Штамм Chlamydia abortus "Chlamydia VNITIBP-21" для производства иммунобиологических лекарственных препаратов Российский патент 2023 года по МПК C12N1/20 C12R1/01 A61K39/02 

Описание патента на изобретение RU2798283C1

Настоящее изобретение относится к области микробиологии, ветеринарии, биотехнологии, фармации, в частности к новому штамму Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21», используемому для изготовления инактивированных вакцин и получения специфических диагностических сывороток и глобулинов и в качестве антигена для обнаружения антител к хламидиозу сельскохозяйственных животных. Заявленное изобретение может быть использовано в фармацевтической промышленности, сельском хозяйстве, а также в научно-исследовательской деятельности.

Уровень техники

Chlamydia abortus эта грамотрицательная бактерия являющаяся облигатным внутриклеточным патогеном эукариотических клеток. Эта бактерия имеет две мембраны и не имеет жгутиков. При попадании в окружающую среду через влагалищные выделения бактерии остаются живыми и могут легко распространяться, заражая другие организмы.

Chlamydia abortus обнаруживается у коров, коз, овец и свиней, где она вызывает прерывание беременности на более поздних сроках беременности путем колонизации в плаценте.

Chlamydia abortus является причиной энзоотического аборта у овец (ОЕА). Этот патоген с зоонозным потенциалом признан основной причиной репродуктивной недостаточности у мелких жвачных и других домашних животных [1-2].

Заболевание оказывает значительное экономическое влияние, поскольку представляет собой наиболее важную причину потери потомства у овец в некоторых частях Европы, Северной Америки, Африки Европе и других частях мира. Chlamydia abortus представляет потенциальный риск для беременных женщин, поскольку известно о нескольких случаях абортов после контакта с ягнящимися овцами или козами, заражнными Chlamydia abortus [3-5].

Из уровня техники известен штамм Chlamydia psittaci, используемый для изготовления вакцины против хламидиоза кошек [6]. Недостатком данного штамма является то, что изготовленная из него живая вакцина обладает остаточной реактогенностью, и как следствие, не очень высокой иммуногенностью.

Штамм Chlamydia psittaci К-1 ДЕП известен в РФ для изготовления вакцины против хламидиоза кошек и пушных зверей [7].

Из уровня техники известен другой штамм Chlamydia abortis bovis при использовании которого, была изготовлена ассоциированная вакцина для профилактики респираторных заболеваний крупного рогатого скота, содержащая вирусы инфекционного ринотрахеита и диареи, антиген хламидий из штамма Chlamydia abortis bovis «К-8 ВИЭВ» в титре 106,5-7,5 ЭЛД50/мл, формалин и адъювант на основе минерального масла и ланолин [8].

Аналогом заявленного технического решения, был выбран штамм Chlamydia abortis bovis.

Недостатком выбранного аналога является непригодность в использовании для изготовления диагностикумов и для получения эффективных вакцин против патологий воспроизводства и других репродуктивных нарушений у овец, вызванных Chlamydia abortis, на территории Российской Федерации из-за отличий в антигенной структуре и по иммунобиологическим свойствам.

До настоящего времени неизвестны выделенные изоляты эпизоотического штамма Chlamydia abortus, гомологичного штамма для изготовления диагностических и вакцинных препаратов.

Создание и получение нового вирулентного штамма Chlamydia abortus (хламидия), выделенного в Российской Федерации и обладающего стабильными культуральными свойствами и высокой биологической, иммуногенной антигенной активностью и используемый для производственного изготовления лечебно-профилактических и диагностических препаратов, что позволит усовершенствовать стратегии борьбы с этой проблемой, включая более эффективную диагностику и меры профилактики.

Раскрытие сущности изобретения

Технической задачей является получение штамма Chlamydia abortus (хламидий), обладающего стабильной инфекционной, антигенной и иммуногенной активностью, который может быть использован для изготовления иммунологических лечебно-профилактических препаратов, иммуноглобулинов и в качестве антигена для обнаружения антител к хламидиозу сельскохозяйственных животных.

Технический результат заключается в получении штамма хламидий, обладающего стабильной инфекционной, антигенной и иммуногенной активностью, который может быть использован для изготовления инактивированных вакцин для профилактики энзоотического аборта у овец (ОЕА); для получения специфических диагностических сывороток, иммуноглобулинов, в качестве антигена для обнаружения антител к хламидиозу сельскохозяйственных животных.

Используемые термины и определения.

Мембранная фильтрация - это процесс разделения под давлением, в котором используются мембраны для разделения компонентов в жидком растворе или суспензии в зависимости от их размера и различий в заряде. Ультрафильтрация представляет собой разновидность мембранной фильтрации, при которой гидростатическое давление прижимает жидкость к полупроницаемой мембране. Растворитель и низкомолекулярные растворенные вещества проходят через мембрану и называются пермеатом, тогда как взвешенные твердые частицы и высокомолекулярные растворенные вещества задерживаются (ретентат) [9-10].

Тангенциальная фильтрация - жидкость прокачивается тангенциально вдоль поверхности мембраны. Приложенное давление служит для проталкивания части жидкости через мембрану на сторону фильтрата. В тангенциальной фильтрации удерживаемые компоненты не накапливаются на поверхности мембраны, вместо этого они уносятся тангенциальным потоком.

Основными применениями тангенциальной фильтрации являются концентрирование, диафильтрация (обессоливание и замена буфера) и фракционирование крупных биомолекул из малых. Установки тангенциальной фильтрации также используются для осветления и удаления клеток или клеточного детрита из клеточной культуры или ферментационной среды.

Тангенциальная ультрафильтрация описана в источнике [11].

Диафильтрацией называется фильтрация продукта мембранными фильтрующими средствами с подачей вымывной жидкости к продукту, в результате чего уменьшается концентрация прошедших через фильтры компонентов продукта, т.е. происходит вымывание этих веществ без неизбежного повышения концентрации не прошедших через фильтры компонентов продукта или его концентрирование. В качестве вымывной жидкости используют посторонние для продукта вымывные жидкости, подаваемую отдельно воду или растворитель, собственный для продукта пермеат, отбираемый, например, у подключенной ступени диафильтрации, или смесь обоих [12-13].

Штамм Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» выделен в 2021 г. из внутренних тканей абортированного плода овцы в животноводческом хозяйстве д. Турма, Медведевского района Республики Марий Эл, где наблюдались случаи абортов, мертворождения и появления нежизнеспособных плодов у овец. Штамм адаптирован к размножению в куриных эмбрионах (КЭ) и перевиваемых линиях культур клеток, прошел 25 пассажей при последовательном культивировании на желточных оболочках КЭ.

В 2021 году штамм Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» депонирован в коллекции микроорганизмов Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр - Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко (ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН), регистрационный номер В-1371 (Свидетельство о депонировании №29 от 26 ноября 2021 г. Chlamydia abortus «VNITIBP-21»).

Штамм Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21», характеризуется следующими признаками и свойствами.

Морфологические признаки. Элементарные тельца округленной формы диаметром 0,2-0,3 мкм, ретикулярные - 0,5-0,7 мкм, окрашиваются по Стемпу, Маккиавелло и Романовскому-Гимзе. Окраска по Стемпу придает элементарным тельцам хламидий красно-фиолетовый цвет на синем фоне препарата; по Маккиавелло хламидии окрашиваются в ярко-красный цвет, клетки патологического материала - в светло-синий, ядра клеток - в томно-синий цвет; по Романовскому-Гимзе элементарные включения хламидий приобретали красно-фиолетовый цвет, а ретикулярные тельца пораженной клетки - синий, ядра клеток - бордово-фиолетовый и их цитоплазма - голубой.

Штамм Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» - это грамотрицательные бактерии, шаровидной формы, не образуют спор, нет жгутиков и капсулы. Клеточная стенка состоит из 2-х слойной мембраны. Имеют гликолипиды, основной метод окраски по Романовскому-Гимзе. Бактерии имеют 2 формы существования: элементарные тельца (неактивные инфекционные частицы, вне клетки); ретикулярные тельца (внутри клеток, вегетативная форма).

Биологические свойства. Штамм Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» хорошо размножается в желточных оболочках 6 - 7-дневных куриных эмбрионов или в перевиваемой культуре клеток McCoy. Титр хламидий при культивировании на указанных биологических субстратах при температуре 36 - 37°С в течение 40 -48 часов достигает максимальных значений 6,0±0,01 lg ТЦИД50/мл. При репродукции в перевиваемой культуре клеток накапливается на 25 пассаже на уровне 5,5±0,5 lg ТЦИД50/мл. В культуре клеток McCoy штамм не вызывает цитопатического действия. Штамм пассируется в организме белых мышей при интраназальном, внутрибрюшинном и интрацеребральном путях заражения.

К заявленному штамму Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» восприимчивыми животными (естественно-восприимчивыми и лабораторными) являются овцы, козы, кролики, коровы, свиньи, лошади.

Антигенные свойства. При интраназальном введении в организме кроликов или мышей штамм Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» индуцирует образование антител в титре от 1:256 до 1:512 в реакции связывания комплимента (далее - РСК). Имеется видоспецифический и общий для всех хламидии группоспецифические антигены. При окраске возбудителя по Маккиавелло и Романовскому-Гимзе морфология типична для Chlamydia abortus. В РСК со специфическими диагностическими сыворотками аборта овец в разведении 1:40 активность (титр) антигена не менее 1:64; в разведении сыворотки 1:80 активность (титр) антигена не менее 1:128.

Заявленный штамм сохраняет стабильную инфекционную и антигенную активность. Стабилен по антигенным и генетическим характеристикам при пассировании на клеточной культуре McCoy в течении 20 пассажей (срок наблюдения), в желточных мешках 6-7 дневных развивающихся КЭ в течении 15 пассажей (срок наблюдения).

Иммуногенность заявленного штамма проверяли на белых мышах (нелинейные лабораторные мыши ICR (CD-1)). Размещение, содержание и уход за лабораторными грызунами, используемыми в научных целях проводили согласно ГОСТ 33216-2014 «Руководство по содержанию и уходу за лабораторными животными. Правила содержания и ухода за лабораторными грызунами и кроликами»[14].

Молодых животных, здоровых и равных по весу и возрасту разделяли на девять групп от 7-10 мышей в каждой, где с первой по третью группам вводили двукратно с интервалом 3 недели инактивированный антиген Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» с содержанием белка 20-40 мг/мл, другим группам (с четвертой по шестую) вводили двукратно с интервалом 3 недели антиген Chlamydia abortis «Chlamydia VNITIBP-21» с содержанием белка 40-60 мг/мл, следующим группам (с седьмой по девятую) двукратно с интервалом 3 недели вводили Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» с содержанием белка 60-80 мг/мл. Были сформированы три контрольные группы по 7-10 из не иммунизированных животных.

Индекс резистентности ≥2,5. Изготовленный из штамма Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» антиген в инактивированной адсорбированной эмульгированной вакцине обеспечивает формирование у привитых животных напряженного и длительного иммунитета.

В экспериментальных опытах на белых мышах установлено, что двукратная иммунизация вакциной на основе штамма Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» предохраняла белых мышей от развития хламидиозной инфекции после искусственного (экспериментального) заражения на 93-95% известным штаммом Chlamydia abortis bovis «К-8 ВИЭВ» и на 90-93% от штамма Chlamydia psittaci «К-8-К ВИЭВ».

Патогенные свойства. Штамм Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» патогенен для белых мышей, куриных эмбрионов и для овец.

После заражения культурой штамма у больных животных отмечают явления анорексии, ринита, конъюнктивита, паралича конечностей, а также аборты, рождение мертвых детенышей. Полную гибель белых мышей (100%) устанавливают на 6 - 10 сутки.

Штамм Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» устойчив к действию стрептомицина; чувствителен к действию антибиотиков тетрациклинового ряда, в меньшей степени - пенициллина (см. табл. 2).

Штамм Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» сохраняет стабильную инфекционную и антигенную активность на протяжении 25 пассажей.

Штамм Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» сохраняет свои биологические свойства в течение одного года при температуре минус 70°С, в лиофилизированном виде - не менее 3 лет.

Штамм Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» свободен от бактериальных, грибковых, микроплазменных и вирусных контаминантов.

Штамм Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» применяют для изготовления (производства) иммунологических лекарственных препаратов: вакцин, диагностических сывороток.

В вакцинных композициях на основе штамма Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» могут быть использованы масляные адъювантные композиции типа вода-в-масле или вода-масло-вода или масло-в-воде [15-16].

Возможность осуществления заявленного изобретения раскрыта в следующих примерах.

Пример 1. Культивирование и выделение штамма Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» с использованием куриных эмбрионов.

Исходным материалом для выделения штамма послужила 20-25% суспензия из растертых тканей абортированного плода овцы в 0,01-0,02 М фосфатно-буферном растворе с рН 7,2-7,4.

Суспензию растертых тканей получают путем растирания внутренних органов абортированного плода овцы до гомогенного состояния с использованием любых известных специалисту из данной области материалов, приборов и/или устройств.

Для выделения штамма Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» использовали куриные эмбрионы 6-8-дневного возраста, мембраны их желточных мешков инокулировали тканевой суспензией (0,2 мл) внутренних органов абортированных плодов по процедуре известной специалисту из данного уровня техники. Изоляты хламидий размножали в эпителиальных клетках желточных оболочек куриных эмбрионов, вызывая их гибель на 5-10 день после заражения, достигая инфекционного титра до 106,5 ЭЛД50/0,3 мл. Очистку и концентрирование возбудителя хламидиоза производили путем тангенциальной ультрафильтрации. Концентрированный антиген Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» имеет титр в реакции связывания комплимента 1:128-1:256. Далее инактивированный кипячением 15-20 минут, концентрированный материал для экстракции антигена обрабатывают известным специалисту из данной области техники эфирно-ацетоновой экстракцией.

Было выделено несколько изолятов Chlamydia Abortus (хламидий) из внутренних органов абортированного плода овцы, одному из наиболее продуктивных, иммуногенных и антигенных было присвоено название - штамм Chlamydia Abortus «Chlamydia VNITIBP-21».

Пример 2. Определение чувствительности к антибиотикам штамма Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21».

Использовали известный метод определения чувствительности к антибиотикам-диффузионный метод с использованием стандартных бумажных дисков с антибиотиками.

Заявленный штамм Chlamydia Abortus «Chlamydia VNITIBP-21» наиболее устойчив к действию стрептомицина; наиболее чувствителен к действию антибиотиков тетрациклинового ряда, в меньшей степени к пенициллину из антибиотиков пенициллинового ряда.

Пример 3. Подтверждение иммуногенных свойств штамма Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21»

Для подтверждения иммуногенных свойств штамма Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» сравнивали со штаммами Chlamydia abortis bovis «К-8 ВИЭВ» и Chlamydia psittaci «К-8-К ВИЭВ».

Подтверждение иммуногенных свойств заявленного штамма, проводили на белых нелинейных лабораторных мышах путем внутрибрюшинного двукратного введения им инактивированного антигена в дозе 0,4-0,5 мл. Были отобраны здоровые молодые лабораторные мыши одинаковые по весу и возрасту (размещение, содержание и уход согласно ГОСТ 33216-2014). Отобранных мышей разделили на девять групп не менее 7-10, где первым трем группам мышей вводили антиген Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» с содержанием белка 20-40 мг/мл, следующим трем группам мышей вводили антиген Chlamydia abortis «Chlamydia VNITIBP-21» с содержанием белка 40-60 мг/мл, следующим трем группам мышей вводили Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» с содержанием белка 60-80 мг/мл. Были сформированы три контрольные группы (одинаковые по возрасту и весу) по 7-10 из не иммунизированных животных. По истечении 21-28 дней после последней иммунизации опытных и контрольных мышей заражают интраназально 10% взвесью желточных оболочек куриных эмбрионов, инфицированных штаммом хламидий.

Одну контрольную группу А, опытные группы мышей 1-ую, 4-ую и 7-ую заражали штаммом Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» с инфекционной активностью 105,0-105,5 ЭЛД50/0,3 мл в дозе 0,05 мл. Контрольную группу В, опытные группы мышей 2-ую, 5-ую и 8-ую заражали Chlamydia abortis bovis «К-8 ВИЭВ» с инфекционной активностью 105,0-105,5 ЭЛД50/0,3 мл в дозе 0,05 мл. Контрольную группу С, опытные группы мышей 3-ью, 6-ую и 9-ую заражали Chlamydia psittaci «К-8-К ВИЭВ» с инфекционной активностью 105,0-105,5 ЭЛД50/0,3 мл в дозе 0,05 мл. В контрольных группах А, В и С у невакцинированных мышей наблюдалась 100% гибель после заражения. Результаты данного опыта представлены в таблице 3.

Вывод. В результате проведенных исследований было доказано, что двукратное внутрибрюшинное введение инактивированных хламидий штамма Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» защищает 98,5-99,5% белых мышей от интраназального заражения этим штаммом, на 93-95% от заражения известным штаммом Chlamydia abortis bovis «К-8 ВИЭВ» и на 90-93% от заражения штаммом Chlamydia psittaci «К-8-К ВИЭВ» (см. табл. 3).

Пример 4. Подтверждение антигенных свойств штамма Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21».

Антигенную активностью штамма Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» подтверждают в реакции связывания комплемента путем сравнения титров антител в гипериммунных сыворотках морских свинок, полученных к штаммам хламидий: Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21», Chlamydia abortis bovis «К-8 ВИЭВ», Chlamydia psittaci «К-8-К ВИЭВ» (при двукратной иммунизации с интервалом 3 недели в дозе 0,9-1,0 мл), а также антигенов из этих штаммов. Характеристика антигенности указанного штамма в сравнении с другими известными штаммами представлена в таблице 4.

Приведенные данные подтверждают, что антигенная активность при исследовании с гомологичной сывороткой штамма Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» превосходит в два раза известные штамм Chlamydia abortis bovis «К-8 ВИЭВ» и штамм Chlamydia psittaci «К-8-К ВИЭВ».

Пример 5. Получение вакцины из инактивированного культурального сырья из штамма Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» с применением роллерного метода культивирования.

Вакцину против хламидиоза инактивированную эмульсионную готовят из матровой расплодки штамма Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» (см. пример 1), которую используют для заражения перевиваемой культуре клеток McCoy 2-3-суточного возраста с концентрацией более 100000 кл/мл и получение посевной расплодки. Выращенные хламидии соответствуют следующим требованиям: титр инфекционности после репродукции в монослое клеток McCoy не менее 5,0 lg ТЦИД50/мл, рН 7,2-7,4 и при отсутствии контаминации.

Монослой клеток McCoy диссоциируют посредством трипсинизации (смесью трипсина и версена) из конфлюэнтных (сливающихся) культур, а затем переносят в среду ДМЕМ, содержащую 5% фетальной телячьей сыворотки, не загрязненную пестивирусом (среда ДМЕМ), с конечной концентрацией около 400000 клеток на 1 мл. Фракции этой суспензии аликвотами по 100 мл смешивают с 20-миллилитровыми аликвотами фракций матровой расплодки штамма Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» и окончательную смесь после предварительной выдержки в течение 1-2 часов при температуре 37°С для адсорбции хламидий переносят в роллерные сосуды. Добавляют питательную среду ДМЕМ с 5% фетальной сыворотки и антибиотиком (гентамицин в концентрации 50 мкг/мл или его аналоги) и затем инкубируют при температуре 37°С в течение 76-92 часов в атмосфере CO2.

После этой последней инкубации роллерные сосуды подвергают трем последовательным циклам замораживания/оттаивания. Полученный материал освобождают от клеточного детрита центрифугированием при 1000 об/мин в течение 20 минут. Очищенная от детрита суспензия должна иметь вид прозрачной жидкости розовато-вишневого цвета. Полученный материал контролируют на инфекционную активность.

Очищенную суспензию подвергают инактивации. Инактивацию проводят формалином в количестве 0,14-0,16% и в течение 120-122 часов при температуре 37°С.

Эмульсионную вакцину готовят путем смешивания культурального инактивированного сырья - штамма хламидий Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» и масляного адъюванта в виде эмульсии типа вода-масло-вода.

К полученному таким образом инактивированному сырью добавляют масляный адъювант - остальное, и тщательно перемешивают, и получают вакцину при следующем соотношении компонентов, масс %:

Культуральная инактивированная смесь, включающая штамм хламидий Chlamydia abortus 50,00 «Chlamydia VNITIBP-21» (антиген) Масляный адъювант остальное.

Приготовленная таким образом вакцина представляет собой эмульсию бледно-розового цвета.

Полученную вакцину фасуют в стерильных условиях в стеклянные флаконы по 2,0, укупоривают, и контролируют в соответствии с требованиями на стерильность, безвредность и антигенную активность. Флаконы, содержащие полученную вакцину упаковывают в наборы, в которые вкладывают инструкцию по применению.

Вакцину проверяют на стерильность посевом на следующие питательные среды: МПБ, МПА, МППБ, среду Сабуро и тиогликолевую среду. Во всех случаях роста микрофлоры не отмечается.

Вакцина сохраняет свои биологические свойства в течение 18 месяцев при условии хранения в сухом, темном помещении при температуре 4 - 8°С.

Пример 6. Подтверждение безвредности заявленной вакцины.

Заявленную вакцину вводят внутримышечно в двукратной дозе от оптимальной дозы пяти морским свинкам, отобранным в соответствии с ГОСТ 33216-2014. В течение 14 дней наблюдали за изменением поведения животных.

Вывод. Все животные живы и здоровы, поведение соответствует физиологической норме.

Пример 7. Определение антигенной активности вакцины.

Для оценки антигенной активности вакцину вводят серонегативным к хламидийной инфекции четырем овцам 3-5 месячного возраста романовской породы с соблюдением правил асептики и антисептики внутримышечно в объеме 2,0 мл. До иммунизации и через 21 день после вакцинации от животных отбирают кровь и сыворотку исследуют на наличие специфических антител в ИФА с использованием диагностического набора «Непрямой иммуноферментный анализ для обнаружения антител, направленных против Chlamydophila abortus у жвачных животных, свиней и лошадей» («ID Screen® Chlamydophila abortus Indirect Multi-species») производства ID.Vet., Франция, согласно инструкции производителя. Учет результатов наличия антител к хламидиям в лаборатории проводят по оценке процентного отношения S/P (исследуемый образец/позитивное отношение), используя при спектрофотометрии длину волны 405 нм. Расчет S/P производят по формуле, указанной в инструкции производителя. Результат анализа проб, имеющих процентное значение S/P:

- меньший либо равный 50% считается отрицательным;

- между 50% и 60% считается неопределенным;

- больший либо равный 60% считается положительным.

Результаты исследований свидетельствуют о том, что до иммунизации в сыворотках крови овец антител к хламидиям не было выявлены, а через 21 день после вакцинации во всех 4 пробах выявляли специфические антитела -отношение S/P значительно превышала 60% (от 78 до 84).

Таким образом, полученная вакцина инактивированная эмульсионная из штамма Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21» является стерильным, безвредным препаратом и обладает достаточной антигенной активностью. Однократное введение вакцины обеспечивает высокий уровень антител в сыворотке крови у привитых животных.

Пример 8. Определение иммуногенной активности вакцины на лабораторных животных-мышах.

Формируют 2 группы белых мышей живой массой 18 - 20 г по 20 голов в каждой. Белых мышей 1-ой группы прививают подкожно в дозе 0,2 мл инактивированной вакциной против хламидиоза из штамма Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21», приготовленной по примеру 5.

Белых мышей 2-ой группы не прививают (контроль). На 21 сутки после вакцинации лабораторных животных 1 и 2 группы заражают подкожно в дозе 0,3 мл культурой подтитрованного контрольного штамма Chlamydia abortus с титром 106,5 ЭИД50/0,3 мл. Не устанавливают гибель белых мышей в 1-ой опытной группе и устанавливают полную гибель белых мышей (100%) во 2-й контрольной группе.

Пример 9. Определение иммуногенной активность вакцины на целевых животных.

Высокая иммуногенная активность заявляемой вакцины подтверждена также в остром опыте на восприимчивых животных суягных овцематках. В опыт были отобраны 60 суягных овцематок из хозяйства благополучного по сальмонеллезу, хламидиозу, кампилобактериозу и лептоспирозу. Вакцина против хламидиоза предохраняла от абортов 100% овцематок, после их заражения полевым изолятом. В невакцинированных группах (7 голов) от хламидиоза абортировало 5 голов из 7, от двух голов получены 2 нежизнеспособных приплода.

Таким образом, вакцинация овцематок вакциной против хламидиоза, обеспечивает 100%-ную иммунологическую защиту от этих заболеваний.

Пример 10. Определение иммуногенной активности вакцины на последнем месяце срока годности (18 месяц).

Формируют 2 группы белых мышей живой массой 18 - 20 г по 20 голов в каждой. Белых мышей 1-ой группы прививают подкожно в дозе 0,2 мл заявленной инактивированной вакциной после ее хранения, на последнем месяце срока годности вакцины (см. пример 5).

Белых мышей 2-ой группы не прививают (контроль). На 21 сутки после вакцинации лабораторных животных 1 и 2 группы заражают подкожно в дозе 0,3 мл культурой подтитрованного контрольного штамма Chlamydia abortus с титром 106,5 ЭИД50/ 0,3 мл. Не устанавливают гибель белых мышей в 1-ой опытной группе и устанавливают полную гибель белых мышей (100%) во 2-й контрольной группе.

Вывод. Вакцина сохраняет иммуногенную активность на 18 месяце хранения.

Все приведенные примеры подтверждают реализацию технического решения.

Представленные примеры не ограничивают объем притязаний настоящего изобретения и служат только для цели иллюстрации и раскрытия заявленного технического решения.

Промышленная применимость

Поставленная техническая задача, а именно, получение штамма Chlamydia abortus (хламидий), обладающего стабильной инфекционной, антигенной и иммуногенной активностью, который может быть использован для изготовления иммунологических лекарственных препаратов иммуноглобулинов и в качестве антигена для обнаружения антител к хламидиозу сельскохозяйственных животных, достигнута, что подтверждается приведенными примерами.

Практическое применение заявленного технического решения позволяет использовать для изготовления инактивированных вакцин и получения специфических диагностических сывороток и глобулинов и в качестве антигена для обнаружения антител к хламидиозу сельскохозяйственных животных.

Список литературных источников:

1. Halbert G. Diseases of sheep. Can Vet J. 2008; 49(7):702.

2. Longbottom, D.; Coulter, L.J. Animal chlamydioses and zoonotic implications. J. Comp. Pathol. 2003, 128, 217-244.

3. Rodolakis A., Mohamad K.Y. Zoonotic potential of Chlamydophila. Vet. Microbiol. 2010 Jan; 140(3-4):382-391.

4. Pospischil A., R. Thoma R., Hilbe M., Grest P., Gebbers F.-O. Abortion in woman caused by caprine Chlamydophila abortus (Chlamydia psittaci serovar 1), 2002. Swiss Medical Weekly, vol. 132, no. 5-6, pp. 64-66.

5. Walder G., Hotzel H., Brezinka C. et al., "An unusual cause of sepsis during pregnancy: recognizing infection with Chlamydophila abortus," Obstetrics & Gynecology, 2005. vol. 106, no. 5, pp. 1215-1217.

6. Mitzel Jr. et al. Vaccination Against Feline Pneumonitis, Am. J. Vet. Res., 1977, 38 (9), pp. 1361 – 1364.

7. Патент 2122579 Штамм CHLAMYDIA PSITTACI, используемый для изготовления инактивированной вакцины против хламидиоза кошек и пушных зверей. Заявка №97104467. Дата подачи заявки: 1997.03.21. Опубликовано: 1998.11.27.

8. Авт.св. СССР N 1789219, кл. A61K 39/118, опубл. 1993.

9. Брок Т. Мембранная фильтрация. М.: Мир; 1987. 462 с.

10. Anthony Bennett, «Membrane technology: Developments in ultrafiltration technologies» // Filtration + Separation V. 49, Issue 6, November-December 2012, Pages 28-33, doi.org/10.1016/S0015-1882(12)70287-2.

11. Shiloach J, Martin N, Moes H. Tangential flow filtration. Adv Biotechnol Process (1988),8: 97-125; Van Reis R, Zydney A. Membrane separations in biotechnology. Curr Opin Biotechnol (2001), 12:208-211).

12. Madsen R.F., Design of sanitary and sterile UF- and diafiltration plants, Separation and Purification Technology, 22-23 (2001). p. 79-87.

13. Патент №2338433 РФ Способ диафильтрации продукта и устройство для осуществления способа. Опубликовано: 20.11.2008 Бюл. №32).

14. ГОСТ 33216-2014 Руководство по содержанию и уходу за лабораторными животными. Правила содержания и ухода за лабораторными грызунами и кроликами.

15. Leroux Roels G., Cheng W.F. (2011). Vaccine adjuvants. Perspectives in Vaccinology, 1, 89-113.

16. Edwige Boogie On, Elodie Gonsalves, Alexander Shevtsov, Polina Mezonnas, Stepan Remyga, Oleg Goryushev, Sebastian Deville, Nicolas Bertaud and Juliette Ben ArusA New Adjuvant Combined with Inactivated Influenza Enhances Specific CD8 T Cell Response in Mice and Decreases Symptoms in Swine Upon Challenge. Article in Viral Immunology(2015) 28(9):524-31. doi: 10.1089/vim.2014.0149.

17. Патент 2085213 Вакцина для профилактики и лечения хламидиоза сельскохозяйственных животных и пушных зверей. Заявка №95 95108959. Дата подачи заявки: 1995.06.05. Опубликовано: 1997.07.27.

Похожие патенты RU2798283C1

название год авторы номер документа
Вакцинная композиция для профилактики энзоотического аборта у овец 2023
  • Матвеева Ирина Николаевна
  • Азимов Карим Алиевич
  • Богомолова Олеся Анатольевна
  • Гринь Светлана Анатольевна
  • Забережный Алексей Дмитриевич
  • Рожкова Елена Ивановна
  • Белоусов Василий Иванович
  • Никитин Николай Александрович
  • Карпова Ольга Вячеславовна
  • Евтушенко Екатерина Алексеевна
  • Маркова Евгения Владимировна
  • Еремец Владимир Иванович
  • Еремец Наталья Киреевна
  • Круглова Мария Игоревна
  • Люлькова Лариса Сергеевна
  • Попова Вера Михайловна
RU2802251C1
ШТАММ CHLAMYDIA PSITTACI, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ИНАКТИВИРОВАННОЙ ВАКЦИНЫ ПРОТИВ ХЛАМИДИОЗА КОШЕК И ПУШНЫХ ЗВЕРЕЙ 1997
  • Обухов И.Л.
  • Груздев К.Н.
  • Кумалагова К.И.
RU2122579C1
ВАКЦИНА КУЛЬТУРАЛЬНАЯ ИНАКТИВИРОВАННАЯ ПРОТИВ ХЛАМИДИОЗА КРУПНОГО И МЕЛКОГО РОГАТОГО СКОТА 2002
  • Щербань Г.П.
  • Данченко Г.Н.
  • Кравченко Т.Ф.
RU2233174C2
ВАКЦИНА ДЛЯ ПРОФИЛАКТИКИ И ЛЕЧЕНИЯ ХЛАМИДИОЗА СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ И ПУШНЫХ ЗВЕРЕЙ 1995
RU2085213C1
ВАКЦИНА ДЛЯ СПЕЦИФИЧЕСКОЙ ПРОФИЛАКТИКИ ХЛАМИДИОЗА СВИНЕЙ 2002
  • Хусаинов Ф.М.
  • Хамадеев Р.Х.
  • Равилов А.З.
  • Евстифеев В.В.
  • Барбарова Л.А.
RU2247577C2
Штамм хламидий СнLамYDIа рSIттасI, используемый для изготовления биопрепаратов для диагностики и профилактики хламидиоза серебристо-черных лисиц 1989
  • Равилов Рустам Хамитович
  • Шафикова Рисаля Ахатовна
  • Бобрышев Константин Павлович
  • Равилов Абдулхамит Зарифович
  • Угрюмова Валентина Степановна
  • Беклешова Алла Юрьевна
SU1667870A1
Штамм хламидий СнLамYDIа рSIттасI, используемый для изготовления биопрепаратов для диагностики и профилактики хламидиоза песцов 1989
  • Равилов Рустам Хамитович
  • Шафикова Рисаля Ахатовна
  • Равилов Абдулхамит Зарифович
  • Беклешова Алла Юрьевна
SU1667869A1
ВАКЦИНА ДЛЯ СПЕЦИФИЧЕСКОЙ ПРОФИЛАКТИКИ ХЛАМИДИОЗА КРУПНОГО И МЕЛКОГО РОГАТОГО СКОТА 2005
  • Хусаинов Фидаиль Миннигалеевич
  • Евстифеев Виталий Валерьевич
  • Иванов Аркадий Васильевич
  • Барбарова Любовь Андреевна
RU2301682C1
ВАКЦИНА ДЛЯ СПЕЦИФИЧЕСКОЙ ПРОФИЛАКТИКИ ХЛАМИДИОЗА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА 1991
  • Хамадеев Р.Х.
  • Равилов А.З.
  • Хусаинов Ф.М.
  • Беклешова А.Ю.
RU2092188C1
ВАКЦИНА КУЛЬТУРАЛЬНАЯ ИНАКТИВИРОВАННАЯ ПРОТИВ ХЛАМИДИОЗА СВИНЕЙ 2002
  • Щербань Г.П.
  • Данченко Г.Н.
  • Кравченко Т.Ф.
RU2233670C2

Реферат патента 2023 года Штамм Chlamydia abortus "Chlamydia VNITIBP-21" для производства иммунобиологических лекарственных препаратов

Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к штамму Chlamydia VNITIBP-21, обладающему стабильной инфекционной, антигенной и иммуногенной активностью. Штамм Chlamydia VNITIBP-21 позволяет производить на его основе высокоиммуногенную вакцину против хламидиоза животных, получать гипериммунные сыворотки, а также использовать антиген и полученную из него сыворотку в серологических реакциях для диагностики хламидиоза сельскохозяйственных животных. Заявленное изобретение может быть использовано в фармацевтической промышленности, сельском хозяйстве, а также в научно-исследовательской деятельности. 4 табл.

Формула изобретения RU 2 798 283 C1

Штамм Chlamydia abortus «Chlamydia VNITIBP-21», для получения иммунологических лекарственных препаратов против хламидиоза сельскохозяйственных животных, депонированный в коллекции микроорганизмов Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр - Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко» (ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН), регистрационный номер В-1371.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 2023 года RU2798283C1

ШТАММ CHLAMYDIA PSITTACI, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ИНАКТИВИРОВАННОЙ ВАКЦИНЫ ПРОТИВ ХЛАМИДИОЗА КОШЕК И ПУШНЫХ ЗВЕРЕЙ 1997
  • Обухов И.Л.
  • Груздев К.Н.
  • Кумалагова К.И.
RU2122579C1
ВАКЦИНА ДЛЯ ПРОФИЛАКТИКИ И ЛЕЧЕНИЯ ХЛАМИДИОЗА СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ И ПУШНЫХ ЗВЕРЕЙ 1995
RU2085213C1
MITZEL JR
et al., Vaccination AgainstFeline Pneumonitis, Am.J.Vet.Res., 1977,38(9), p
Железный секционный котел для водяного отопления 1923
  • Гладков Н.Г.
SU1361A1

RU 2 798 283 C1

Авторы

Матвеева Ирина Николаевна

Азимов Карим Алиевич

Богомолова Олеся Анатольевна

Забережный Алексей Дмитриевич

Рожкова Елена Ивановна

Белоусов Василий Иванович

Никитин Николай Александрович

Карпова Ольга Вячеславовна

Евтушенко Екатерина Алексеевна

Маркова Евгения Владимировна

Еремец Владимир Иванович

Еремец Наталья Киреевна

Круглова Мария Игоревна

Люлькова Лариса Сергеевна

Попова Вера Михайловна

Даты

2023-06-21Публикация

2022-09-06Подача