способа является получение каллусной культуры и растения маклеи сердцевидной (Macleaya cordata (willd.) R. Br.).

Поставленная задача достигается с помощью предлагаемого способа размножения маклеи сердцевидной, включающего вычленение эксплантов, культивирование их на питательных средах до образования побегов, последующую высадку полученных растений-регенерантов на твердый субстрат, причем экспланты вычленяют из листьев или черешков, при этом культивирование проводят на модифицированных средах Мурасиге и Скуга, включающих аскорбиновую кислоту 1-3 мг/л и гидролизат казеина - 10 мг/л.

Сущность предлагаемого способа.

Способ состоит в том, что осуществляют получение эксплантов из исходного материала, стерилизацию их, введение в культуру на среде Мурасиге и Скуга, содержащей цитокинин кинетин и ауксин 2,4-дихлорфеноксиуксусную кислоту (2,4-Д), а также аскорбиновую кислоту и гидролизат казеина, размножение каллусной культуры, получение побегов на твердой питательной среде с последующей высадкой в теплицу для адаптации к нестерильным условиям. При этом в качестве исходного материала используют листья или черешки растений. Введение эксплантов в культуру осуществляют на среде Мурасиге и Скуга при содержании кинетина 0,5-1 мг/л, 2,4-Д - 2-4 мг/л, при этом адаптацию полученных растений в нестерильных условиях проводят в теплицах.

Пример 1. Размножение маклеи сердцевидной из листовых эксплантов.

Способ осуществляют на листовых эксплантах. Заготовленные побеги с листьями не рекомендуется хранить продолжительное время, а приступать к посадке эксплантов. В течение этого короткого промежутка времени побеги хранят при температуре 3-4°С.

Из листьев делают высечки диаметром 1 см. Перед посадкой экспланты стерилизуют, для чего их помещают в стерильный бокс и на 30-40 секунд, заливают 70% этанолом, затем на 7-15 минут (в зависимости от возраста листьев) помещают в 8%-ный раствор хлорамина, который отмывают в течение 15 минут в трех порциях стерильной дистиллированной воды. После этого с помощью стерильных пинцета и скальпеля удаляют концы сегментов исходного материала, где клетки могут быть повреждены.

Выделенные таким образом экспланты надсекают в нескольких местах скальпелем и помещают на питательную среду Мурасиге и Скуга (табл.1), содержащую (мг/л): мезоинозит - 100; никотиновая кислота - 1,0; тиамин - 0,5; пиридоксин - 0,5; кинетин - 0,5; 2,4-Д - 2,0; 6-бензиламинопурин - 0,5; аскорбиновая кислота - 1,0; гидролизат казеина 10. рН среды после автоклавирования 5,8.

Сроки каллусообразования и константа каллусообразования, рассчитанная по формуле Э.Люка (Люк Э., Ягер М. Консерванты в пищевой промышленности. - Санкт-Петербург, 1998) показаны в таблицах 2 и 3.

К=ln(Z0/Zt)/t;

где К - константа скорости каллусобразования;

Z0 - количество каллусов на начальном этапе каллусообразования;

Zt - количество каллусов на завершающем этапе;

t - количество дней от начала до завершения каллусообразования.

Показатели таблиц свидетельствуют о том, что наилучший результат получают при использовании в технологии получения каллуса маклеи сердцевидной на листовых эксплантах 2-го варианта питательных сред (представленного в примере).

В дальнейшем для индукции каллусогенеза на листовых эксплантах используют среду Мурасиге и Скуга №1 (табл.4).

Пробирки с высаженными эксплантами помещают в культуральную темновую комнату при температуре воздуха 25-27°С.

Через 12-15 дней у 50% высаженных эксплантов наблюдается начало каллусообразования, а через 20-25 дней на всех эксплантах образуется каллус. По прошествии 2-3 недель во избежание старения каллуса его пассируют на модифицированную среду Мурасиге и Скуга с тем же содержанием макро-, микроэлементов и витаминов, но с уменьшенным содержанием фитогормонов (табл.1, №4), мг/л: кинетин - 0,2; 2,4-Д - 1,0. рН 5,7-5,8. Размер пассируемого каллуса 0,1×0,1 см. Через 5-7 дней после пассажа наблюдается начало роста перенесенного каллуса.

В течение месяца каллус переносится на регенерационную среду Potato II, содержащую, мг/л: тиамин - 1,0; картофельный экстракт 20% (табл.4).

Каллус на регенерационной среде выращивается при температуре воздуха 25-27°С, фотопериоде 16 часов, освещенности 4000-6000 лк, относительной влажности воздуха 70-75%. В течение 1-1,5 месяцев отмечается развитие побегов из каллуса.

По истечении этого времени приступают к пересадке растеньиц. Коэффициент составляет 1:20. В течение 1-2 месяцев укореняется 64% растений. Асептические растения размножают черенкованием: развившиеся растения разрезают, оставляя на каждом отрезке 1 лист и почку в его пазухе. Этот микрочеренок помещают в пробирку со средой Мурасиге и Скуга №3 (табл.4) включающую, мг/л: тиамин - 1,6; пиридоксин - 1,0; кинетин - 0,5; аскорбиновая кислота - 3,0; гиббереллин 2,0; аденин 0,5. Для наилучшего укоренения черенковых побегов в среду добавляют индолил-3-уксусную или индолил-3-масляную кислоту в концентрации 1-2 мг/л.

Перенос растений из пробирок осуществляется в рулоны, заполненные торфом. Для этого целлофановую ленту размером 15×40 см надрезают в нескольких местах по центру. Ленту заполняют торфом, слой которого равен 0,5-1 см. На субстрат выкладывают растения маклеи через каждые 4-5 см. Ленту сворачивают в рулон и устанавливают в поддон глубиной 2-3 см. Полив производят 1% раствором индолил-3-уксусной или индолил-3-масляной кислотой.

После того как происходит адаптация растений и появляется 1-2 новых листа, растения высаживают в вегетационные сосуды диаметром 9 см. При высоте растений 10-15 см их пересаживают в теплицу. Экстремальные условия исключают путем проветривания теплицы и поливов. Условия произрастания растений в теплице максимально приближают к естественным условиям. Высадку растений в открытый грунт производят при прогревании почвы до 12-14°С.

Пример 2. Размножение маклеи сердцевиной из черешковых эксплантов.

Способ осуществляют на черешковых эксплантах, отличающийся составом питательной средой для начального культивирования.

Из черешков маклеи сердцевидной делают высечки длиной 1 см. Перед посадкой экспланты стерилизуют, как описано в примере 1. У стерильных эксплантов удаляют концы сегментов исходного материала, где клетки могут быть повреждены.

Выделенные таким образом экспланты помещают на питательную среды Мурасиге и Скуга (табл.1), содержащую (мг/л): мезо-инозит - 100; никотиновая кислота - 1,0; тиамин - 10,0; пиридоксин - 1,0; кинетин - 1,0; 2,4-Д - 4,0; аскорбиновая кислота - 3,0. рН среды после автоклавирования 5,8.

Сроки каллусообразования и константа каллусообразования, рассчитывали по формуле Э.Люка, приведенной в примере 1.

Показатели таблиц 2 и 3 свидетельствуют о том, что наилучший результат получают при использовании в технологии получения каллуса на черешковых эксплантов маклеи сердцевидной 3 варианта питательной среды.

В дальнейшем для индукции каллусогенеза на черешковых эксплантах используют среду Мурасиге и Скуга №2 (табл.4).

Последующие приемы культивирования каллусной культуры и растения маклеи сердцевидной из черешковых эксплантов аналогичны приемам культивирования каллусной культуры из листовых эксплантов.

Предлагаемое изобретение по сравнению с прототипом и другими известными способами имеет следующие преимущества:

- возможность получения каллусной культуры и растения маклеи сердцевидной вне зависимости от погодных и климатических условий;

- использование для размножения вегетативных органов маклеи сердцевидной;

- низкая себестоимость.

Таблица 1
Состав питательных сред для образования первичного каллуса маклеи сердцевидной (минеральная основа МС), мг/л
Компоненты средыВарианты средМС+ vit В5+ 2,4-ДМС+ vit C + гидр. Казеина +2,4-Д + кинетинMC+vit B5+vit С+2,4-Д + кенетинМС+2,4-Д + кинетин12345МакросолиNH4NO31650165016501650KNO31900190019001900КН2PO4170170170170CaCl2·2Н2O440440440440MgSO4·7H20370МикроэлементыMnSO4·4H2O22,322,322,322,3Н3ВО36,26,26,26,2ZnSO4·7H2O8,68,68,68,6KI0,830,830,830,83CuSO4·5H2O0,0250,0250,0250,025Na2MoO4·2H2O0,250,250,250,25CoCl2·6H2O0,0250,0250,0250,025ЖелезоFeSO4·7H2O27,827,827,827,8Na2ЭДТА·2H2O37,337,337,337,3Органические добавкиМезоинозит100,0100,0100,0100,0Никотиновая кислота1,01,01,00,5Тиамин HCl10,00,510,01,0Пиридоксин HCl1,00,51,00,5Аскорбиновая кислота0,51,03,00Гидролизат казеина-10--ФитогормоныКинетин00,51,00,26-БАП00,5002,4-Д2,02,04,02,0УглеводыСахароза20000200002000020000СубстратАгар-агар7000700070007000

Таблица 2
Сроки образования каллуса на питательных средах
ЭксплантыВарианты сред1234MC+vit В5+2,4-ДMC+vitC+гидр. казеина +2,4-Д + кинетинMC+vitB5+ vitC +2,4-Д +кинетинМС + 2,4-Д+ +кинетинКоличество днейЛистовые25-3512-2015-2520-35Черешковые20-3015-2510-2020-35

Таблица 3
Константа скорости каллусообразования, в зависимости от среды
Вид эксплантаВарианты сред1234MC+vit B5+2.4-ДMC+vit С + гидр. казеина +2.4-Д + кинетинMC+vit B5+vit C+ +2.4-Д+ +кинетинМС+ 2.4-Д+ +кинетинКонстанта скоростиЛистовые0,020,030,020,02Черешковые0,020,020,030,02

Таблица 4
Состав питательных сред, используемых в работе
Компоненты средыКоличество, мг/л (мл/л)Мурасиге и Скуга(1)Мурасиге и Скуга(2)Мурасиге и Скуга(3)Potato II12345МакросолиNH4NO3165016501320850KNO3190019001520900КН2PO4170170136100CaCl2·2H2О440440352200MgSO4·7H2O370370296200МикроэлементыMnSO4·4H2O22,322,344,6-Н3ВО36,26,212,4-ZnSO4·7H2O8,68,617,2-KI0,830,831,66-CuSO4·5H2O0,0250,0250,05-Na2MoO4·2H2O0,250,250,5-CoCl2·6H2O0,0250,0250,05-ЖелезоFeSO4·7H2O27,827,827,827,8Na2ЭДТА·2Н2O37,337,337,337,3Органические добавкиМезоинозит100,0100,0100,0-Никотиновая кислота1,01,0--Тиамин HCl1,010,01,61,0Пиридоксин HCl1,01,01,0-Аскорбиновая кислота1,03,03,0-Аденин--0,5-ФитогормоныИУК (ИМК)--2,0-Кинетин0,51,00,5-6-БАП0,50,5--Гиббереллин (ГК3)--2,0-2,4-Д2,04,0-УглеводыСахароза30000200002000030000СубстратАгар-агар7000700070007000Гидролизат казеина100---Картофельный экстракт---400рН после автоклавирования5,85,85,85,8

Похожие патенты RU2264084C2

название год авторы номер документа
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ IN VITRO СЕЛЕКЦИОННОЙ ПОПУЛЯЦИИ РЕГЕНЕРАНТОВ ПРИ САМОКЛОНАЛЬНОМ СОРТОУЛУЧШЕНИИ КАРТОФЕЛЯ 1992
  • Анненков Б.Г.
  • Белуга Т.А.
RU2080779C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ РАСТЕНИЙ - РЕГЕНЕРАНТОВ IN VITRO 1992
  • Внучкова В.А.
  • Аш О.А.
RU2027757C1
СПОСОБ ВВЕДЕНИЯ В КУЛЬТУРУ КЛЕТОК ЛЬНА МНОГОЛЕТНЕГО 2012
  • Литвинова Илина Игоревна
  • Гладков Евгений Александрович
  • Гладкова Ольга Николаевна
RU2506741C1
Способ регуляции морфогенетической активности каллусной ткани лекарственных растений in vitro 2022
  • Киракосян Рима Нориковна
  • Калашникова Елена Анатольевна
RU2798292C1
Способ микроклонального размножения карельской березы 1989
  • Бутова Галина Павловна
  • Табацкая Татьяна Михайловна
  • Скробова Людмила Леонидовна
SU1597386A1
СПОСОБ МИКРОКЛОНАЛЬНОГО РАЗМНОЖЕНИЯ ИРИСА СИБИРСКОГО (I.SIBIRICA L.) 2011
  • Тихомирова Людмила Ивановна
  • Смирнов Сергей Владимирович
  • Куцев Максим Геннадьевич
RU2479992C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ РАСТЕНИЙ-РЕГЕНЕРАНТОВ RAUWOLFIA CENESCENS L. В КУЛЬТУРЕ ТКАНЕЙ 1988
  • Николаева Л.А.
  • Антипова Е.А.
  • Смирнов В.А.
  • Смирнова В.В.
SU1566722A1
ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ КАЛЬЦЕФИЛЬНЫХ РАСТЕНИЙ В КУЛЬТУРЕ IN VITRO 2014
  • Крицкая Татьяна Алексеевна
  • Блюднева Елена Александровна
  • Кашин Александр Степанович
RU2552174C1
СПОСОБ РАЗМНОЖЕНИЯ ГРЕЧИХИ IN VITRO С ПОЛУЧЕНИЕМ СЕЛЕКЦИОННО-ЦЕННЫХ СОМАКЛОНОВ 2002
  • Барсукова Е.Н.
  • Фисенко П.П.
  • Моисеенко Л.М.
RU2229219C2
СПОСОБ РЕГЕНЕРАЦИИ РАСТЕНИЙ СОРГО В КУЛЬТУРЕ IN VITRO 1999
  • Эльконин Л.А.
RU2175189C2

Реферат патента 2005 года СПОСОБ РАЗМНОЖЕНИЯ МАКЛЕИ СЕРДЦЕВИДНОЙ (MACLEAYA CORDATA (WILLD) R.BR.) (ВАРИАНТЫ)

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано в селекции растений. Для получения каллусной культуры растения маклеи сердцевидной вычленяют экспланты из листьев или черешков растения и культивируют их на питательных средах до образования побегов. Листовые экспланты культивируют на модифицированной среде Мурасиге и Скуга, содержащей 1 мг/л аскорбиновой кислоты и 10 мг/л гидролизата казеина, а черешковые - на аналогичной среде, содержащей 3 мг/л аскорбиновой кислоты. Регенеранты высаживают на твердый субстрат. 2 н.п. ф-лы, 4 табл.

Формула изобретения RU 2 264 084 C2

1. Способ размножения маклеи сердцевидной in vitro, включающий вычленение эксплантов из листьев растения, культивирование их на питательных средах до образования побегов и последующую высадку полученных растений-регенерантов на твердый субстрат, при этом культивирование листовых эксплантов проводят на модифицированной среде Мурасиге и Скуга, содержащей 1 мг/л аскорбиновой кислоты и 10 мг/л гидролизата казеина.2. Способ размножения маклеи сердцевидной in vitro, включающий вычленение эксплантов из черешков растений, культивирование их на питательных средах до образования побегов и последующую высадку полученных растений-регенерантов на твердый субстрат, при этом культивирование черешковых эксплантов проводят на модифицированной среде Мурасиге и Скуга, содержащей 3 мг/л аскорбиновой кислоты.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 2005 года RU2264084C2

СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ IN VITRO СЕЛЕКЦИОННОЙ ПОПУЛЯЦИИ РЕГЕНЕРАНТОВ ПРИ САМОКЛОНАЛЬНОМ СОРТОУЛУЧШЕНИИ КАРТОФЕЛЯ 1992
  • Анненков Б.Г.
  • Белуга Т.А.
RU2080779C1
Штамм культивируемых клеток растений UNGeRNIa VIстоRIS - продуцент алкалоидов группы галантамина и ликорина 1990
  • Александрова Инесса Васильевна
  • Гордонова Ирина Константиновна
  • Тулакин Владимир Геннадьевич
  • Усманов Пулат Джураевич
  • Соложенкин Петр Михайлович
SU1806188A3
US 4473648 A, 25.09.1984
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ТРАНСГЕННОГО РАСТЕНИЯ КУКУРУЗЫ 1991
  • Ландквист Роналд С.
  • Уолтерс Дэвид А.
  • Кирихара Джули А.
RU2114911C1
Способ микроразмножения женьшеня 1990
  • Журавлев Юрий Николаевич
  • Гетманова Елена Станиславовна
  • Музарок Тамара Игнатьевна
  • Булгаков Виктор Павлович
SU1824114A1

RU 2 264 084 C2

Авторы

Брыкалов А.В.

Мазницына Л.В.

Браткова Л.Г.

Каширин А.И.

Даты

2005-11-20Публикация

2003-12-01Подача