Способ культивирования вируса лейкоза крупного рогатого скота Советский патент 1991 года по МПК C12N5/00 

Описание патента на изобретение SU1700053A1

Изобретение относится к ветеринарной вирусологии к клеточной биотехнологии, в частности к способу культи-- варования вируса лейкоза крупного рогатого скота (ВЛКРС ),, который может быть использован в приготовлении имму- нодиагностических и иммуноггрофилакти- ческих средств, а также при проведении разного характера вирусологических и молекулярно-иммунологических исследований.

Цель изобретения - увеличение репродукции вируса пейкоза крупного рогатого скота.

Для этого при осуществлении способа репродукции вируса лейкоза в клеточной культуре к питательной среде Игла, содержащей 10% сыворотки крупного рогатого скота, добавляют 5,6-диметилбекзимидазслил-Со-метилкобамид(метилкобаламин) г- концентрации от 0507i- 2.5- (.

П р п м ер. Для изучения стимулгг- рующен активности метилкобаламина на репрод} Ki .iTio вируса лейкоза крупного рогатого скота используют линию клеток FLK.

Перед пассажем нее культуры просматривают под микроскопом и определяют количество клеток при помощи камеры Горлова. Тп ттого клетки отделчыт. от мочослоя подогретьм до 37 С 0,25%-ным раствором трипсина, содержащим 0,025%-ньй раствор верее- на (1:1 трипсин сливают, а клетки ресуспечдкруюг Б свежей среде роста (2-3 х 10 клеток/матрас), содержащей 10% сыворотки кровч крупного ро-к|

О

ЈЛ

DO

гатого скота и антибиотики (пенициллин, 100 ед/мл, стрептомицин, 100 ед/мл). Клетки инкубируют при 37 °С. Перевивки проводят через каж- дые 5-6 дней. Из одной материнской культуры готовят несколько дочерних. Растворы метилкобаламина готовят на физиологическом растворе.; автокла- вируют при 0,5 атм в течение 30 мин и вводят в культуралънуго среду (обычно 1-2 мл) до конечных концентраций: 0,074-10 6Н; 0}}7-10 бМ; 0374. 2,5 1 11 и 5,0- . Культуры выращивают при 37°С в течение 5-6 дней.

Параллельно проводят контрольные опыты с той хе культурой по известному способу, без добавления метил кобаламипов в среду роста,

Через 5 суток культурачьпую жид- кость из всех сосудов сливают, образовавшийся монослой обрабатывают 0,25%-нмм раствором трипсина, содер- жа щим 0,025%-НЕ 1Й раствор в ер сена, разводят раствором Хенкса и подсчиты- вают количество клеток в камере Го- ряева,

В культуральной жидкости определяют вируспродуцируницую активность культуры путем измерения ревертазной активности.

Для этого культуральную жидкость 1 (обычно в объеме 20-23 мл) осветляют путем центрифугирования в течение

в сцинтилляционном счетчике SL-30.

t

Величина полученной радиоактивности характеризует ревертазную активность анализируемого аликвота вирусного лизата. Чем выше радиоактивность, тем более лизат активен в отношении ревертазы. Поскольку из литературы известно, что ревертазная активность (она определяется по величине радиоактивности) коррелирует с количеством вирусных частиц, то на основании величин радиоактивности можно высчитать и количество образовавшихся вирусных частиц в контрольных вируспродуцирую- щнх культурах и в культурах, росших в присутствии стимулятора - метилкобаламина в разных концентрациях. Данные так-ix определении приведены в таблице.

Радиоактивность контрольных вирусных лизатов принята за 100%, т.е. соответствует 39528 имп/мин. Поскольку радиоактивность з вируспродуцирую- щих культурах, росших в присутствии метилкобаламина, выше, то соответственно и процентная величина вырастает Видно, что стимуляция образования ,вирусных частиц в присутствии в среде метилкобаламина начинается уже при началы-ой концентрации 0,074-1 О М и перестает расти при концентрации 5,. Итак, наиболее эффективные концентрации метилкобаламина з пита

Похожие патенты SU1700053A1

название год авторы номер документа
Штамм культивируемых клеток почки эмбриона коровы для культивирования вируса лейкоза крупного рогатого скота 1989
  • Адомайтене Даля-Ирена Юозо
  • Немейкайте Аушра Йоно
  • Рачкус Юозапас Юозо
  • Садаускас Пранас Болеслово
SU1652338A1
ШТАММ 8С12 ПОСТОЯННОЙ МЕЖВИДОВОЙ ГИБРИДНОЙ ЛИНИИ КЛЕТОК МЫШИ Mus. musculus И ОВЦЫ Ovis aries - ПРОДУЦЕНТ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ К ГЛИКОПРОТЕИДНОМУ АНТИГЕНУ ВИРУСА ЛЕЙКОЗА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА 2008
  • Юдин Виктор Игоревич
  • Козлов Владимир Егорович
  • Безгин Вячеслав Михайлович
  • Гулюкин Михаил Иванович
  • Иванова Людмила Александровна
RU2377297C1
СПОСОБ ДИАГНОСТИКИ ЛЕЙКОЗА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА 2008
  • Юдин Виктор Игоревич
  • Козлов Владимир Егорович
  • Безгин Вячеслав Михайлович
  • Гулюкин Михаил Иванович
  • Иванова Людмила Александровна
RU2377962C1
Штамм перевиваемых клеток легкого эмбриона крупного рогатого скота - продуцент вируса лейкоза крупного рогатого скота 1990
  • Гулюкин Михаил Иванович
  • Замараева Наталья Владимировна
  • Дьяконов Лев Петрович
  • Лобунцова Диана Васильевна
  • Васин Алексей Владимирович
  • Иванова Людмила Александровна
  • Шишков Владимир Петрович
  • Бурба Леонтий Григорьевич
SU1778185A1
ШТАММ 1Н8 ПОСТОЯННОЙ ГИБРИДОМНОЙ ЛИНИИ КЛЕТОК МЫШИ Mus. Musculus - ПРОДУЦЕНТ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ К IgG ОВЦЫ 2008
  • Юдин Виктор Игоревич
  • Козлов Владимир Егорович
  • Безгин Вячеслав Михайлович
  • Гулюкин Михаил Иванович
  • Иванова Людмила Александровна
RU2377298C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АНТИГЕНА ВИРУСА ЛЕЙКОЗА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА 1992
  • Сорокина А.А.
  • Шевырев Н.С.
  • Валихов А.Ф.
  • Безгин В.М.
  • Бурба Л.Г.
  • Киселев Н.В.
  • Рыбникова Л.И.
RU2020960C1
ШТАММ 5А10 ПОСТОЯННОЙ ГИБРИДОМНОЙ ЛИНИИ КЛЕТОК МЫШИ Mus. musculus - ПРОДУЦЕНТ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ К IgG КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА 2008
  • Юдин Виктор Игоревич
  • Козлов Владимир Егорович
  • Безгин Вячеслав Михайлович
  • Гулюкин Михаил Иванович
  • Иванова Людмила Александровна
RU2377299C1
СПОСОБ ПОДГОТОВКИ БИОМАТЕРИАЛА ДЛЯ ПЦР ДИАГНОСТИКИ ВИРУСА ЛЕЙКОЗА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА (ВЛ КРС) 2013
  • Шкуратова Ирина Алексеевна
  • Донник Ирина Михайловна
  • Хрунык Юлия Ярославовна
  • Ряпосова Марина Витальевна
  • Татарчук Александр Терентьевич
  • Шилова Евгения Николаевна
  • Вялых Иван Владимирович
  • Петропавловский Максим Валерьевич
RU2566071C2
Способ изготовления аллергена для диагностики лейкоза крупного рогатого скота 1989
  • Лемеш Валерий Митрофанович
  • Островская Лидия Петровна
SU1734763A1
ШТАММ ДИПЛОИДНЫХ КЛЕТОК ЛЕГКОГО ПЛОДА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА ДЛЯ РЕПРОДУКЦИИ ВИРУСОВ 2012
  • Гальнбек Татьяна Валерьевна
  • Шуляк Анна Федоровна
  • Кулешов Константин Валерьевич
  • Щукина Ирина Валерьевна
RU2515915C1

Реферат патента 1991 года Способ культивирования вируса лейкоза крупного рогатого скота

Изобретение относится к ветеринарной вирусологии и клеточной биотехнологии. Конкретно к способу культивирования вируса лейкоза крупного рогатого скота (ВЛКРС), который может быть использован и приготовлении им- мунодиагностических и иммунопрофилак-. тических средств, а такгсе при проведении разного рода вирусологических и молекулярно-иммунологических исследований . Цель изобретения - увеличение репродукции ВЛКРС. Для этого в культуралъную среду, содержащую среду Игла с 10% сыворотки крупного рогатого схота вводят 596-диметилбензи- мицазолил-Сс-метилкобамидк- (метилко- баламин) в концентрации от 0,074-10 до 2, что позволяет увеличить репродукцию вируса лейкоза на 30-50%. 1 та бл. -,-е о «

Формула изобретения SU 1 700 053 A1

30 мин при 5000 об/мин при 4 С, Вирус т,- тельной среде при образовании вирусных

10

45

осаждают центрифугированием уже обработанной жидкости в течение 40 мин при 30000 об/мин при 4°С над 20%-ной сахарозой, приготовленной в 0,01 1 буфере, рН 7,5, содержащем 0,1 М NaCl и 0,001 М ЭДТА.

Собранные вирусы i00 мкл лизируют в течение 20 мин при 2°0 в 0S01 M трис-HCl буфере, рН 7,8, содержащем 0,008 Н дитиотреитол, 0,2% тритона Х-100 и проводят ревертазную реакцию. Для этого 10 мкл вирусного лизата прибавляют 90 мкл смеги, содержащей 0,05 И трио-ИГЛ бусЬер, рН 7,8, 0,002 М дитиотреитол, 0,025% тритон Х-100, ,, 0,25 ед/мл полкА-олигоТу0.(0, 0,008 ММр,СПг ч /3П/тимидинтрифосфат (74 па пробу), инкубируют 30 мин при ЗГ)°С. Ревертазную реакцию останавливают добавле| ием трпхлорукгусной кислоты до к H j4Hon концентрации 7,5%. Осадок наносят на мембранные ультрафильтры С.ыттор (диаметр пор 0,9 MiO и измеряют радиоактивность

частиц являются от 0,3/.. 10 °до 2,5 х... За пределами указанных концентраций, т.е. культивация вирусной культуры при более высоких концентрациях метилкобаламина нецелесообразна, .поскольку выход вируса не повышается, а расходы метилкобаламина повышаются, что экономически не выгодно.

Таким образом, введение метилкобаламина в питательную среду Игла с 10% сыворотки крупного рогатого скота позволяет увеличить репродукцию вируса лейкоза на 30-50% по сравнению с прототипом, а тем же самым и уменьшить материальные расходы при накоплении вирусного материала.

Формула

и з о

б р е т

и я

55

Ј. Спссоб культивирования вчтэуса лейкоза крупного рогатого скота, путем инкуб;ттвания вируспродуцирующей культуры г питательной среле Пглз с до- бавлел нем сыворотки крови крупного

тельной среде при образовании вирусных

частиц являются от 0,3/.. 10 °до 2,5 х... За пределами указанных концентраций, т.е. культивация вирусной культуры при более высоких концентрациях метилкобаламина нецелесообразна, .поскольку выход вируса не повышается, а расходы метилкобаламина повышаются, что экономически не выгодно.

Таким образом, введение метилкобаламина в питательную среду Игла с 10% сыворотки крупного рогатого скота позволяет увеличить репродукцию вируса лейкоза на 30-50% по сравнению с прототипом, а тем же самым и уменьшить материальные расходы при накоплении вирусного материала.

Формула

и з о

б р е т

и я

Ј. Спссоб культивирования вчтэуса лейкоза крупного рогатого скота, путем инкуб;ттвания вируспродуцирующей культуры г питательной среле Пглз с до- бавлел нем сыворотки крови крупного

рогатого скота, отличагощи й- с я тем, что, с целью увеличения репродукции вируса, в питательную среду дополнительно вводят 5,6-ди2, Способ по п. 1, о т л и ч a re in и и с я тем, что, с целью удешев ления, 5,6-днметиттбензимидазолил-Со метилкобамид вводят в концентрации

метилбензимидазолил-Со-метилкобамид. 0,074.,.

Репродукция вирусных частиц лейкоза крупного рогатого скота в контрольных и обработанных метилкобаламином культурах (% по сравнению с известным способом)

Радиоактивность, имп/мин39528

43837

Репродукция вирусных частиц, в %

100,0110,9

2, Способ по п. 1, о т л и ч a rein и и с я тем, что, с целью удешевления, 5,6-днметиттбензимидазолил-Со- метилкобамид вводят в концентрации

0,074.,.

52849 54668 59925 59451

133,7138,3151,6150,4

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 1991 года SU1700053A1

Методы культивирования клеток,, Л., Наука, 1988, с
Способ очищения сернокислого глинозема от железа 1920
  • Збарский Б.И.
SU47A1
Интеграционные вирусы,, Рига, Зинатне, 1985, с
Приспособление для плетения проволочного каркаса для железобетонных пустотелых камней 1920
  • Кутузов И.Н.
SU44A1

SU 1 700 053 A1

Авторы

Рачкус Юозапас Адольфович

Адомайтене Даля-Ирена Юозовна

Канопкайте София Ивановна

Даты

1991-12-23Публикация

1990-02-23Подача