Способ получения гиалуронидазы Советский патент 1992 года по МПК C12N9/14 

Описание патента на изобретение SU1723121A1

Изобретение относится к биотехнологии,-в частности к микробиологической промышленности, и может быть использовано в производстве высокоактивных ферментных препаратов для приготовления лекарственных средств.

Наиболее близким к предлагаемому по технической сущности и достигаемому результату является способ, в котором продуцент гиалуронидазы - штамм Streptomyces actinocidus 77 - выращивали глубинным способом, культуральную жидкость концентрировали вакуум-выпариванием при 40- 60°С и рН 7,5-8,5, фермент выделяли осаждением из культуральной жидкости 3-4 объемами этилового спирта. В результате получали препарат гиалуронидазы с активностью 450-800 МЕ/г (колоримерический метод) и удельной активностью 7-10 МЕ/мг белка.

Недостатками данного технического ре-

шения являются низкая активность и степень чистоты гиалуронидазы.

Цель изобретения - повышение активности и степени чистоты гиалуронидазы.

Штамм Streptomyces actinocidus 77 выращивают глубинным способом на питательной среде определенного состава, фильтрат культуральной жидкости подкисляют 2N соляной кислотой до рН 4,4-4,6, осветляют центрифугированием или фильтрацией и сорбируют на карбоксильном катионите КМ-2п (40-60 объемов на объем сорбента) со скоростью 50-100 мл/ч/см2, сорбент промывают 0,01 М ацетатным буфером рН 4,4-4,6, гиалуронидазу десорбируют щелочными растворами, затем элюат обесцвечивают активированным углем в концентрации 1,0-1,5% при перемешивании и уголь отделяют. Десорбцию можно провоXJ Ю СО

ю

дить либо в статических условиях при рН 8,5-8,7, либо в динамике растворами щелочи, аммиака или раствором фосфорнокислого натрия двузамещенного.

В табл, 1 представлены данные по подбору условий сорбции гиалуронидазы из 1 л фильтрата культуральной жидкости на колонке с карбоксильным катионитом Ш-2п объемом 20 мл (Ф 1,1 см, I 5 см). Для сравнения приведены данные по сорбции гиалуронидазы на колонке тех же размеров с карбоксиметилцеллюлозой (КМЦ) и некоторых других карбоксильных катионитах.

Из табл. 1 следует, что из пяти испытанных карбоксильных катионитов только КМ- 2п практически полностью сорбировал гиалуронидазу. Сорбцию фильтрата культуральной жидкости на катионите необходимо проводить в интервале рН 4,4-4,6, при этом на стадии подкисления гиалуронидаз- ная активность сохраняется на 60-70%, при снижении рН до 4,2 гиалуронидаза инакти- вируется сильнее и активность сохраняется лишь на 50%. При увеличении рН до 4,8 количество фермента в проскоке достигает 15%, что уменьшает выход фермента.

Важное значение имеет скорость сорбции фильтрата культуральной жидкости на катионите. Оптимальным является интервал 50-100 мл/ч/см . При уменьшении скорости ферментный раствор при кислых значениях рН (4,5) длительное время сорбируется на колонку, что приводит к снижению стабильности гиалуронидазы. В результате увеличения скорости сорбции пропорционально повышается выход фермента в проскоке и соответственно снижается количество гиалуронидазы в элюате.

Гиалуронидазу десорбируют различными щелочными растворами в статических условиях в воду путем сдвига рН или в динамических условиях путем пропускания различных элюентов через колонку с сорбентом.

Данные по подбору условий десорбции приведены в табл. 2 (сорбцию фермента проводили в оптимальных условиях; рН 4,5, скорость 70 мл/ч/см ).

Из табл. 2 следует, что десорбцию гиалуронидазы в статических условиях необходимо проводить при рН выше 8,5, при этом выход на стадии составлял 55-60%. Увеличение рН выше 8,8 приводило к элюции большого количества балластных белков, что вызывало уменьшение удельной активности в конечных препаратах (см. табл. 5).

В табл. 3 приведены экспериментальные данные по подбору условий обесцвечивания растворов гиалуронидазы активированным углем.

Результаты опытов свидетельствуют о том, что при концентрации угля 1,0-1,5% происходит обесцвечивание раствора гиалуронидазы на 75-78% при сохранении активности на стадии до 85-90%. При снижении концентрации угля в растворе остается значительное количество пигментов, что отрицательно влияет на качество препаратов. Увеличение концентрации угля до

0 2,0% приводит к снижению выхода гиалуронидазы на стадии обесцвечивания.

Схема получения гиалуронидазы по предлагаемому способу представлена в табл. 4.

5 Как видно из табл. 4, предлагаемая схема позволяет получить гиалуронидазу высокой степени очистки с удельной активностью 60 МЕ/мг белка и общим выходом фермента 35%,

0 Пример (по прототипу). Продуцент гиалуронидазы Streptomyces actinocidus 77 выращивали в ферментере емкостью 250 л (заполнение 180 л) на среде, содержащей 3% гидролизата БВК, 0,8% сульфата аммо5 ния, 0,1 % «аНРСм. Аэрация в процессе культивирования дробная: первые 12 ч роста - 9 м /ч, затем до конца культивирования 27 м /ч, рН в начале культивирования 6,8, время выращивания 56 ч. По окончании

0 выращивания мицелий отделяют центрифугированием, фильтрат культуральной жидкости (150 л) упаривали в 10 раз. К концентрату добавляли 4 объема охлажденного этилового спирта, осадок отделяли на

5 нутч-фильтре и лиофилизировали. Получали препарат гиалуронидазы с активностью 450 МЕ/г и удельной активностью 8 МЕ/мг белка.

П р и м е р 1. Продуцент гиалуронидазы

0 выращивали на той же питательной среде, в теж же условиях, что и в примере по прототипу, мицелий отделяли центрифугированием. Получали 150 л фильтрата культуральной жидкости с активностью 13 МЕ/мл и удель5 ной активностью 2,0 МЕ/мг белка. Фильтрат подкисляли 2N соляной кислотой до рН 4,5 и сорбировали на колонку (d 12 см, I 28 см) с 3,0 л карбоксильного катионита КМ- 2п кислотного гидролиза (биокарб К), урав0 повешенного 0,01 М ацетатным буфером рН 4,5. Скорость сорбции - 70 мл/ч/см2, время сорбции 19 ч. Катионит после сорбции переносили в емкость с мешалкой, дважды (по 3 л) отмывали 0,01 М ацетатным буфером рН

5 4,5. Гиалуронидазу десорбировали с катионита в статических условиях 7,5 л дистиллированной воды путем доведения рН до значения 8,7 раствором 2 М едкого натрия. Перемешивали смесь 15 мин, элюат отфильтровывали через капроновую ткань, затем

проводили повторную десорбцию фермента в тех же условиях. Элюаты объединяли. Выход активности на стадии сорбции-десорбции составил 39%, активность 55 МЕ/млчК 15л элюата добавляли 150 гактивированно- го угля марки Б и перемешивали 30 мин. Уголь отделяли центрифугированием при 5000 об/мин 30 мин. Ферментный раствор упаривали под вакуумом при 30°С до активности в растворе 130 МЕ/мл. Получили 3,5 л раствора, общий выход на стадии 92%. Удельная активность 60 МЕ/мг белка, общий выход на схеме 39%, степень очистки 30 раз.

П р и м е р 2. Стадии получения и очист- ки гиалуронидазы до стадии десорбции проводили аналогично примеру 1. Десорбцию с катионита проводили непосредственно на колонке в динамических условиях, используя 0,2 М раствор N32HP04. Элюирование производили со скоростью 14 мл/ч/см2. Фракции с гиалуронидазой объединяли. Объем элюата - 30 л, рН -7,5. Выход активности на стадии сорбции - десорбции составил 38%. Активность 28 МЕ/мл. К 30 л элюата добавили 360 г активированного угля, перемешивали 30 мин и уголь отделяли. Ферментный раствор обессоливали и концентрировали ультрафильтрацией. Объем полученного концентрата 5,2 л, активность 131 МЕ/мл. Удельная активность 70 МЕ/мг белка, общий выход 34%, степень очистки 35.

Примеры 3-10. Продуцент гиалуронидазы выращивали как в примере 1, мице- лий отделяли центрифугированием. Условия сорбции и десорбции представлены в табл. 5.

Из табл. 5 следует, что десорбцию гиалуронидазы в статических условиях необхо- димо проводить при рН 8,5-8,8, при этом

выход фермента составляет 31-35%, а удельная активность достигается 49-60 МЕ/мг белка (примеры 4-6). Увеличение рН при десорбции больше 9,0 приводит к значительному снижению удельной активности в препарате. Наилучшие результаты по десорбции гиалуронидазы в динамике получены при использовании 0,2 М раствора форсфорнокислого натрия двузамещенно- го, при этом удельная активность достигает 70 МЕ/мг белка (пример 10). Таким образом, предлагаемый способ позволяет получать фермент с высокой степенью очистки. По сравнению с примером-прототипом удельная активность гиалуронидазы выше в 7-9 раз (примеры 4, 10).

Формула изобретения

1.Способ получения гиалуронидазы. предусматривающий глубинное выращивание продуцента Streptomyces actinocidus 77, отделение мицелия, выделение фермента из полученной культуральной жидкости и очистку, отличающийся тем, что, с целью повышения активности и степени чистоты гиалуронидазы, культуральную жидкость подкисляют до рН 4,4-4,6, а очистку фермента ведут сорбцией через колонку с карбоксильным катионитом КМ-2п кислотного гидролиза со скоростью 50-100 мл/ч/см и десорбцией с катионита щелочными растворами, полученный элюат обесцвечивают активированным углем в концентрации 1,0-1,5% при перемешивании.

2.Способ по п.1, о т л и ч а ю щ и и с я тем, что фермент десорбируют с катионита в статических условиях при рН 8,5-8,8.

3.Способ по п.1,отличающийся тем, что фермент десорбируют промыванием катионита в колонке 0,2 М N32HP04.

Похожие патенты SU1723121A1

название год авторы номер документа
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ БАКТЕРИАЛЬНОГО ВНЕКЛЕТОЧНОГО ЛЕКТИНА 1991
  • Кудря В.А.
  • Симоненко И.А.
  • Захарова И.Я.
  • Подгорский В.С.
  • Коваленко Э.А.
RU2027763C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЦЕЛЛОБИАЗ 1984
  • Иванова Г.С.
  • Белецкая О.П.
  • Головлев Е.Л.
  • Зорина А.И.
  • Зубрицкая Л.Г.
  • Клесов А.А.
  • Кулаев И.С.
  • Куляко Н.И.
  • Курьяновская И.Г.
  • Окунев О.Н.
SU1274297A1
ШТАММ STREPTOMYCES GRISEOCARNEUS SUBSP. BLEOMYCINI ВКПМ-S1086 - ПРОДУЦЕНТ БЛЕОМИЦЕТИНА И СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АНТИБИОТИКА БЛЕОМИЦЕТИНА 2007
  • Лапчинская Ольда Анастасьевна
  • Погожева Валерия Владимировна
  • Зенкова Валентина Александровна
  • Федорова Галина Борисовна
  • Пономаренко Валерий Иванович
  • Катруха Генрих Степанович
  • Преображенская Мария Николаевна
RU2358008C2
СРЕДСТВО ДЛЯ ЛЕЧЕНИЯ БОЛЕЗНЕЙ СОЕДИНИТЕЛЬНОЙ ТКАНИ 1992
  • Уваркина Т.П.
  • Данилова Т.И.
  • Матюшина Т.А.
RU2005488C1
ШТАММ AMYCOLATOPSIS ORIENTALIS SUBSP. EREMOMYCINI ВКПМ-S892 - ПРОДУЦЕНТ АНТИБИОТИКА ЭРЕМОМИЦИНА И СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АНТИБИОТИКА ЭРЕМОМИЦИНА 1997
  • Бражникова М.Г.
  • Лайко А.В.
  • Федорова Г.Б.
  • Преображенская Т.П.
  • Свешникова М.А.
  • Лапчинская О.А.
  • Сабурова Т.П.
  • Погожева В.В.
  • Ломакина Н.Н.
  • Бердникова Т.Ф.
  • Катруха Г.С.
  • Толстых И.В.
  • Голова Т.П.
  • Архангельская Н.М.
  • Гладких Е.Г.
  • Макарова М.О.
  • Шаповалова С.П.
  • Шепелевцева Н.Г.
  • Филиппосьянц С.Т.
RU2110578C1
Способ получения ферментного препарата @ -галактозидазы 1979
  • Селезнева Аида Александровна
  • Бабенко Галина Андреевна
  • Момот Николай Николаевич
  • Столыпин Олег Святославович
  • Кондратьева Ольга Владимировна
  • Васильева Эльза Васильевна
  • Духович Берта Павловна
  • Рабинович Илья Моисеевич
  • Парр Галина Семеновна
  • Михайлова Наталия Георгиевна
  • Терешин Игорь Михайлович
SU891776A1
ШТАММ STREPTOALLOTEICHUS CREMEUS SUBSP. TOBRAMYCINI ВКПМ S-1084 - ПРОДУЦЕНТ АПРАМИЦИНА И СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АПРАМИЦИНА 2007
  • Лапчинская Ольда Анастасьевна
  • Лаврова-Балашова Майя Федоровна
  • Пономаренко Валерий Иванович
  • Катруха Генрих Степанович
  • Преображенская Мария Николаевна
RU2392311C2
Способвыделения фермента тромболитического действия 1975
  • Самсонов Георгий Васильевич
  • Кольцова Светлана Васильевна
  • Шатаева Лариса Константиновна
  • Кузнецова Надежда Николаевна
  • Рожецкая Карина Моисеевна
  • Парадеева Ирина Константиновна
  • Федорова Зоя Дмитриевна
SU584034A1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ТИЛОЗИНА 1993
  • Тер-Саркисян Э.М.
  • Даниленко В.Н.
  • Дебабов В.Г.
  • Юстратова Л.С.
  • Бобылева Р.И.
  • Алиева Р.О.
RU2108392C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ РИСТОМИЦИНА Д 1970
  • М. Г. Бражникова, В. К. Коваленкова, М. Ф. Лаврова, М. К. Кудинова,
  • Н. Н. Ломакина, Г. В. Гаврилина Л. С. Покрас
SU268596A1

Реферат патента 1992 года Способ получения гиалуронидазы

Изобретение относится к биотехнологии, в частности к микробиологической промышленности, и может быть использовано в производстве высокоактивных ферментных препаратов для приготовления лекарст- венных средств. Цель изобретения - повышение активности и степени чистоты гиалуронидазы. Способ заключается в том, что штамм Streptomyces actinocidus 77 выращивают глубинным способом, фильтрат культуральной жидкости подкисляют до рН 4,4-4,6, осветляют и сорбируют на карбоксильном катионите КМ-2п. Сорбент промывают и гиалуронидазу десорбируют щелочными растворами, затем элюат обесцвечивают активированным углем при перемешивании и уголь отделяют. Удельная активность продукта 60 МЕ/мг, степень очистки 30. 2 з.п. ф-лы, 5.табл.

Формула изобретения SU 1 723 121 A1

Таблица 1

Продолжение табл. 1

Таблица 2

Таблица 3

Таблица 4

Таблица5

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 1992 года SU1723121A1

Авторское свидетельство СССР № 974816, кл
Способ гальванического снятия позолоты с серебряных изделий без заметного изменения их формы 1923
  • Бердников М.И.
SU12A1

SU 1 723 121 A1

Авторы

Уваркина Тамара Павловна

Молодова Галина Алексеевна

Максимов Вячеслав Иванович

Матюшина Татьяна Андреевна

Данилова Татьяна Андреевна

Шатаева Лариса Константиновна

Жукова Нелли Гарифовна

Зорина Ариадна Ивановна

Ожерельев Сергей Юрьевич

Даты

1992-03-30Публикация

1990-01-19Подача