Изобретение относится к микробиологической промышленности и касается производства интерферона.
Цель изобретения - повышение выхода интерферона.
.Для осуществления способа используют штамм Pseudomonas speciee VG-84, несущий плазмиду pVG3, депонированный
с указанными выше антибиотиками и проверяют на способность синтезировать интерферон.
Полученные культуры выращивают в условиях интенсивной аэрации и перемешивания при 30 С на L-бульоне в течение 6-10 ч до достижения титра
бактерий 2-5x10 клеток/мл. Бактерии
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Рекомбинантная плазмидная ДНК @ 22, кодирующая синтез интерферона @ -11 человека, и штамм бактерии РSеUDомоNаS Sp. -продуцент- интерферона @ -11 человека | 1986 |
|
SU1703690A1 |
СПОСОБ ПРОМЫШЛЕННОГО ПОЛУЧЕНИЯ ПОЛИПЕПТИДА С БИОЛОГИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТЬЮ ЛЕЙКОЦИТАРНОГО ИНТЕРФЕРОНА АЛЬФА-2 ЧЕЛОВЕКА | 1997 |
|
RU2142508C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЧЕЛОВЕЧЕСКОГО ЛЕЙКОЦИТАРНОГО ИНТЕРФЕРОНА АЛЬФА-2 | 1988 |
|
RU1616143C |
Штамм бактерий BacILLUS aLVeI - продуцент рестриктазы В @ 1 | 1990 |
|
SU1678833A1 |
Штамм бактерий LастовасILLUS рLаNтаRUм - продуцент рестриктазы LP @ | 1989 |
|
SU1678832A1 |
СПОСОБ ПРОМЫШЛЕННОГО ПОЛУЧЕНИЯ ЧЕЛОВЕЧЕСКОГО ЛЕЙКОЦИТАРНОГО ИНТЕРФЕРОНА-АЛЬФА-2 | 1996 |
|
RU2118366C1 |
Способ получения рестриктазы В @ AI | 1990 |
|
SU1712415A1 |
Рекомбинантная плазмида, способ её конструирования и штамм дрожжей Komagataella pastoris - продуцент иммунного интерферона-гамма собаки | 2020 |
|
RU2756852C2 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ РАСТИТЕЛЬНО-МИКРОБНЫХ АССОЦИАЦИЙ ДЛЯ ФИТОРЕМЕДИАЦИИ НА ОСНОВЕ МИКРОРАЗМНОЖАЕМЫХ РАСТЕНИЙ И ПЛАЗМИДОСОДЕРЖАЩИХ РИЗОСФЕРНЫХ БАКТЕРИЙ | 2010 |
|
RU2443771C1 |
ШТАММЫ БАКТЕРИЙ BACILLUS SUBTILIS И BACILLUS LICHENIFORMIS, ИСПОЛЬЗУЕМЫЕ В КАЧЕСТВЕ КОМПОНЕНТОВ ПРЕПАРАТА ПРОТИВ ВИРУСНЫХ И БАКТЕРИАЛЬНЫХ ИНФЕКЦИЙ, И ПРЕПАРАТ НА ОСНОВЕ ЭТИХ ШТАММОВ | 1997 |
|
RU2142287C1 |
в Центральном Музее промьшленных мик-io собирают центрифугированием, разру20
25
30
роорганизмов института ВНИИгенетика под номерои ЦМПМ В-3076.
Плазмида pVG3 является молекулярным гибридом между многокопийной векторной плазмидой широкого круга )5 хозяев рАУС34 и плазмидой pIFN-o(2-P2, Содержащей репликон pBR322 и ген интерферона альфа - 2 и определяющей устойчивость клеток к тетрациклину и ампициллину. В плазмиде pIFN-oC2-P2 ген интерферона альфа-2 находится под контролем регуляторных областей гена D бактериофага 0 XI74. Векторная плазмида рАУС34 размером в 9,4 тысяч пар нуклеотидов относится к Inc P-4/Q группе несовместимости, детерминирует устойчивость клеток к стрептомицину, Плазмидную ДНК рАУС34 и pIFN- 2-Р2 обрабатывают рестрикта- зой Pst I и лигированной смесью трансформируют компетентные клетки штамма Е. coli С600. Трансформанты отбирают на полноценной питательной среде, содержащей антибиотики - ампициллин (50 мкг/мл), стрептомицин (100 мкг/мл) и тетрациклин (25 мкг/ /мл) , В клонах-трансформа,нтах обнаружена плазмидная ДНК, названная pVG3, которая по размеру и рестрик- ционной карте соответствует гибриду между плазмидами рАУС34 и pIFN- 2-Р2. Плазмида pVG3 детерминирует устойчивость клеток к стрептомицину подобно рАУС34 и тетрациклину и ампициллину подобно pIFN- 2-P2. Размер плаз- признаки МИДЫ pVG3 - 14,8 тысяч пар нуклеотидов равен сумме размеров плазмид pIFN-L42-P2 - 5,4 тысяч пар нуклеити- дов и рАУС34 - 9,4 тысяч пар нуклеотидов .
В один из штаммов Е. coli СбОО, содержащий гибридную плазмиду pVG3, бьша введена коньюгативная плазмида широкого круга хозяев R 751. В серии коньюгативных скрещиваний плазмида pVG3 была переведена в бактерии рода Pseudomonas и другие грам-отрицатель- . ные бактерии. Бактерии-трансконью- ганты отбирают на селективной среде
шают ультразвуком и определяют содержание интерферона в клеточных экстрактах радиоиммунологическим методом. Бало проверено 18 штаммов грам-отрицательнык бактерий, относящихся к родам Eschenichia, salmonlla Pseudomonas, Methy Lomonas,. Erwinia, Rhizobicem. Большинство проверенных штаммов продуцировали активный интерферон. Неибольшей продуктивностью отличался штамм Pseudomonas Sp. VG-84 В указанных условиях этот штамм пролJ/J
дуцирует 5x10 -1x10 ME интерферона на 1 л культуральной жидкости.
Культурально-морфологические приз наки.
Морфология под микроскопом. Грам- подвижные палочки дли
35
40
50
55
отрицательные ной 3-5 мкм.
Морфология на разных средах.
Мясо-пептонный агар. Через 24 ч роста при. 25-30°С образует колонии с неровным краем диаметром 3-4 мм, поверхность шероховатая, цвет свет- лоз еленый.
Мясо-пептонный бульон. Рост по уколу умеренный, в основном на поверхности среды. Рост без аэрации слабый.
Минимальная среда М 9 с глюкозой. На 2 сут роста образует колонии диаметром 2-3 мм серого цвета, колонии круглые, шероховатые.
Физиологические и биохимические
Растет при 25-35°С, оптиму 30°G, рН 7,0. Источники углерода: утилизирует глюкозу, арабинозу. Источники азота: хорошо усваивает аммо ний, мочевину.
Пример. Штамм Pseudomonas sp. VG-84 выращивают при 28°С в течение 12 ч на скошенной агаризованно среде следующего состава: триптон 10 г/л, дрожжевой экстракт 5 г/л, аденин 80 мл/л, глюкоза 10 г/л, стреп томицин 150 мг/л, тетрациклин 50 мг/л вода дистиллированная - до 1 л, агар - агар 15 г/л (среда А). Выросшую на косяках биомассу используют
0
5
0
5 признаки
шают ультразвуком и определяют содержание интерферона в клеточных экстрактах радиоиммунологическим методом. Бало проверено 18 штаммов грам-отрицательнык бактерий, относящихся к родам Eschenichia, salmonlla Pseudomonas, Methy Lomonas,. Erwinia, Rhizobicem. Большинство проверенных штаммов продуцировали активный интерферон. Неибольшей продуктивностью отличался штамм Pseudomonas Sp. VG-84. В указанных условиях этот штамм пролJ/J
дуцирует 5x10 -1x10 ME интерферона на 1 л культуральной жидкости.
Культурально-морфологические признаки.
Морфология под микроскопом. Грам- подвижные палочки дли35
40
50
55
отрицательные ной 3-5 мкм.
Морфология на разных средах.
Мясо-пептонный агар. Через 24 ч роста при. 25-30°С образует колонии с неровным краем диаметром 3-4 мм, поверхность шероховатая, цвет свет- лоз еленый.
Мясо-пептонный бульон. Рост по уколу умеренный, в основном на поверхности среды. Рост без аэрации слабый.
Минимальная среда М 9 с глюкозой. На 2 сут роста образует колонии диаметром 2-3 мм серого цвета, колонии круглые, шероховатые.
Физиологические и биохимические
Растет при 25-35°С, оптимум 30°G, рН 7,0. Источники углерода: утилизирует глюкозу, арабинозу. Источники азота: хорошо усваивает аммоний, мочевину.
Пример. Штамм Pseudomonas sp. VG-84 выращивают при 28°С в течение 12 ч на скошенной агаризованной среде следующего состава: триптон 10 г/л, дрожжевой экстракт 5 г/л, аденин 80 мл/л, глюкоза 10 г/л, стрептомицин 150 мг/л, тетрациклин 50 мг/л, вода дистиллированная - до 1 л, агар - агар 15 г/л (среда А). Выросшую на косяках биомассу используют
для приготовления посевного материала. Для этого клетки переносят в колбы Эрленмейера объемом 750 мл со 10П мл среды А (без агара) и выращивают на качалке в течение 6 ч при интенсивном перемешивании (240 оборотов/мин) и температуре . Оптическая плотность посевной культуры - 2 оптических единицы.
Ферментацию проводят в ферментере оснащенном системами для регулирования температуры, рН, скорости перемешивания и аэрации, датчиком для измерения парциального давления раст воренного кислорода. Для этого посевную культуру вносят в количестве 5% в ферментер с жидкой питательной средой А (без агара) и выращивают в течение 6 ч при ,5°С, рН 6,7-6,9 при интенсивной аэрации и перемешивании. Режим аэрации и перемешивания подбирают таким, чтобы рост культуры не лимитировался концентрацией растворенного кислорода, для чего значение парциального давления кислорода поддерживают на уровне 5-10% от насыщения. Для стабилизации рН используют аммиачную воду.
Рост биомассы контролируют путем измерения оптической плотности куль- туральной жидкости, которую измеряют каждый час на ФЭК-60 при длине волны 520 нм в кювете в длиной оптического пути 0,5 см. Ферментацию прекращают при величине оптической плотности 5 оптических единиц.
После окончания ферментации концентрация интерферона составляет 1x10 ME на 1 л культуральной жидкости. Для определения концентрации интерферона используют твердофазную модификацию радиоиммунологического анализа с применением антиинтерферо- новых кроличьих поликлопальных анти
0
5 0
5
0
5
0
тел и меченых йодом - 125 мьш1иных моноклональных антител, а также определяют антивирусную активность интерферона по его защитному эффекту от цитопатического действия вируса везикулярного стоматита на культурах диплоидных человеческих фибробластов. В качестве референс-препаратов используют национальные интерфероны - стандарты MRC Б 69/19 (Великобритания) и Р8 (СССР).
Клетки, собранные центрифугированием после проведения ферментации, используют в качестве источника интерферона. Клетки суспендируют в 0,1 М трис-буфере рН 7,5 из расчета 1 г клеток на 5-10 мл буфера и разрушают на ультразвуковом дезинтеграторе. Обломки клеток отделяют центрифугированием при 3000 g и из супер- натантной фракции (клеточного экстракта) выделяют гомогенный интерферон альфа-2 с использованием известных методов - отделения нуклеиновых кислот осаждением 0,5%-ным полиэти- ленимином, фракционирования сульфатом аммония при 65% насыщения, адсорбционной хроматографии на стеклах с контрлируемым размером пор и иммуно- аффинной хроматографией на иммобилизованных на Сефарозе 4В мьшиных антиинтерфероновых моноклональных антителах.
В результате очистки получен элект рофоретически гомогенный препарат интерферона альфа-2 с очисткой в 210 раз и выходом по активности 41%, обладающий удельной активностью 4, МЕ/мг. По удельной активности, молекулярному весу (18,4 кД), аминокислотному составу и т.д. вьще- ленный интерферон альфа-2 не отличается от природного человеческого .лейкоцитарного лнтерферона альфа-2..
Shepard Н.М | |||
et | |||
al | |||
J | |||
DNA, 1982, 2, p | |||
Плуг с фрезерным барабаном для рыхления пласта | 1922 |
|
SU125A1 |
Palva I | |||
et | |||
al | |||
J | |||
Gem, 1983, 22, p | |||
Приспособление для подачи воды в паровой котел | 1920 |
|
SU229A1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ СПЕРМЫ У СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ | 1995 |
|
RU2079291C1 |
Способ гальванического снятия позолоты с серебряных изделий без заметного изменения их формы | 1923 |
|
SU12A1 |
Авторы
Даты
1988-01-07—Публикация
1984-07-13—Подача