шем анализируют на содержание вируса и примесей бе,лка.,
Пример 1. К 60 см .макропористого стекла (МПС-1000) прибавляют 60 мл 1 -10%-кого раствора гамма-аминопропилтриэтоксисилана в ацетоне, хорошо перемешивая, высушивают на воздухе, а затем в сушильном шкафу при 110° С в течение 6 ч. Концентрацию аминогрупп на поверхности такого стекла определяют в пределах 0,1 -1,2 мг зкв/г. К обработанному таким образом стеклу прибавляют 90 мл 0,25 М фосфатного буфера (рН 7,0) и 10 мл 25%ного водного раствора глутарового альдегида и перемешивают 1 ч при комнатной температуре. К промытому водой стеклу прибавляют 100 мл 1 М трис-НС буфера {рН 7,0), полученную суспензию перемешивают 2 ч, промывают водой и загружают в хро.матографическую колонку (0,9X14 см). После заполнения сорбентом колонку уравновешивают элюируюш;им буфером. Элюентом может служить 0,05-0,1 М фосфатносолевой буфер с содержанием 0,1-0,2 М хлористого натрия.(рН 7,,0) или 0,05- 0,1 М трис-буфер с 0,15 yW хлористого натрия (рН 7,5-8,0). Скорость элюции можно изменять в пределах 0,1-4,0 см/мин. Культуральную жидкость, содержащую вирус клеш,евого энцефалита (шт. «Софьин ИЛ(И «Пан) или суспензию вируса гриппа (шт. МРЦ 11) Объемом 0,2-1,0 мл вводят в колонку и элюируют буфером, которым колонка уравновешена. В 4-м-5-м мл элюата выходит очищенный вирус. Белковые примеси выходят из колонки- в 8-м- 10-м мл злюата и не содержат практически вирусной активности. Выход вируса из колонки зависит от концентрации групп трис(-оксиметил-)аминометана на поверхности кремнезема. И в оптимальном случае (0,3- 0,4 мг экв/г) выход как вируса клещевого энцефалита, так и вируса гриппа составлял 90-100% от вирусной активности, введенной в колонку.
Пример 2. К 25 мл силох рома С-80, обработанного предварительно растворами гамма-аминотриэтоксисилана и глутарового альдегида, как описано в примере 1, приливают 25 мл I М трис-НС1 буфера (рН 6,85) и перемешивают в качалке 2 ч при комнатной температуре. После отмывки дистиллированной водой полученный .сорбент уравновешивают в элюирующем буфере и загружают в колонку (0,8X12,0 см). В эту колонку вводят 0,5-1,0 мл суспензии вируса клещевого энцефалита или вируса гр.иппа и проводят элюцию. Элюентом являются буферные растворы, приведенные в примере 1. В 3-м-4-м мл элюата выходит 100% вирусной активности, внесенной в колонку. Примесные белки и низкомолекулярные вещества элюируются в 7-м и 8-м мл
ci щ/ло-уа
Пример 3. Макропористое стекло (МПС-1000), модифицированное трис(-оксиметил-)а:минометаном с содержанием на поверхности модификатора 0,4 мг экв/г,
подвергают последующему восстановлению, которое проводят следующим образом.
К высушенному модифицированному, как описано в примере 1, стеклу добавляют 60 мл дистиллированной воды и 60 мл
0,1%-ного раствора NaBH4 и в течение 30 мин интенсивно перемещивают. Затем обработанное таким образом стекло отмывают дистиллированной водой, уравновещивают элюирзющим буфером и загружают в
колонку (0,8X12,0 см). Через колонку пропускают суспензию с активным йли инактивированным формалином вирусов клещевого энцефалита объемом 0,5-1,0мл. Условия элюирования аналогичны условиям, приведенным в вышеописанных примерах. Выход как активного, так и йнактивированного вируса из колонки составляет 100%.
.Модификация макропористых кремреземов 7р«с(-оксиметил-) аминометаном делает
возможным их использование для гельфильтрационной хроматографии вирусных суспейзий. Такой способ приготовления сорбента устраняет адсорбцию вирусных частиц на поверхности макропористого кремнезема и позволяет производить без потерь очистку вирусного материала.
Использование в качестве модификатора т;7мс(-оксиметил-) аминометана не вызывает загрязнения очищаемых вирусных препаратон биологическ;и активными молекулами, так как он не является биологически активным веществом (он входит,в состав кровезамеНителя).
Данный способ получения сорбента технологически несложен. Полученный сорбент отличается постоянством свойств и долговечностью за счет химического связывания . молекул триса с поверхностью стекла. Модифицированный трис (-оксиметил-)
аминометаном кремнезем не подвержен воздействию различных ферментов, содержащихся в суспензиях вирусов. Это расширяет возможности применения сорбента, полученного данным способом, в частности, делает его пригодным для применения в хроматографии различных ферментов.
Формула изобретения
Способ приготовления сорбента для очистки вирусных суспензий путем последовательной обработки поверхности макропористого кр емнезема модификаторами с последующим промыванием сорбента и уравновешиванием буфером, отличающийс я тем, что, с целью предзпреждёния попадания в вирусный npenaipaT молекул биологически активного модификатора и повышения устойчивости сорбента к фермен5пористого кремнезема модифицируют последовательной обработкой 1-Ш /о-ньшраствором гамма-аминопропилтриэтоксисилана и 1-5 %-ным раствором глутарового альдегида, затем полученный сорбент про-5 мывают дистилли|рованной водой и влажный сорбент смешивают в равных колнчебствах с 0,5-1,5 М раствором грыс(-оксиметил-)аминометана. Источник информации, принятый во внимание при экспертизе: 1. Сборник трудов ИП и ВЭ, М., 1972, с. 18-19.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Способ получения сорбента | 1979 |
|
SU850203A1 |
Способ получения сорбента для очистки вирусных суспензий | 1981 |
|
SU1071306A1 |
Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS. мUSсULUS L. - продуцент моноклональных антител к гликопротеину Е /V 3/ вируса клещевого энцефалита | 1989 |
|
SU1666531A1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ОЧИЩЕННОЙ ВАКЦИНЫ КЛЕЩЕВОГО ЭНЦЕФАЛИТА | 2001 |
|
RU2230573C2 |
СПОСОБ КОНЦЕНТРИРОВАНИЯ ВИРУСА | 1997 |
|
RU2130069C1 |
Способ очистки суспензии вируса от клеточной ДНК | 1988 |
|
SU1532050A1 |
Способ получения пористого кремнеземсодержащего материала для хроматографии биополимеров | 1978 |
|
SU747513A1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ВАКЦИНЫ КЛЕЩЕВОГО ЭНЦЕФАЛИТА | 2001 |
|
RU2203089C2 |
СПОСОБ ВЫЯВЛЕНИЯ КИШЕЧНЫХ ВИРУСОВ В ВОДЕ | 2010 |
|
RU2444011C1 |
Способ получения 5"-нуклеотидов | 1974 |
|
SU521281A1 |
Авторы
Даты
1980-04-05—Публикация
1977-08-31—Подача