Изобретение относится к ветеринарной микробиологии и биотехнологии, а именно к способу получения иммунных сывороток, и может быть использовано при производстве диагностических препаратов.
Известен способ получения иммунной хламидийной сыворотки путем заражения суягных овцематок возбудителем хламидиозного аборта овец и забора крови через 1 мес после аборта.
Недостатками прототипа являются: зависимость от физиологического состояния овец; отсутствие точного метода определения срока суягности овец; использование живого возбудителя хламидиозного аборта овец - в некоторых случаях наблюдается
гибель и неспецифические аборты из-за токсического действия хламидий; невысокая активность сыворотки при получении в производственных условиях.
Целью изобретения является упрощение способа получения иммунной хламидийной сыворотки, повышение ее активности и специфичности.
Поставленная цель достигается тем, что несуягным овцам или баранам однократно внутримышечно вводят очищенные и концентрированные элементарные тельца возбудителя хламидиозного аборта овец после инактивации формалином в смеси с неполным адъювантом Фрейнда в
vj о
СА) 00 U
соотношении 1:2. Через 1 мес после инъекции антигена овец тотально обескровливают,
П р и м е р 1. Возбудителем хламидиоз- ного аборта овец заражают 300 куриных эмбрионов (КЭ) в желточный мешок. КЭ, погибшие в первые 3 дня после инокуляции, выбраковывают, а погибшие на 4-10 дни вскрывают для отбора желточной оболочки.
Для приготовления антигена -иммуно- гена используют 10%-ную взвесь желточных оболочек КЭ, приготовленную на 0,2 М фосфатном буфере (ФБ) рН 7,2-7,4 путем растирания в ступке. Хламидии из 10%-ной взвеси концентрируют и очищают путем центрифугирования дифференциального и в ступенчатом градинте сахарозы по следующей схеме:
10%-ная хламидийсодержащая взвесь;
центрифугирование при 2500 об/мин в течение 20 мин;i
центрифугирование надосадочной жидкости при 18000 об/мин в течение 40 мин;
гомогенизация осадка в 0,01 М ФБ рН 7,2-7,4, наслоение на 30%-ную сахарозу на 0,ОШ ФБ и центрифугирование при 20000 об/мин в течение 60 мин;
гомогенизация осадка в 0,01 М ФБ и наслоение на ступенчатый градиент сахарозы (снизу вверх 60%, 45% и 30%) и центрифугирование при 20000 об/мин в течение 60 мин;
сбор хламидий между 45 и 30%-ными растворами сахарозы и отмывание в 0,01 М ФБ путем центрифугирования при 18000 об/мин в текчение 40 мин; j
гомогенизация осадка в 0,2М ФБ, определение оптической плотности взвеси хламидий на спектрофотометре СФ-46 при длине волны 280 нм и вычисление количества белка в 1 мл.
Взвесь хламидий с содержанием белка 120 мкг/мл инактивируютО,4%-ным формалином (конечная концентрация) при 37°С. в течение 5 сут, смешивают с неполным адь- ювантом Фрейнда в соотношении 1:2 и вводят несуягным овцам или баранам внутримышечно с внутренней поверхности бедра в обе конечности (по 5 мл в каждую сторону). Через 1 месяц после иммунизации производят тотальное обескровливание и исследуют сыворотки в РСК и РЭМА на содержание специфических хламидийных антител (табл.1).
Как свидетельствуют данные табл.1, внутримышечное введение несуягным овцам как живых, так и инактивированных хламидий в смеси с неполным адьювантом Фрейнда позволяет получить высокоактив
5
0
5
0
5
0
5
0
0
5
ные сыворотки. Антитела к контрольному антигену, изготовленному из желтолчных оболочек неинфицированных КЭ, в хламидийных сыворотках ни в РСК, ни в РЭМА не обнаружены.
П р и м е р 2. Проводились опыты с целью выяснения влияния способа введения специфического антигена на серологическую активность иммунной сыворотки.
Антиген для иммунизации готовят так же, как и в примере 1.
Смесь антигена с неполным адъюван- том Фрейнда в соотношении 1:2 вводят несуягным овцам или баранам внутрикожно вдоль позвоночника с обеих сторон (в 15 точек с каждой стороны по 0,35 мл). Общий объем введенной смеси составляет 10 мл. Через 1 месяц после инъекции антигена производят тотальное обескровливание и исследование сывороток крови в РСК и РЭМА на содержание специфических хламидийных антител (табл,2).
Как видно из табл.2 внутрикожное введение хламидий в смеси с неполным адъю- вантом Фрейда также приводит к выработке высокоактивных и специфических антител. Однако следует заметить трудоемкость внут- рикожного способа инъекции антигена по сравнению с внутримышечными, особенно в производственных условиях,
П р и м е р 3. Опыты по сравнительному испытанию предложенного способа по изобретению и по прототипу,
С этой целью в качестве подопытных животных берут 3 группы по 5 голов:
1группа (прототип) - овцы 2,5-месячной суягности, которых заражают интратрахе- ально и подкожно по 5 мл 20%-ной взвесью желточных оболочек КЭ, инфицированных возбудителем аборта овец, имеющей инфекционный титр в 107 КЭЛД 50/0,3 мл;
2группа (по изобретению) - несуягные овцы;
3группа (по изобретению) - бараны возраста 2-3 лет, с живой массой не менее 45 кг. Животных 2 и 3 групп иммунизируют согласно схеме по примеру 1 инактивиро- ванным возбудителем.
Из 1 группы 1 овца оказалась несуягной. Иммунная хламидийная сыворотка у овец этой группы получена через 2 месяца после заражения, у животных 2 и 3 групп - через 1 месяц. Результаты излучения активности сывороток в РЭМА и РСК представлены в табл.3.
Данные таблицы показывают, что предлагаемый способ позволяет изготовить высокоактивную и специфическую хла- мидийную сыворотку и упростить технологию ее производства за счет замены суягных овец несуягными или баранами.
Технико-экономическая эффективность предложенного технического решения в сравнении с прототипом заключается в замене суягных овец несуягными или баранами для получения иммунной сыворотки, необходимой для набора антигенов и сывороток для серологической диагностики хла- мидиозного аборта овец и коз и набора флуоресцирующих иммуноглобулинов и контрольных сывороток для диагностики хламидиозного аборта овец и коз и разрабатываемых наборов для выявления хлами- дийных антител и антигенов в РЭМА.
Формула изобретения
Способ получения иммунной хламидий- ной сыворотки, предусматривающий однократную иммунизацию продуцентов антигеном из очищенных и концентрированных хламидий, взятие крови с последующим выделение целевого продукта, отличающийся тем, что, с целью упрощения
способа, повышения активности, специфичности и выходе сыворотки, в качестве продуцентов используют несуягных овец или баранов, а иммунизацию проводят внутримышечно антигеном из иннактивированной
культуры возбудителя хламидиоза с неполным альювантом Фрейнда, взятых в объемном соотношении 1:2 соответственно,
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ИММУНОГЛОБУЛИНОВ ДЛЯ СПЕЦИФИЧЕСКОЙ ТЕРАПИИ ХЛАМИДИОЗА У ПЛОТОЯДНЫХ ЖИВОТНЫХ | 2003 |
|
RU2259849C2 |
ВАКЦИНА ДЛЯ СПЕЦИФИЧЕСКОЙ ПРОФИЛАКТИКИ ХЛАМИДИОЗА СВИНЕЙ | 2002 |
|
RU2247577C2 |
ВАКЦИНА ДЛЯ СПЕЦИФИЧЕСКОЙ ПРОФИЛАКТИКИ ХЛАМИДИОЗА КРУПНОГО И МЕЛКОГО РОГАТОГО СКОТА | 2005 |
|
RU2301682C1 |
Вакцинная композиция для профилактики энзоотического аборта у овец | 2023 |
|
RU2802251C1 |
Штамм Chlamydia abortus "Chlamydia VNITIBP-21" для производства иммунобиологических лекарственных препаратов | 2022 |
|
RU2798283C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АНТИГЕНА ДЛЯ РЕТРОСПЕКТИВНОЙ ДИАГНОСТИКИ ХЛАМИДИОЗОВ ЖИВОТНЫХ | 2011 |
|
RU2485972C1 |
ВАКЦИНА ДЛЯ СПЕЦИФИЧЕСКОЙ ПРОФИЛАКТИКИ ХЛАМИДИОЗА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА | 1991 |
|
RU2092188C1 |
Способ получения хламидиозного антигена для реакции непрямой иммунофлюоресценции | 1989 |
|
SU1711898A1 |
ШТАММ ГИБРИДНЫХ КУЛЬТИВИРУЕМЫХ КЛЕТОК ЖИВОТНЫХ MUS. MUSCULUS L., ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ К CHLAMYDIA | 1998 |
|
RU2158760C2 |
ВАКЦИНА КУЛЬТУРАЛЬНАЯ ИНАКТИВИРОВАННАЯ ПРОТИВ ХЛАМИДИОЗА КРУПНОГО И МЕЛКОГО РОГАТОГО СКОТА | 2002 |
|
RU2233174C2 |
Использование ветеринарная микробиология, биотехнология, иммунная сыворотка, диагностические препараты, хламидиоз. Сущность изобретения: возбудитель хламидиозного аборта овец, выращенный на желточной оболочке куриных эмбрионов, подвергается очистке и концентрированию путем центрифугирования дифференциального и в ступенчатом градиенте сахарозы. В дальнейшем взвесь элементарных телец хламидий (содержание белка 120 мкг/мл) инактивируется 0,4%-ным формалином (конечная концентрация), смешивается с неполным адьювантом Фрейнда в соотношении 1:2 и однократно внутримышечно вводится несуягным овцам в количестве 10 мл (по 5 мл с внутренней поверхности бедра в обе конечности). Через 1 месяц после инъекции антигена овцы тотально обескровливают, отделяют сыворотку и консервируют фенолом. 3 табл. (Л С
Приведены обратные величины титров антител.
Таблица 1
Таблица 2
Таблица 3
Временная инструкция по изготовлению и контролю набора антигенов и сывороток для серологической диагностики хламидиозного аборта овец и коз и набора флуоресцирующих иммуноглобулинов и контрольных сывороток для диагностики хламидиозного аборта овец и коз | |||
ГУВ Госагропрома СССР, 1987. |
Авторы
Даты
1992-12-07—Публикация
1989-10-06—Подача