Изобретение относится к микробиологической промышленности, молекулярной биологии и генетической инженерии и представляет собой сконструированную in vitro рекомбинантную плазмиду, обеспечивающую биосинтез лейкоцитарного интерферона αA человека, и штаммы E.coli, содержащие эту плазмиду, - продуценты лейкоцитарного интерферона типа αA человека.
Целью изобретения является упрощение технологии крупномасштабного производства лейкоцитарного интерферона αA человека.
П р и м е р 1. Конструирование рекомбинантной плазмиды pIFN- A-P2.
1. Конструирование рекомбинантной плазмиды pGDP1: 150 мкг РФ1 ДНК фага ⊘Х174 расщепляют с помощью 200 ед. эндонуклеазы рестрикции Alu I в буфере, содержащем 50 ммоль NaCl, 10 ммоль трис-HCl (рН 7,6), 10 ммоль MgCl2 и 10 ммоль меркаптоэтанола, при 37оС в течение 2 ч. Общий объем реакционной смеси 800 мкл. Смесь субфрагментов обрабатывают фенолом, осаждают этанолом и растворяют в 150 мкл ТЕ-буфера, содержащего 10 ммоль трис-HCl (рН 8,0) и 1 ммоль ЭДТА, после чего наносят на 8%-ный полиакриламидный гель (ПААГ) и подвергают электрофоретическому разделению при 60 мА в течение 8 ч. Полоску геля, содержащую фрагмент ДНК A6, вырезают и ДНК элюируют по Максаму-Гилберту. Полученный таким образом фрагмент Р1, содержащий промотор, рибосомосвязывающий участок (последовательность Шайн-Дальгарно SD) и 19 N-концевых кодонов гена D фага ⊘ Х17A, встраивают в плазмидный вектор pBRH4, который предварительно расщепляют эндонуклеазой рестрикции E.coRI и обрабатывают Кленовским фрагментом ДНК-полимеразы 1 E.coli в присутствии dATP и dTTP для достройки выступающих 51-концов. 1 мкг подготовленного таким способом вектора pBRH4 и 0,1 мкг подготовленного таким способом вектора pBRH4 и 0,1 мкг фрагмента Р1 соединяют с помощью 5 ед. Т4-ДНК-лигазы в буфере, содержащем 50 ммоль трис-HCl (рН 7,5), 10-5 мМ MgCl2 и 0,2 ммоль ATP, при 15оС в течение 16 ч.
Общий объем реакционной смеси 50 мкл. Полученной смесью рекомбинантных ДНК трансформируют клетки E.coli К 802 по известному методу. Эффективность трансформации составляет 107 колоний на 1 мкг плазмидной ДНК pBR 322. Отбирают клоны, устойчивые к тетрациклину (10 мкг Тс на 1 мл), и проводят их рестрикционный анализ.
2.Конструирование рекомбинантной плазмиды pGDP2.
Фрагмент Р1 выделяют из состава плазмиды pGDP1, расщепляя ее (200 мкг) с помощью 400 ед. эндонуклеазы EcoR1 в буфере, содержащем 100 ммоль NaCl, 50 ммоль трис-HCl (рН 7,5), 10 ммоль MgCl2, 1 ммоль DTT, при 37оС 90 мин. Общий объем реакционной смеси 800 мкл. Смесь субфрагментов обрабатывают фенолом, осаждают этанолом и растворяют в 150 мкл ТЕ-буфера. Отделение фрагмента Р1 от исходного вектора производят с помощью электрофореза в 8%-ном ПААГ при 60 мА в течение 8 ч. Фрагмент Р1 элюируют из геля, как указано. Затем фрагмент Р1 дефосфорилируют, вводят 5-концевую метку с помощью [j-32P] ATP и Т4-полинуклеотидкиназы по Максаму-Гилберту. Меченый фрагмент Р1 расщепляют эндонуклеазой рестрикции BspRI на большой (226 п.о.) и малый (11 п. о.) EcoRI-BspRI-фрагменты. 14 мкг полученной смеси фрагментов расщепляют с помощью 14 ед. эндонуклеазы Hinf I в буфере, содержащем 50 ммоль NaCl, 10 ммоль трис-HCl (рН 7,6), 10 ммоль MgCl2 и 10 ммоль меркаптоэтанола, при 37оС, отбирая аликвоты через 5,10,20,30 и 40 мин. Общий объем реакционной смеси 40 мкл. Так добиваются частичного гидролиза фрагмента Р1 эндонуклеазой Hinf I. Смесь субфрагментов наносят на 8%-ный ПААГ и разделяют при 60 мА в течение 6 ч. Фрагмент Р2 (226 п.о.) элюируют из геля, как указано ранее, и используют для конструирования плазмиды pGDP2. Для этого 0,05 мкг фрагмента Р2 обрабатывают 5 ед. S1-нуклеазы в буфере, содержащем 0,2 моль NaCl, 50 ммоль ацетата натрия (рН 4,5), 1 ммоль ZnSO4 и 5%-ный глицерин, при 20оС в течение 20 мин.По окончании инкубации смесь обрабатывают фенолом, хлороформом и ДНК осаждают этанолом. Затем подготовленный таким образом фрагмент Р2 встраивают в плазмиду pBRH4, предварительно расщепленную эндонуклеазой EcoRI и обработанную Кленовским фрагментом ДНК-полимеразы 1 E.coli в присутствии dATP и dTTP. Ферментативное соединение фрагмента Р2 и вектора проводят, как указано ранее, с помощью Т4-ДНК-лигазы в 50 мкл реакционной смеси. Полученной смесью рекомбинантных плазмид трансформируют клетки E.coli HB 101 и отбирают клоны, устойчивые по крайней мере к 10-20 мкг тетрациклина на 1 мл среды. Отобранные клоны подвергают рестрикционному анализу с последующим определением первичной структуры вставок.
3.Получение рекомбинантной плазмиды pIFN- αA-P2.
5 мкг неэкопрессирующей плазмиды pIFN- αA-310 обрабатывают 10 ед. эндонуклеазы рестрикции EcoRI в буфере, содержащем 100 ммоль NaCl, 50 ммоль трис-HCl (рН 7,6), 10 ммоль MgCl2 и 1 ммоль DTT, при 37оС в течение 90 мин. Общий объем реакционной смеси 50 мкл. Затем ДНК осаждают этанолом и растворяют в 50 мкл буфера, содержащего 33 ммоль трис-HCl (рН 7,9), 66 ммоль ацетата калия, 10 ммоль MgCl2 и 1 ммоль DTT. В реакционную смесь добавляют dTTP до конечной концентрации 0,4 ммоль и 1,5 ед. Т4-ДНК-полимеразы. Реакцию проводят при 12оС в течение 90 мин, затем ДНК осаждают этанолом и растворяют в буфере, содержащем 0,2 ммоль NaCl, 50 ммоль ацетата натрия (рН 4,5), 1 ммоль ZnSO4 и 5%-ный глицерин. К реакционной смеси (20 мкл) добавляют 20 ед. S1-нуклеазы и инкубируют при 20оС 30 мин.
По окончании реакции ДНК обрабатывают фенолом, хлороформом и осаждают этанолом. 1 мкг подготовленной таким образом плазмиды pIFN- αA-310 сшивают с 0,2 мкг фрагмента Р2, обработанного аналогично вектору Т4-ДНК-полимеразой в присутствии dTTP и S1-нуклеазой. Лигирование проводят в 50 мкл буфера, содержащего 20 ммоль трис-HCl (рН 7,6), 10 ммоль MgCl2, 2 ммоль DTT, 0,2 ммоль ATP и 20 ед. Т4-ДНК-лигазы, при 10оС в течение ночи.
Продуктами лигазной сшивки трансформируют клетки E.coli К 802 и с помощью гибридизации колоний in situ отбирают клоны, устойчивые к тетрациклину и содержащие вставку - фрагмент Р2. В качестве "зонда" при гибридизации используют 32Р-меченый фрагмент Р2.
20 из 140 гибридизирующихся с промоторсодержащим "зондом" клонов анализируют на продукцию интерферона радиоиммунологическим методом. В результате получают плазмиду pIFN- αA-P2.
П р и м е р 2. Получение штамма - продуцента лейкоцитарного α A-интерферона человека.
Рекомбинантную плазмиду pIFN- A-P2 трансформируют в штамм E.coli К 802, как указано в примере 1, и получают штамм - продуцент зрелого лейкоцитарного интерферона αA человека с активностями, указанными в таблице.
Активность интерферона определяют методом ингибирования цитопатического действия вируса везикулярного стоматита на диплоидные фибробласты человека и радиоиммунологическими методами. Содержание интерферона в 1 л культуры при OD550 = 2,0 составляет 3 х 108 ед. активности.
П р и м е р 3. Кинетика накопления интерферона в культуре штамма - продуцента E.coli IFN- αA-P2 - в зависимости от фазы роста.
250 л среды, содержащей на 1 л 10 г пептона, 5 г дрожжевого экстракта, 5 г NaCl и 5 мг тетрациклина (рН 7,5), загружают в 500-литровый ферментер и инокулируют 2,5 л ночного посевного материала (OD550 = 2,5). Режим культивирования: 37оС, воздух 1:1, давление 0,5 атм. Через определенные промежутки времени отбирают аликвоты и определяют в них активность интерферона радиоиммунологическими методами. В таблице представлены данные по определению активности интерферона в клеточных экстрактах штамма - продуцента E.coli, содержащего рекомбинантную плазмиду pIFN- αA-P2, в зависимости от оптической плотности культуры при 2,5 ОЕ/л (550).
Из данных таблицы следует, что максимальный уровень активности интерферона в бактериальной клетке достигается при OD550 культуры штамма-продуцента около 2,0. При этом средняя активность интерферона в клеточных экстрактах составляет 2х108 ед. активности в 1 л культуры. В связи с этим ферментацию штамма-продуцента наиболее выгодно проводить до плотности культуры не выше 2,0 ОЕ/л (550 нм).
Таким образом, новая рекомбинантная плазмида pIFN- αA-P2, а также штаммы, содержащие эту плазмиду - продуценты лейкоцитарного интерферона человека, позволяют значительно упростить процесс крупномасштабного получения интерферона человека при сохранении высокого уровня биосинтеза.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДА plFN-αF-Pa КОДИРУЮЩАЯ СИНТЕЗ ЛЕЙКОЦИТАРНОГО ИНТЕРФЕРОНА ЧЕЛОВЕКА, И ШТАММ E. COLI - ПРОДУЦЕНТ ЛЕЙКОЦИТАРНОГО ИНТЕРФЕРОНА αF ЧЕЛОВЕКА | 1984 |
|
SU1312962A1 |
Рекомбинатные плазмиды- @ - @ ,кодирующие синтез лейкоцитарного интерферона типа @ - @ человека, и штаммы @ @ / @ - @ - @ -продуценты лейкоцитарного интерферона типа @ -F человека | 1983 |
|
SU1144376A1 |
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК PIF16, КОДИРУЮЩАЯ ЗРЕЛЫЙ ЛЕЙКОЦИТАРНЫЙ ИНТЕРФЕРОН α ЧЕЛОВЕКА, ШТАММ ESCHERICHIA COLI - ПРОДУЦЕНТ ЗРЕЛОГО ЛЕЙКОЦИТАРНОГО ИНТЕРФЕРОНА α ЧЕЛОВЕКА | 1992 |
|
RU2054041C1 |
Рекомбинантная плазмидная ДНК @ 14, кодирующая полипептид, со свойствами лейкоцитарного интерферона @ 2 человека, и штамм бактерий ЕSснеRIснIа coLI - продуцент полипептида со свойствами лейкоцитарного интерферона @ 2 человека | 1990 |
|
SU1703691A1 |
Рекомбинантная плазмидная ДНК @ -1 @ 1-13, кодирующая синтез фибробластного интерферона ( @ I) человека, способ ее конструирования, штамм бактерий ЕSснеRIснIа coLI - продуцент @ I-интерферона человека | 1987 |
|
SU1703692A1 |
ФРАГМЕНТ ДНК S54, КОДИРУЮЩИЙ ПОЛИПЕПТИД С АКТИВНОСТЬЮ ГАММА-ИНТЕРФЕРОНА, РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК, ОБЕСПЕЧИВАЮЩАЯ СИНТЕЗ ПОЛИПЕПТИДА С АКТИВНОСТЬЮ ГАММА-ИНТЕРФЕРОНА И ШТАММ ESCHERICHIA COLI - ПРОДУЦЕНТ ПОЛИПЕПТИДА С АКТИВНОСТЬЮ ГАММА-ИНТЕРФЕРОНА | 1992 |
|
RU2046144C1 |
МУТАНТНЫЙ ГЕН IFN Δ 10, КОДИРУЮЩИЙ ПОЛИПЕПТИД С АКТИВНОСТЬЮ ГАММА-ИНТЕРФЕРОНА ЧЕЛОВЕКА, РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДА PIF Δ 10, ОБЕСПЕЧИВАЮЩАЯ ЭКСПРЕССИЮ ГЕНА IFN Δ 10 В ESCHERICHIA COLI, И ШТАММ ESCHERICHIA COLI - ПРОДУЦЕНТ ПОЛИПЕПТИДА, ОБЛАДАЮЩЕГО АКТИВНОСТЬЮ ГАММА-ИНТЕРФЕРОНА ЧЕЛОВЕКА | 1995 |
|
RU2105813C1 |
Рекомбинантная плазмидная ДНК @ 22, кодирующая синтез интерферона @ -11 человека, и штамм бактерии РSеUDомоNаS Sp. -продуцент- интерферона @ -11 человека | 1986 |
|
SU1703690A1 |
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК PES4-4, КОДИРУЮЩАЯ ПОЛИПЕПТИД ИНТЕРФЕРОН АЛЬФА-2B ЧЕЛОВЕКА, И ШТАММ ESCHERICHIA COLI BDEES4 - ПРОДУЦЕНТ РЕКОМБИНАНТНОГО ИНТЕРФЕРОНА АЛЬФА-2B ЧЕЛОВЕКА | 2003 |
|
RU2258081C1 |
ВЕКТОР PGDP3 ДЛЯ ЭКСПРЕССИИ ЧУЖЕРОДНЫХ ГЕНОВ В КЛЕТКАХ | 1984 |
|
SU1264578A1 |
Goeddel D.V | |||
et al | |||
Nature, 287 (1980), р.411-416. |
Авторы
Даты
1994-12-30—Публикация
1984-07-13—Подача