Способ получения пептидов Советский патент 1974 года по МПК C07C103/52 

1

Изобретение относится к получению пептидов на иолимерных носителях в гомогенной фазе.

Известный способ получения пептидов на полимерном носителе в органическом растворителе состоит в том, что N-защищенную аминокислоту в виде соли конденсируют при нагревании в органическом растворителе с хлорметилированным полистиролом. N-защиту удаляют известными методами и необходимую аминокислотную последовательность создают конденсацией полимер - аминокислоты с соответствуюш,ими М-запдищенными аминокислотами в растворе. Иосле каждой стадии полимер - пептид отделяют от низкомолекулярных веществ осаждением. После постройки аминокислотной последовательности пептид отделяют от полимера. Применение известного способа связано с некоторыми трудностями. Вопервых, присоединение первой аминокислоты к полимеру требует относительно жестких условий реакции (нагревание в присутствии триэтиламина). Во-вторых, осаждение полимерпептида после каждой стадии происходит не полностью, вызывает его фракционирование и

увлечение в осадок низкомолекулярных примесей. Это ириводит к потерям целевого пептида и его загрязнению.

Предлагаемый способ получения позволяет

избежать указанных трудностей. N-защищенпую С-концевую аминокислоту создаваемого пептида связывают в мягких условиях в растворе сложноэфирной связью с гидроксилсодержащим полимером - носителем с мол. в.

10000-100000. В качестве полимера - носителя могут быть исиользованы полиэтиленгликоли, их сложные эфиры с лимонной кислотой, сополимеры полиэтиленгликоля с янтарной кислотой и т. д. Образование сложной

эфирной связи можно проводить, например, с помощью дициклогексилкарбодиимида. Можно также предварительно вводить С-концевую аминокислоту в мономер, а затем получать полимер-носитель с присоединенной

аминокислотой. N-защиту с полимер - аминокислоты удаляют, например, ацидолизом или гидрированием. Полимер отделяют от низкомолекулярных веществ диализом, ультрафильтрацией, колоночной хроматографией или противоточным распреде пением, а не осаждением, как в известном способе. Дальнейшее ступенчатое наращивание пептидной цепи ведут как обычно, применяя для образования амидной связи дициклогексилкарбодиимид, алкилхлорформиат, азиды пли активированные эфиры N-защищенных аминокислот. Реакцию проводят в растворе в органических растворителях. Для водорастворимых полимеров-носителей возможно образование амидной связи в водной среде. В этом случае как конденсирующее средство ирименяют водорастворимый карбодиимид. После каледой стадии конденсации N-защиту отщепляют подходящим способом и полимер отделяют от иизкомолекулярных веществ. Разрушение связи готового пептида с полимером-носителем проводят известными методами, наиример щелочным гидролизом или аммонолизом. Пептид отделяют от полимера одним из указанных методов.

Пример 1. Этерификация БОК -валил-ОН с ПЭТ (мол. в. 20000).

20 г ПЭГ 4,34 г БОК-валил-ОН и 4,12 г ДЦК растворяют в 200 мл CH2CI2 и перемешивают при комнатной температуре без доступа влаги в течение 5,5 суток. Реакционную смесь выпаривают в вакууме досуха, прибавляют 100 мл 4 н. НС1/диоксана, перемешивают при комнатной температуре в течение 30 мин и выпаривают досуха в вакууме. Остаток растворяют иримерно в 1 л воды. Образующийся при этом осадок выделяют при помощи фильтровального вспомогательного вещества. Фильтрат доводят до рН 6 при помощи NaOn или триэтиламина и ультрафильтруют через Диафло ультрафильтр УМ 10 пока в фильтрате можно обнаружить свободный валин. Фильтрат выпаривают в вакууме досуха, остаток высушивают смесью бензола с абсолютным этанолом (80/20)до постоянного веса. Выход Н-валил-ПЭГ 19,35г. Содержание аминокислоты 80%, или 0,08 ммоль/г (аминокислотный анализ).

Б. Синтез пептида. 5 г Н-валпл-ПЭГ растворяют в 50 мл СН2С12 и прибавляют 0,1 мл триэтиламина. После прибавления 0,44 г БОКглицил-ОН (2,5 ммоля) и 0,515 г ДЦК (2,5 ммоля) перемешивают 2 часа при комнатной температуре, выпаривают досуха в вакууме, в течение 30 мин обрабатывают при комнатной температуре 40 мл 4 н. ПС1/диоксана и снова выпаривают досуха в вакууме. Маслянистый остаток растворяют в 500-700 мл воды, осадок отделяют, фильтрат доводят до рН 6 при помощи NaOH или триэтиламина п подвергают ультрафильтрацпп через Диафло ультрафильтр УМ 2. Фильтрат обрабатывают. Выход Н-глицил-валил-ПЭГ 4,85 г.

Указанным образом к Н-глицил-валпл-ПЭГ прибавляют триэтилампн и приводят в реакцию с 2,5 мм БОК-аланил-ОН и 2,5 ммоль

БОК - трет-бутоксикарбонил

ПЭГ - полиэтргленгликоль

ДЦК - дициклогексилкарбодиимид

464736

ДЦК. После отщепления защитной группы и ультрафильтрации получают 4,75 г П-аланилглицил-валил-ПЭГ. Соответствующим взаимодействием П-аланил-глицил-валил-ПЭГ с БОК-лейцил-ОП и ДЦК иолучают Н-лейцилаланил-глицил-валил-ПЭГ (4,5 г). Аминокислотный анализ гидролизованной пробы этого вещества показывает следующее соотношение аминокислот : валил : глицил : аланил : лейцпл 1,08: 1,00:0,90: 1,04.

В. Отщепление тетрапеитида от носителя. Раствор 4,0 г Ц-лейцил-аланил-глицил-валилПЭГ в 75 м воды и 1,5 мл 1 н. КОН перемешивают в течение 2 час при комнатной температуре, точно нейтрализуют 1,5 мл 1 н. ЦС1 и ультрафильтруют через Диафло ультрафильтр УМ iO до тех пор, пока не будет собрано 3,5 л фильтрата. Он дает после выпаривания в вакууме 280 мг сырого продукта, который частично освобождают от NaCl дигерированием абсолютным метанолом. Метанольный раствор обеспечивают углем, фильтруют и выпаривают досуха. Остаток растворяют в воде и лиофилизуют. Получают 191,5 мг сырого тетрапептида, аминокислотный анализ которого показывает следующее соотношение аминокислот : валил : глицил : аланил : лейцил 1,03 : : 1,00:0,85: 1,07. Доля пептида в сыром веи;естве составляет 35% (аминокислотный анализ), т. е. рассчитанный на первую аминокислоту (валин) общий выход составляет 45%. Вещество идентично заведомому образцу, полученному по методу Меррифилда. Пример 2.

А. К 4,34 г БОК-валил-ОП и 2,8 мл триэтиламина в 80 мл СН2С12 прикапывают при перемешивании при -5°С 1,91 мл этилового эфира хлоругольной кислоты в 20 мл СНзС, через 30 мин при -5°С прибавляют охлажденный (-5°С) раствор 20 г ПЭГ (мол. в. 20 000) и 2,4 г (20 ммоль) диметиламинопиридина в 100 мл СН2С12. Реакционную смесь перемешивают в течение часа при -5°С и 65 час при комнатной температуре. Для блокировки

не прореагировавших гидроксильных групп перемешивают реакционную смесь 4 часа с 10 ммолями уксусного ангидрида и 10 ммоль триэтиламина при комнатной температуре и выпаривают в вакууме досуха. Остаток обрабатывают 30 мин при комнатной температуре 100 мл 4 н. HCl в диоксане, выпаривают досуха в вакууме и растворяют примерно в 1 л воды. После фильтрации и установки рП ультрафильтруют и обрабатывают как описано

выше. Выход 19 г П-валил-ПЭГ. Содержание аминокислоты 607о, или 0,06 ммоль/г (аминокислотный анализ).

Б. Псходя из 12,7 г П-валил-ПЭГ, синтезируют описанный в примере 1Б тетрапептид

тем же образом. Реагенты: 1 ммоль триэтиламина, 4,0 ммоля БОК-аминокислоты, 4,0 ммоля ДЦК. Получают 11,5 г П-лейцил-аланилглицил-валил-ПЭГ со следующим соотношением аминокислот: валил : глицил : аланил : лейцпл 0,88: 0,86: 1,11 : 1,00.

В. Как описано в примере 1В, гидролизуют 10 г Н-лейцил-аланил-глицил-валил-ПЭГ в 100 мл воды и 3 мл 1 н. КОН. После нейтрализации, ультрафильтрации и обработки получают 300 мг сырого тетрапептида, который имеет следующее соотношение аминокислот: валил : глицил : аланил : лейцил 0,96 : 0,91 : : 1,24: 1,00. Для пептида в сыром продукте составляет 41% (аминокислотный анализ), т. е., считая на первую аминокислоту (валил), общий выход составляет 57% от теопетического.

Примерз. К 6г Н-валил-ПЭГ (80%, 0,5 ммоля валина и 0,09 мл триэтиламина (0,6 ммоля), растворенным в 600 мл СПоС. прибавляют 1,05 г БОК-глицил-ОПФ (3.5 ммоля) и перемещивают 24 часа при комнатной температуре. После выпаривания в вакууме остаток перемешивают 30 мин при комнатной температуре с 60 мл трифторуксусной кислоТЫ/СН9С12 (1:1) и вновь выпаривают досуха в вакууме. Остаток растворяют примерно в 700 мл воды, фильтруют и фильтрат доводят до рН 6 при ПОМОШ.И NaOH.

После ультрафильтрации (диафло ультрафильтр УМ 10) обрабатывают как описано в примере 1Б. Выход Н-глицил-валил-ПЭГ 5,88 г.

Аналогично примеру 1Б Н-глицил-валилПЭГ обрабатывают БОК-лейцил-ОНП. Получают 5,6 г Н-лейцил-аланил-глицил-валилПЭГ со следующим соотношением аминокислот : валил : глицил : аланил : лейцил 1,00: :0,70 : 0,78 : 0,71. 5,6 г Н-лейцил-аланил-глицил-валил-ПЭГ гидролизуют по принтеру 1В и отщепленный тетрапептид обрабатывают соответственно. Получают 250 мг сырого тетрапептида со следующим соотноптением аминокислот: валил : глииил : аланил : лейцил 1.00: : 0,83 : 0,93 : 0,88. Доля пептида в сыпом тетрапептиде составляет 32%, т. е., считая на первую аминокислоту (валин), общий выход составляет 50% от теоретического.

Пример 4.

А. 10 г ПЭГ (мол. в. 20000), 1,75 г БОКглицил-ОН и 2,06 г ДЦК растворяют в 100 мл СНдСЬ и перемешивают в течение 6 суток при комнатной температуре. Реакционную смесь выпаривают в вакууме досуха, прибавляют 100 мл 1,2 н. НС1 в ледяной укс сной кислоте и перемешивают 20 мин при комнатной температуре.

Растворитель отгоняют в вакууме, а к остатку прибавляют 100 мл воды. Полученный осадок отделяют центрифугированием. Прозрачный верхний слой декантируют, доводят до рН 6 триэтиламином и ультрафильтруют через Диафло ультрафильтр УМ 10 до тех пор, пока ультра фильтрат еще содержит глицил-ОН. Остаток выпаривают в вакууме и следы воды дважды азеотропно отгоняют с бензолом. Продукт сушат в экссикаторе до постоянного веса. Выход Н-глицил-ПЭГ 9,8 г, содержание аминокислоты 0,06 ммоль/г.

Б. 9,8 г Н-глицил-ПЭГ растворяют в 60 мл СН2С12 и нейтрализуют 0,7 ммоля М-мети,-;

морфолина. В отдельном сосуде растворяют 3 ммоля БОК-лейцил-ОН в 5 мл и 1 мл .-пшетилбормамида, нейтпализуют 3 ммоля Х-метилмопфолина, охлаждают до -20°С, прибавляют 2.6 ммоля изобутилхлопоформиата и перемешивают 10 мин при -20°. Смешанный ангидрид прибавляют при -20°С к раствору Н-глицил-ПЭГ и перементивают в течение часа при -20° и 2 часа при 4°С. Растворитель отгоняют, остаток обрабатывают 15 мин ПРИ комнатной тнмпературе 50 мл 1.2 н. НС1 в леляиой уксусной кислоте и опять выпаривают в вакууме досуха. Остаток растворяют в 100 мл воды, доводят до рН 6 водНЫА1 паствором аиетата натрия и ультпаЛпльтруют через Диафло ультрафильтр УМ 10. Остаток выпаривают в вакууме досуха, дважды азеотропно высушивают с бензолом н сушат в экссикаторе. Выход Н-лейцил-глицттлПЭГ 9.5 г.

Аналогично сочетают другие аминокислоты в виде следуюитих пооизводных: БОК-аланилОН, БОК-Ю-бензил)-твеонил-ОН, БОК-лейцил-ОН. БОК-валил-ОН, БОКЮ-бензил)-тпеоиил-ОН, БОК-валил-ОН. После последнего сочетания получают 8,0 г,

Н-валил-тоеонил - валил - лейцил - треонилбензил

30бензил

алант1л-лейцпл-глицил-О-ПЭГ

Анализ аминокислот гидролизиоованной пробы этого BeniecTBa дал следующий результат:

глицил : лейцил : аланил : треонил j валил 1,0 : 1,89 : 1,67 : 1,0, Значения для отдельных аминокислот получпли из результатов анализов амииокислот на промежуточных ступенях.

Пример 5.

А. Лтпюнную КИСЛОТУ этерифицируют в сложный эфир с ПЭГ (мол. в. 6000) с помощью эквимолярного количества ДЦК (пассчитано на ПЭГ) в метпленхлориде (10%-ный раствор) в течение 3 суток. Растворитель отгоняют, остаток растворяют в воде н полученный осадок отпеитрифугипуют. Раствор ультрафильтруют (Амикон, УМ-2-фильтр) упаривают Е вакууме и остаток сушат до иостоянного веса. Выход 80% от теоретттческого. Высушенный полимер этерифицируют БОК-валил-ОН и ДНК (оба компонента в 5-кратном избытке, считая на 0,2 ммоль/г функциональных групп на полимепе) в 10%-ном растворе в СНоСЬ в течение 3 суток при комнатной температуре. Содержание аминокислоты в полимере после принятой обработки и отщепления БОК-группы с 4 н. НС1/диоксан:

: 0.2 тмоль/г.

Б, По ДНК-методу получают следующтге активированные сложные эфиры:

) 3-кратный избыток ПЗГ, считая на функциональ65 iii.ie группы лимонной кислоты БОК-лейцил-ПХФ БОК-глицил-ОНФ, БОК-глутаминил-ОНФ. Сочетания проводят следующим образом. 1 ммоль (5 г) Н-валил-полимера растворяют в 50 мл СН2С12/диметилформамид (1:1), нейтрализуют 1,2 ммоля N-метил-морфолина и прибавляют 3 ммоля активированного эфира БОК-аминокислоты. Через 5 мин к раствору прибавляют еще 1,2 ммоля N-метил-морфолина и перемещивают 2 часа при комнатной температуре. Растворитель отгоняют в вакууме, к остатку прибавляют 50 мл 4 и. НС1/диоксана и оставляют стоять на 30 мин при комнатной температуре. После повторной отгонки растворителя растворяют остаток в смеси воды/этанола (3:1) и ультрафильтруют при помощи Диафло ультрафильтра УМ-2. Остаток суилат. Выход Н-глицил-лейцил-валил-полимера 4 г. Результат аминокислотного анализа гидролизованной пробы: валил : лейпил : глицил : глутаминил: 1,0 : 0,9 : 1,0 : 0,98. 2,0 г Н-глутаминил-глицил-лейцил-валил-полимера перемещивают 4 час в 0,2 н. КОН (50 мл) при комнатной температуре, нейтрализуют 2 н. НС1 и пропускают через колонну (2,5X100 см) с Сефадексом G-25. Сырой иептид н-глутаминил - глицил - лейцпл-валилОН получают с выходом примерно 50%Аминокислотный анализ дает следующие значения: валил : лейцил : глицил : глутамиНИЛ 1,0 : 0,88 : 1,05 : 0,98. Пример 6. А. ПЭГ (мол. в. 4000) этерифпцируют 10кратным избытком БОК-глипил-ОН и ДЦК в 10%-ном растворе СН2С12 в течение 5 суток при .домнатной температуре. После этого отщепляют защитную группу, растворитель отгоняют, остаток растворяют в воде и полученный осадок отделяют центрифугированием. Раствор ультрафильтруют с Диафло ультрафильтром УМ-2, растворитель отгоняют и остаток сушат. Содержание аминокислоты найдено аминокислотным анализом как 100%-ное. Малеиновую кислоту подвергают взаимодействию с «-нитрофенолом и ДЦК, получая диОНФ-эфир малеиновой кислоты. Выход примерно 80% от теоретического, температура плавления 185-190°С. На двойную связь полученного таким образом сложного эфира малеиновой кислоты присоединяют йодоводород. Полученный ди-п-нитрофениловый эфир монойодянтарной кислоты подвергают взаимодействию с Ag-солью БОК-валил-ОН, получая ди-ОНФ-эфир БОК-валил-О-янтарной кислоты. Эквимолярные количества ПЭГ-глицил-Н (нейтрализованный N-метил-морфолином) и ди-ОНФ-эфира БОК-валил-О-янтарной кислоты растворяют в СНаСЬ диметилформампдс (I : 1; 10-ный раствор) и перемешивают при комнатной температуре 24 часа. После этого отгоняют растворитель, остаток растворяют в воде и ультрафильтруют (Диафло ультра) , -. |11:итя :лорфени,1

ОНФ - -нитрофенил фильтр УМ-10), пока толпдиновая проба в ультрафильтрате не станет отрицательной. Фильтрат упаривают в вакууме и остаток сущат. Аминогруппы Н-глицил-ПЭГ после этого подвергают взаимодействию с ангидридом 3сульфопропионовой кислоты. Из полученного продукта отщепляют БОК-группу при помощи 4 н. НС1/диоксана. Полученный полимер 1гмсет мол. в. выще 20000 (согласно удержан1по). Б. 2 г полученного полимера и 6 ммолей БОК-лейцил-ПХФ перемещивают в 20 мл СН2С12/диметилформамида (1 : 1) 3 час при комнатной температуре (через 5 мин прибавляют к реакционной смеси 2 ммоля N-метилморфолина). После этого отгоняют растворитель в вакууме, остаток обрабатывают 20 мин 40 мл 4 н. НС1/диоксана и растворитель опять отгоняют. Остаток растворяют в 100 мл воды п ультрафильтруют (УМ-10). Воду выпаривают и остаток сущат. Выход 1,9 г. Анализ: валил : лейцил 1,0: : 0,95. В. 1,9 г дипептид-полимера перемешивают в течение 3 час при комнатной температуре в 0,2 н. водного КОН, нейтрализуют 2 н. НС1 и ультрафильтруют через УМ-10-фильтр. Фильтрат выпаривают в вакууме. Выход сырого продукта 350 мг. Содержание пептида составляет 70%. Аминокислотный анализ: валил: : лейцил 1,0 : 0,97. Пример 7. Сначала этерифицируют БОКглицил-ОН с ПЭГ (мол. в. 200) согласно примеру 6А. Удаление избыточных компонентов проводят ультрафильтрацией с Диафло фильтром УМ-2 или хроматографией на Сефадексе. Полученный продукт конденсируют аналогично примеру 6 с ди-ОНФ -эфиром малеиновой кислоты. К продукту конденсации присоединяют йодоводород и йодированный продукт подвергают взаимодействию с Ag-солью БОК-аланил-ОН. В качестве растворителя применяют вместо эфира диоксан. После этерификации растворитель отгоняют, остаток растворяют в воде п ультрафильтруют (УМ-10-фильтр). После сущки остатка получают 95% этерифицированного полимера. После отп1еплеиия защитной группы сочетают с БОК-лейнил-ПХФ. Выход Д111:ептидполимера 1,95 г (93% от теоретического). Аминокислотный анализ: аланил : лейцил 1,0: 1,01. Отщепление пептида от полимерного носителя дает 300 мг сырого продукта. Выход по данным аминокислотного анализа 80% от теоретического: аланил : лейц1 л 1,0 : 1,0. Пептид однороден при тонкослойной хроматографии в системе ледяная уксусная кислота (бутанол) вода (3:1:1). Пример 8. А. Ю г ПЭГ (моль. D. 20000), 1,16 г БОКизолейцил-ОН и 1,03 г ДЦК растворяют в 9 100 мл СНгСЬ и перемешивают 6 суток при комнатной температуре без доступа влаги. Реакционную смесь выпаривают досуха в вакууме, прибавляют 50 мл 4 и. HCl/диоксана п перемешивают 30 мин при комнатной температуре. После отгонки растворителя остаток растворяют в 100 мл воды и выпавший осадок отделяют центрифугированием. ОтдеКантированный раствор доводят до рН 6 при помош,п 2н. NaOH и ультрафильтруют через Диафло ультрафильтр УМ-10. Фильтрат выпаривают досуха в вакууме и сушат. Выход Н-изолейцил-ПЭГ 9,8 г. Содержание изолейцила, согласно аминокислотному анализу, 0,07 ммоль/ /г (70% от теоретического). Б. Получеппый продукт сочетают по очереди с БОК производными аланина, валина и фенилаланина ио следуюшей схеме. 10%-ный водный раствор полимера доводят до рН 3,9 при помощи 4 н. NaOH или 5 н. H2SO4 и охлаждают до 4°С. В отдельном сосу.п,е растворяют БОК-ампнокислоту (5-кратный избыток по сравнению с аминокомпонентной) в 2- 3мл диметилформамида и прибавляют к водному раствору полимера, поддерживая рН 3,9 постояпным. При тех же рН и температуре при перемешивании прибавляют эквимолярное БОК-аминокислоте количество д-толуолсульфоната Ы-циклогексил-К- р-(Ы-метил-морфолино)-этил - карбодиимид-п - толуолсульфонат, поддерживая рН 3,9 при помощи 5 н. H2SO4. Примерно через 15 мин, когда рН больше не изменяется, доводят рН до 7,0 при помощи 4 н. NaOH и перемешивают 30 мин при комнатной температуре. Затем рН опять доводят до 3,9 и сиова прибавляют эквимолярное количество конденсирующего средства. Раствор оставляют на 3- 4часа при рН 7,0 и комнатной температуре и ультрафильтруют. Выпариванием в вакууме получают тетрапептпд-полимер. в Тетрапеитпд-полимер (9 г) обрабатывают 24 час 2 п. КОН в смеси воды/диоксана (9 г в 50 мл) нейтрализуют и подвергают гель-фильтрации через колонну (2,5X80 см) с Сефадексом G-15 в водном растворе. Воду отгоняют (при 40° С). Остаток растворяют в метаноле, растворитель отгоняют и пептид сушат. Выход сырого Н-алапил-валпл-фенплизолейцпл-ОН: примерно 300 мг (не совсем свободен от солей). Аминокислотный анализ дает выход примерно 0,5 ммоля (75% от теоретического, считая па содержание аминокислоты в полимере). Результат анализа после хроматографии на колонне: изолейцил : фенил : валил : алаНил 1,0 : 0,99 : 0,90 : 0,97. Пример 9. А. 20 г ПЭГ (мол. ,в. 20000), 5,0 г Ц -валил-ОН и 4,2 г ДЦК растворяют в 200 мл СН2С12 и перемешивают 10 суток при комнатной тем пературе без доступа влажности. К реакционной смеси прибавляют 1,2 мл ле) Ц - бензилоксикарбонил 454 дЯНой уксусной кислоты, перемешивают еще 20 час и выпаривают в вакууме досуха. Остаток растворяют в 300 мл МеОН, прибавляют 5 мл 4 н. НС1/МеОН и гидрируют .над Pd/C npjt комнатной температуре и нормальном давлении, пока поглощается водород. Катализатор отфильтровывают, фильтрат выпаривают в вакууме досуха, остаток растворяют примерио в 1 л воды и образующийся осадок отделяют. Фильтрат yльтpaiфильтpyют через Диафло ультрафильтр УМ-40 и его обрабатьсвают дальше, как описано в примере 1А. Выход 18,8 г Н-валИл-ПЭГ-НС1. Содержание аминокислоты 88%, или 0,088 ммоль/г (амииоки-слотный анализ). Б. 10 г Н-валил-ПЭГ-НС1 растворяют в 50 мл СН2С12, охлаждают до -20° и раствор доводят до рН 8-9 прибавлением 0,11 мл N-метилморфолина. 1,05 г Ц-глицил-ОН растворяют в 10 мл тетрашдрофурана, охлаждают до -20°, прибавляют 0,55 Мл N-метилморфолина и 0,65 мл изобутиловото эфира хлормуравьиной кислоты и перемешивают 5 ми.н при -20°. Эту смесь прибавляют к охлал-сденному до -20° раствору НчвалилПЭГ и перемешивают 30 мин ниже -10°, 30 мин ниже 0° и 3 час при комнатной температуре. Реакционную смесь выпаривают в вакууме досуха, остаток растворяют в 200 мл МеОН, прибавляют 1,25 мл 4 н. НС1/МеОН и Pd/C и гидрируют ,при комнатной температуре и нормальном давлении до окончания поглощенпя водорода. Катализатор отфильт1ровывают, фильтрат выпаривают в вакууме досуха, остаток растворяют примерно в 1 л воды, фильтруют и ультрафч льтруют через Диафло ультрафильтр УМ-10. Фильтрат от ультрафильтрации вьипаривают досуха в вакууме, сушат при помощи бензола/абсолютного этанола (80/20) и ночь в экссикаторе до постоянного веса. Выход Н-глицил-валил-ПЭГ-НС1 8,0 г. Аналогично доводят 4,0 г Н-глицил-валилПЭГ-НС1 до рН 8-9 при помощи 0,05 мл N-метилморфолина и иодвергают взаимодействию с раствором смешанного ангидрида, изготовленным из 500 мг Ц-аланил-ОН, 0,22 мл N-метилморфолина и 0,26 мл изобутилового эфира хлормуравьиной кислоты в 5 мл тетрагидрофурана. После отщепления защитной группы и ультрафильтрации получают 3,8 г Н-аланил-гл1ЩИЛ-валил-ПЭГ- НС1. Соответствующим взаимодействием этого продукта с Ц-лейцил-ОН. N-метилморфолином и изобутиловым эфиром хлормуравыиной кислоты получают после отщепления защитной гру.пиы и ультрафильтрацип 3,5 г Н-лейцил-аланилглидил-валил-ПЭГ НС1. Анализ аминокислот гидролизированной пробы этого вещества показывает следующее соотношение аминокислот: валил : глицил : : аланил : лейцпл 1,00 : 0,89 : 0,92 : О 94. В. 3,4 г Н - лейцил - аланил - глицил - валилПЭГ-НС1 гидролизуют аналогично примеру В в 62 мл воды при помощи 1,25 мл J н,