ВЕКТОР PGDP3 ДЛЯ ЭКСПРЕССИИ ЧУЖЕРОДНЫХ ГЕНОВ В КЛЕТКАХ Советский патент 1994 года по МПК C12N15/70 

Описание патента на изобретение SU1264578A1

Изобретение относится к микробиологической промышленности, молекулярной биологии и генетической инженерии и представляет собой вектор экспрессии чужеродных генов в клетках Escherichia coli.

Целью изобретения является упрощение процесса получения различных белковых продуктов и повышение уровня экспрессии чужеродных генов за счет создания нового вектора для экспрессии чужеродных генов в клетках E.coli.

Вектор для экспрессии чужеродных генов pGDP2 характеризуется следующими признаками: имеет длину около 4,6 тыс. п.о., состоит из:
линейной формы векторной плазмиды pBRH4,
фрагмента PF1 ДНК фага ⊘Х174 размером 230 п.о., содержащего регуляторную область гена D и присоединенного к EcoROI-сайту плазмиды pBRH4; содержит:
в качестве генетических маркеров гены Apr и Тсr,
уникальные сайты расщепления эндонуклеазами рестрикции, расположенные на следующих расстояниях от EcoRI-сайта: EcoRV 160 п.о. вправо, BamHI 350 п. о. вправо, Sal I 626 п.о. вправо, Bal I 1419 п.о., вправо Pvu 11 2041 п. о. вправо, Pst I 3584 п.о. вправо,
сайты расщепления другими эндонуклеазами рестрикции, расположенные на следующих расстояниях от EcoRI-сайта; Hind II 70 п.о. влево, 626 и 3882 п. о. вправо; чужеродные гены встраивают по уникальному EcoRI-сайту;
экспрессия чужеродных генов обеспечивается в любом штамме E.coli К 12 или его мутантах.

Конструирование вектора pGDP3 состоит в следующем. Фрагмент RF1 фага ⊘ Х174 соединяют с векторной плазмидой pBRH4, расщепленной по EcoRI-сайту, и получают рекомбинантную плазмиду pGDP1, малый Р1-фрагмент которой содержит в своем составе регуляторную область гена D фага ⊘Х174 (см.фиг.1).

Выделяют фрагмент Р1, подвергают его частичному гидролизу эндонуклеазой рестрикции Hinf I, встраивают полученный фрагмент Р2 в векторную плазмиду pBRH4, расщепленную по EcoRI-сайту, и получают плазмиду pGDP2, содержащую два EcoRI-сайта (см.фиг.2).

Инактивируют дистальный по отношению к N-концу гена D EcoRI-сайт и получают вектор pGDP3, имеющий уникальный сайт расщепления эндонуклеазой рестрикции EcoRI.

В состав вектора входит природная регуляторная область гена D фага ⊘Х174 обеспечивающая конститутивную (нерегулируемую) экспрессию чужеродных генов, встроенных в вектор.

Использование вектора позволяет значительно упростить технологию промышленного получения различных белковых продуктов (например, лейкоцитарных интерферонов человека, галактокиназы и др.) при сохранении высокого уровня биосинтеза. Упрощение технологии связано с тем, что при конститутивном биосинтезе белковых продуктов отсутствует необходимость индукции (путем разбавления культуры штамма-продуцента в 20-50 раз или в результате добавления индуктора).

Кроме того, вектор pGDP3 обеспечивает высокий уровень экспрессии чужеродных генов. Так, в случае гена Tcr EOP50 составляет 100 мкг/мл против 60 мкг/мл для вектора ptrpED5 1 (см.пункт 3 примера и таблицу).

П р и м е р. Конструирование вектора pGDP3.

1.Конструирование рекомбинантной плазмиды pGDP1.

150 мкг PF1 ДНК фага ⊘ Х174 расщепляют с помощью 200 ед. эндонуклеазы рестрикции Alu I в буфере, содержащем 50 mM NaCl, 10 mM трис-HCl (рН 7,6), 10 mM MgCl2 и 10 mM меркаптоэтанол, при 37оС в течение 2 ч. Общий объем реакционной смеси 800 мкл. Смесь субфрагментов обрабатывают фенолом, осаждают этанолом и растворяют в 150 мкл ТЕ-буфера, содержащего 10 mM трис-HCl (рН 8,0) и 1 mM ЭДТА, после чего наносят на 8%-ный полиакриламидный гель (ПААГ) и подвергают электрофоретическому разделению. Полоску геля, содержащую фрагмент ДНК A6, вырезают и ДНК элюируют по Максаму-Гилберту.

Полученный таким образом фрагмент Р1, содержащий промотор и рибосомсвязывающий участок (последовательность Шайн-Дальгарно) гена D фага ⊘ Х174, встраивают в плазмидный вектор pBRH4, который предварительно расщепляют эндонуклеазой рестрикции EcoRI, и обрабатывают Кленовским фрагментом ДНК-полимеразы E.coli в присутствии dATP и dTTP для достройки выступающих 5'-концов. 1 мкг подготовленного таким способом вектора pBRH4 и 0,1 мкг фрагмента Р1 соединяют с помощью 5 ед. Т4-ДНК-лигазы в буфере, содержащем 50 mM трис-HCl (рН 7,5), 10 mM MgCl2, 5 mM DTT и 0,2 mM ATP, при 15оС в течение 16 ч. Общий объем реакционной смеси 50 мкл. Полученной смесью рекомбинантных ДНК трансформируют клетки E.coli К 802 по известному методу. Отбирают клоны, устойчивые к тетрациклину (10 мкг на 1 мл), и проводят их рестрикционный анализ.

2.Конструирование рекомбинантной плазмиды pGDP2.

Схема получения плазмиды pGDP2 представлена на фиг.2.

200 мкг плазмиды pGDP1 расщепляют с помощью 400 ед. эндонуклеазы EcoRI в буфере, содержащем 100 mM NaCl, 50 mM трис-HCl (рН 7,5), 10 mM MgCl2, 1 mM DTT, при 37оС 90 мин. Общий объем реакционной смеси 800 мкл. Смесь субфрагментов обрабатывают фенолом, осаждают этанолом и растворяют в 150 мкл ТЕ-буфера. Отделение фрагмента Р1 от исходного вектора производят с помощью электрофореза в 8% -ном ПААГ. Фрагмент Р1 элюируют из геля, как описано ранее. Затем фрагмент Р1 дефосфорилируют, вводят 5'-концевую метку с помощью [α-32P] ATP и Т4-полинуклеотидкиназы по известной методике. Меченый фрагмент Р1 расщепляют эндонуклеазой рестрикции BspRI. 14 мкг полученной смеси фрагментов расщепляют с помощью 14 ед. эндонуклеазы Hinf I в буфере, содержащем 50 mM NaCl, 10 mM трис-HCl (рН 7,6), 10 mM MgCl2, 10 mM меркаптоэтанол, при 37оС и выделяют из реакционной смеси фрагмент Р2 с помощью электрофореза в 8% -ном ПААГ. 0,05 мкг фрагмента Р2 обрабатывают 5 ед. S1-нуклеазы в буфере, содержащем 0,2 М NaCl, 50 ml ацетат натрия (рН 4,5), 1 mM DTT и 5% глицерин, при 20оС в течение 20 мин. По окончании инкубации смесь обрабатывают фенолом, хлороформом, и ДНК осаждают этанолом. Затем подготовленный таким образом фрагмент встраивают в плазмиду pBRH4, предварительно расщепленную эндонуклеазой EcoRI и обработанную Кленовским фрагментом ДНК-полимеразы E. coli в присутствии dATP и dTTP. Ферментативное соединение фрагмента Р2 и вектора проводят, как описано ранее, с помощью Т4-ДНК-лигазы в 50 мкл реакционной смеси.

Полученной смесью рекомбинантных плазмид трансформируют клетки E.coli К 802 и отбирают клоны, устойчивые к 10-20 мкг тетрациклина на 1 мл среды.

3.Конструирование вектора pGDP3.

1,5 мкг ДНК плазмиды pGDP2 расщепляют 0,1 ед. эндонуклеазы рестрикции EcoRI в буфере, содержащем 10 мМ NaCl, 5,0 mM трис-HCl (рН 7,6), 10 mM MgCl2, 1 mM DTT, при 37оС в течение 1 ч. Общий объем рестрикционной смеси 15 мкл. Затем полученную ДНК обрабатывают Кленовским фрагментом ДНК-полимеразы 1 в присутствии dATP и dTTP для заполнения выступающих 5'-концов, а затем Т-4-ДНК-лигазой (10 ед) в буфере, содержащем 50 mM трис-HCl (рН 7,5), 10 mM MgCl2, 5 mM DTT и 0,2 mM ATP, при 12оС в течение 10 ч. Общий объем реакционной смеси 100 мкл. Продуктами плазмидной сшивки трансформируют клетки E. coli К 802. Отбирают клоны, устойчивые к тетрациклину, проводят рестрикционный анализ плазмидных ДНК, выделенных из этих клонов. С помощью эндонуклеаз рестрикции EcoRI и Hind II показано, что в 3-х из 32-х проанализированных клонов содержатся плазмиды, в которых инактивирован дистальный по отношению к N-концу гена D дистальный сайт EcoRI. Один из этих клонов используют в качестве источников вектора pGDP3.

Похожие патенты SU1264578A1

название год авторы номер документа
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДА plFN-αA-P2 КОДИРУЮЩАЯ СИНТЕЗ ЛЕЙКОЦИТАРНОГО ИНТЕРФЕРОНА αA ЧЕЛОВЕКА, И ШТАММЫ E.COLI - ПРОДУЦЕНТЫ ЛЕЙКОЦИТАРНОГО ИНТЕРФЕРОНА ЧЕЛОВЕКА 1984
  • Овчинников Ю.А.
  • Свердлов Е.Д.
  • Долганов Г.М.
  • Царев С.А.
  • Монастырская Г.С.
  • Зайцева Е.М.
  • Саломатина И.С.
  • Арсенян С.Г.
  • Беляев С.В.
  • Поздняков В.Н.
  • Кузнецов В.П.
  • Соловьев В.Д.
  • Берзинь В.М.
  • Грен Э.Я.
SU1312961A1
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДА plFN-αF-Pa КОДИРУЮЩАЯ СИНТЕЗ ЛЕЙКОЦИТАРНОГО ИНТЕРФЕРОНА ЧЕЛОВЕКА, И ШТАММ E. COLI - ПРОДУЦЕНТ ЛЕЙКОЦИТАРНОГО ИНТЕРФЕРОНА αF ЧЕЛОВЕКА 1984
  • Овчинников Ю.А.
  • Свердлов Е.Д.
  • Долганов Г.М.
  • Царев С.А.
  • Монастырская Г.С.
  • Зайцева Е.М.
  • Саломатина И.С.
  • Арсенян С.Г.
  • Беляев С.В.
  • Поздняков В.Н.
  • Кузнецов В.П.
  • Соловьев В.Д.
  • Берзинь В.М.
  • Грен Э.Я.
SU1312962A1
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК PIF16, КОДИРУЮЩАЯ ЗРЕЛЫЙ ЛЕЙКОЦИТАРНЫЙ ИНТЕРФЕРОН α ЧЕЛОВЕКА, ШТАММ ESCHERICHIA COLI - ПРОДУЦЕНТ ЗРЕЛОГО ЛЕЙКОЦИТАРНОГО ИНТЕРФЕРОНА α ЧЕЛОВЕКА 1992
  • Кравченко В.В.
  • Гилева И.П.
  • Сандахчиев Л.С.
  • Петренко В.А.
  • Коробко В.Г.
  • Добрынин В.Н.
RU2054041C1
ГИБРИДНЫЙ ГЕН BLG-HIFN-G ДЛЯ ЭКСПРЕССИИ ГАММА-ИНТЕРФЕРОНА ЧЕЛОВЕКА В МОЛОЧНОЙ ЖЕЛЕЗЕ ТРАНСГЕННОГО ЖИВОТНОГО (ВАРИАНТЫ) 1994
  • Лагутин Олег Владимирович
  • Добровольский Василий Николаевич
  • Виноградова Татьяна Викторовна
  • Ларионов Олег Алексеевич
RU2084526C1
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК pBinPLUS-ARS-EPSPS, ОБЕСПЕЧИВАЮЩАЯ ЭКСПРЕССИЮ ГЕНА АГРОБАКТЕРИАЛЬНОЙ 5-ЕНОЛПИРУВИЛ-ШИКИМАТ-3-ФОСФАТ-СИНТЕТАЗЫ В ТРАНСГЕННЫХ МИКРОВОДОРОСЛЯХ РОДА ХЛОРЕЛЛА 2009
  • Филипенко Максим Леонидович
  • Храпов Евгений Александрович
  • Тронева Анастасия Викторовна
RU2407794C1
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК PSTH 2191, КОДИРУЮЩАЯ СИНТЕЗ СОМАТОТРОПИНА ЧЕЛОВЕКА, И ШТАММ ESCHERICHIA COLI - ПРОДУЦЕНТ СОМАТОТРОПИНА ЧЕЛОВЕКА 1986
  • Рубцов П.М.
  • Свердлова П.С.
  • Чернов Б.К.
  • Чупеева В.В.
  • Шляпников С.В.
  • Скрябин К.Г.
  • Баев А.А.
SU1387414A1
ЧЕЛНОЧНАЯ ВЕКТОРНАЯ ПЛАЗМИДА, СПОСОБНАЯ К РЕПЛИКАЦИИ В КЛЕТКАХ ESCHERICHIA COLI И ANACYSIIS NIDULANS, ЧЕЛНОЧНАЯ ВЕКТОРНАЯ ПЛАЗМИДА PBAX18, СПОСОБНАЯ К РЕПЛИКАЦИИ В КЛЕТКАХ ESCHERICHIA COLI И ANACYSTIS NIDULANS И ЧЕЛНОЧНАЯ ВЕКТОРНАЯ ПЛАЗМИДА PBAX20, СПОСОБНАЯ К РЕПЛИКАЦИИ В КЛЕТКАХ ESCHERICHIA COLI И ANACYSIIS NIDULANS 1992
  • Хидеаки Хагивара
  • Ясунобу Такесима
RU2122027C1
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК PLT 9, КОДИРУЮЩАЯ ПОЛИПЕПТИД СО СВОЙСТВАМИ ЛИМФОТОКСИНА ЧЕЛОВЕКА, РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК PLT 16, ИСПОЛЬЗУЕМАЯ ДЛЯ КОНСТРУИРОВАНИЯ ДНК PLT 9, И ШТАММ БАКТЕРИЙ ESCHERICHIA COLI - ПРОДУЦЕНТ ПОЛИПЕПТИДА СО СВОЙСТВАМИ ЛИМФОТОКСИНА ЧЕЛОВЕКА 1988
  • Коробко В.Г.
  • Добрынин В.Н.
  • Филиппов С.А.
  • Чумаков А.М.
  • Панина А.А.
  • Болдырева Е.Ф.
  • Недоспасов С.А.
  • Шахов А.Н.
  • Турецкая Р.Л.
SU1561510A1
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК PKHBC-33, СОДЕРЖАЩАЯ ГЕН КОРОВОГО АНТИГЕНА ВИРУСА ГЕПАТИТА B, ВКЛЮЧАЮЩЕГО ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЬ ГЛАВНОГО НЕЙТРАЛИЗУЮЩЕГО ЭПИТОПА ПОВЕРХНОСТНОГО АНТИГЕНА ВИРУСА ГЕПАТИТА B (137 - 147), И ШТАММ БАКТЕРИЙ ESCHERICHIA COLI - ПРОДУЦЕНТ КОРОВОГО АНТИГЕНА ВИРУСА ГЕПАТИТА B С ЭКСПОНИРОВАННЫМ НА ЕГО ПОВЕРХНОСТИ ГЛАВНЫМ НЕЙТРАЛИЗУЮЩИМ ЭПИТОПОМ ПОВЕРХНОСТНОГО АНТИГЕНА ВИРУСА ГЕПАТИТА B (137 - 147) 1995
  • Карпенко Л.И.
  • Чикаев Н.А.
  • Меламед Н.В.
  • Ильичев А.А.
  • Байбородин С.И.
RU2112039C1
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК PCCS, КОДИРУЮЩАЯ СОМАТОСТАТИН-14, ШТАММ БАКТЕРИЙ ESCHERICHIA COLI - ПРОДУЦЕНТ СОМАТОСТАТИНА-14 1991
  • Панков Ю.А.
  • Тихоненко Т.И.
  • Лунин В.Г.
  • Карпова С.К.
  • Сазина Е.Т.
  • Бадер Л.Б.
  • Карасев В.С.
  • Сергиенко О.В.
  • Каляева Э.С.
  • Север И.С.
RU2009199C1

Иллюстрации к изобретению SU 1 264 578 A1

Формула изобретения SU 1 264 578 A1

ВЕКТОР PGDP3 ДЛЯ ЭКСПРЕССИИ ЧУЖЕРОДНЫХ ГЕНОВ В КЛЕТКАХEscherichia coli характеризуется следующими признаками: имеет длину около 4,6 тыс. п.о.; состоит из линейной формы векторной плазмиды pBRH4, фрагмента RFI ДНК фага размером 230 п.о., содержащего регуляторную область гена D и присоединенного к EcoRI-сайту плазмиды pBRH4;
содержит в качестве генетических маркеров гены Apr и Tcr; сайты расщепления эндонуклеазами рестрикции, расположенные на следующих расстояниях от EcoRI-сайта: EcoRV 160 п.о. вправо, BamHI 350 п.о. вправо, Sal I 626 п.о. вправо, Bal I 1419 п.о. вправо, Pvu II 2041 п.о. вправо, Pst I 3584 п.о. вправо, сайты узнавания другими эндонуклеазами рестрикции, расположенные на следующих расстояниях от EcoRI-сайта: Hind II 70 п.о. влево, 626 и 3882 п. о. вправо, чужеродные гены встраивают в EcoRI-сайт.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 1994 года SU1264578A1

Hallewell R.A
and Emtage S
Plasmid vestors containing the tryptophan operon promoter suitable For efficient regulated expression of foreign genes
Способ получения фтористых солей 1914
  • Коробочкин З.Х.
SU1980A1

SU 1 264 578 A1

Авторы

Свердлов Е.Д.

Долганов Г.М.

Кафиани А.К.

Даты

1994-12-30Публикация

1984-08-13Подача