Изобретение относится к биотехнологии, генной инженерии и иммунологии и представляет собой гибридный полипептид, состоящий из полипептида, продукта гена gag вируса иммунодефицита человека 1-го типа (ВИЧ-1) и β-галактозидазы E. coli, синтезируемый бактериальным штаммом E. coli, несущим рекомбинантную плазмиду, имеющую в своем составе клонированный фрагмент гена gag ВИЧ-1 (gag1) слитный с геном β-галактозидазы E. coli, и связывающийся с антителами к продуктам этого гена, что позволяет проводить серодиагностику синдрома приобретенного иммунодефицита (СПИД).
СПИД возникает в результате заражения вирусом иммунодефицита человека (ВИЧ). ВИЧ при попадании в организм поражает клетки иммунной системы (Т-лимфоциты, моноциты и макрофаги) и клетки центральной нервной системы. Заболевание характеризуется длительным (от 2-х до 10-и лет) бессимптомным периодом, в течение которого в крови инфицированного определяются только антитела к вирусным белкам, затем следует прогрессирующая деградация иммунной и центральной нервной системы. Поэтому для проведения экстренных противоэпидемических, профилактических мероприятий и своевременного начала лечения ВИЧ-инфекции крайне актуальна разработка диагностических препаратов, позволяющих выявлять инфицированных ВИЧ на ранних этапах инфекции.
Многочисленные исследования ВИЧ позволили определить его структуру, организацию генома, выяснить механизм экспрессии и функции отдельных вирусных белков. В настоящее время известно два типа вируса иммунодефицита человека (ВИЧ-1 и ВИЧ-2), имеющих сходную организацию генома и различающихся по антигенной структуре вирусных белков.
ВИЧ имеет наиболее сложное из всех известных ретровирусов строение генома. Помимо генов gag, pol и env, направляющих синтез основных вирионных белков и общих для всех ретровирусов, геном ВИЧ-1 содержит еще шесть генов: vif, tat, rev (или art, или trs), 3'-nef, vpr и vpu. Геном ВИЧ-2, в отличие от ВИЧ-1, не содержит ген vpu, но содержит ген vpx.
Ген gag ВИЧ-1 кодирует три белка мол.м. 24, 17 и 55 кД, p24 p17 и p55, соответственно. Известно, что у человека, зараженного ВИЧ, уже на ранних этапах развития инфекции в крови появляются антитела к антигенным детерминантам продуктов гена gag. Кроме того, поскольку продукты генов gag ВИЧ-1 и ВИЧ-2 имеют общие антигенные детерминанты, эти белки имеют важное диагностическое значение.
Большинство методов диагностики ВИЧ-инфекции основано на определении антител к белкам ВИЧ в сыворотках крови и других биологических жидкостях (серодиагностика). Для этих целей используются различные подходы, в которых применяется принцип иммуноферментного анализа (ИФА), реакции агглютинации (латекса, эритроцитов), иммунофлюоресценции, иммуноблотинга и радиоиммунопреципитации. Одним из наиболее перспективных путей совершенствования всех этих диагностических тест-систем является использование в качестве антитело-связывающего субстрата рекомбинантных белков ВИЧ, синтезированных в различных экспрессирующих системах. Использование таких рекомбинантных белков, сохраняющих антигенные детерминанты ВИЧ, вместо вирусных антигенов не только увеличивает специфичность и чувствительность тест-систем, но и делает их безопасными в работе. Существует значительное число разработок, направленных на создание рекомбинантных белков-продуктов генов ВИЧ, и в частности гена env.
В настоящее время ведется поиск полипептидов, наиболее перспективных для диагностики, лечения и профилактики СПИД. Исследования ведутся как в направлении выбора клеток продуцентов, так и в направлении выбора наиболее антигеноактивных детерминант и создания рекомбинантных полипептидов, продуктов генов ВИЧ.
Сущность данного технического решения состоит в том, что предложен оригинальный гибридный полипептид G103, состоящий из продукта фрагмента генома ВИЧ-1 и β-галактозидазы E. coli, связывающий антитела к продукту гена gag ВИЧ-1 и ВИЧ-2; фрагмент ДНК, кодирующий полипептид G103 и входящий в состав рекомбинантной плазмиды pHG103; штамм E. coli ВКПМ N В-5871, содержащий рекомбинантную плазмиду pHG103 и экспрессирующий белок G103.
Штамм-продуцент характеризуется следующими признаками: клетки прямые, палочковидной формы, подвижные с перитрихиальными жгутиками, грамотрицательные, неспороносные. Клетки растут на среде LB и других питательных средах, используемых для культивирования Escherichia coli и простых питательных средах, содержащих 10 мкг/мл тетрациклина и 50 мкг/мл ампициллина. При выращивании на питательных агаризованных средах при 37оС колонии клеток гладкие, круглые, блестящие, бледно-желтые, прозрачные, края ровные. При росте на тех же средах, но при 30-32оС колонии клеток имеют "слизистый" фенотип, характерный для колоний клеток с lon мутациями, растущими при пониженной температуре. При росте на жидких средах клетки образуют ровную интенсивную муть. Клетки хорошо растут при температуре 4-37оС при оптимуме рН 6,8-7,5. В качестве источника азота клетки используют как минеральные соли в аммонийной и нитратной форме, так и органические формы в виде пептона и аминокислот. Нитраты восстанавливают до нитритов. Желатину не разжижают. Мальтозу не сбраживают. Уреазная активность не образуется. Трансформацию клеток плазмидами с промоторами бактериофага λ проводят по стандартным методикам. Полученные клоны клеток с плазмидами выращивают на среде LB при температуре 30-32оС.
Препаративную ферментацию для наработки рекомбинантного белка проводят при температуре 39-42оС. Продуктивность штамма при использовании плазмидных векторов экспрессии с промоторами бактериофага λ составляет около 500 мкг рекомбинантного белка на 1 мл клеточной суспензии при плотности культуры 1 х 108 кл/мл. Белок стабилен при температуре 4оС в течение 3-4 мес.
Рекомбинантный полипептид G103, выделенный и очищенный из штамма продуцента, иммобилизованный на твердом носителе (полихлорвиниловые или полистироловые планшеты, нитроцеллюлоза, найлон, латексы, эритроциты и др.), связывает антитела к продуктам гена gag ВИЧ-1 в сыворотках крови и др. биологических жидкостях. Штамм депонирован в коллекции промышленных микроорганизмов НИИ генетики и селекции промышленных микроорганизмов под N В-5871.
П р и м е р 1. Получение фрагмента ДНК HG103.
У ВИЧ-инфицированного человека отбирают из вены 10 мл гепаринизированной крови, к которой добавляют 30 мл лизирующего раствора (155 мМ NH4Cl; 10 мМ KHCO3; 0,1 мм EDTA). Смесь инкубируют 15 мин на льду. Центрифугируют при 2000 G 10 минут при 4оС. Белые клетки ресуспендируют в 10 мл буфера SE (75 мл NaCl, 2 мМ EDTA), добавляют протеиназу К до конечной концентрации 100 мкг/мл и 1 мл 20% SDS. Смесь инкубируют 4 ч при 37оС, добавляют 1/2 объема (5 мл) водонасыщенного фенола и такое же количество хлороформа с изоамиловым спиртом (24:1). Полученную смесь встряхивают на качалке 15 мин и центрифугируют при 2000 об/мин 10 мин. К отобранной водной фазе добавляют 1/30 объема NaOAc (рН 5,5) и равный объем изопропилового спирта. ДНК осаждают центрифугированием и промывают 70%-ным раствором этилового спирта. Осадок ДНК растворяют в буфере ТЕ (10 мМ Трис-HCl, 1 мМ EDTA, рН 8,0) до конечной концентрации 1 мкг/мл.
В эппендорфовскую пробирку на 0,5 мл вносят следующие компоненты: деионизированная вода 43,5 мкл, реакционный буфер 10 мкл 10 х (конечная концентрация 25 мМ Трис-HCl, рН 8,3 (при 25оС), 50 мМ KCl, 2 мМ MgCl2, 1 мМ β-меркаптоэтанол, желатин 200 мкг/мл), смесь dNTP 16 мкл (конечная концентрация 200 мкМ), праймер N1 5'-GTGTATTATATAATGATC-3' 10 мкл (конечная концентрация 1,0 мкМ), праймер N2 5'-GATCTTCCCTAAAAAATT-3' 10 мкл (конечная концентрация 1,0 мкМ), ДНК (матрица для амплификации) 10 мкл (конечная концентрация 1 нг), Taq полимеразу 0,5 мкл (2,5 единицы на пробу).
Содержимое пробирки перемешивают на вертексе 3-4 с и осаждают на микроцентрифуге в течение 5-10 с.
В пробирку добавляют 50 мкл минерального масла и помещают в аппарат для амплификации ДНК N 801-0177 DNA Thermal Cycler Perkin-Elmer Corporation.
Реакционную смесь инкубируют при 94оС 7 мин, а затем проводят цикл амплификации со следующими параметрами: 2 мин при 37оС (гибридизация праймеров), 5 мин при 72оС (достройка праймеров), 2 мин при 94оС (денатурация ДНК). Цикл амплификации повторяют 25 раз. После последнего цикла амплификации реакционную смесь инкубируют при 72оС 10 мин.
В пробирку вносят 50 мкл хлороформа, материал с хлороформом встряхивают 5 с на вертексе, а затем центрифугируют на микроцентрифуге 10 с. Отбирают водную (верхнюю) фазу (около 100 мкл), которая образуется в форме сферической капли, и переносят в чистую пробирку.
10 мкл водной фазы используют для анализа продуктов амплификации в 2%-ном агарозном геле с бромистым этидием (виден фрагмент 1080 п.н.).
Методом Сэнгера определена нуклеотидная последовательность фрагмента ДНК HG103
GATCATTATATAATACAGTAGCAACCCTCTATTGTGTGCATCAAAGGATAGATATAAAAG
ATACCAAGGAAGCTTTAGACAAGATAGAGGAAGAGCAAAACAAAATAAGAAAAAAGCAC
AGCAAGCAGCAGCTGACACAGGAAACAGCAGTCAGGTCAGCCAAATTACCCTATAGTGC
AAACATCCAGGGGCAAATGGTACATCAGGCCATATCACCTAGGACTTTAAATGCATGGG
TAAAAGTAATAGAAGAGAAGGCTTTCAGCCCAGAAGTAATACCCATGTTTTCAGCATTGT
CAGAAGGAGCCACCCCACAAGATTTAAACACCATGCTAAACACAGTGGGGGGACATCAAG
CAGCCATGCAAATGTTAAAAGAGACCATCAATGAGGAAGCTGCAGAATGGGATAGAATAC
ATCCAGTGCATGCAGGGCCTATTGCACCAGGCCAGATGAGAGAACCAAGGGGAAGTGACA
TAGCAGGAACTACTAGTACCCTTCAGGAACAAATAGGATGGATGACAAATAATCCACCCA
TCCCAGTAGGAGATATTTATAAAAGATGGATAATCCTGGGATTAAATAAAATAGTAAGAA
TGTATAGCCCTACCAGCATTCTGGACATAAGACAAGGACCAAAAGAACCTTTTAGAGACT
ATGTAGACCGGTTCTATAAAACTCTAAGAGCCGAGCAAGCTTCACAGGAGGTAAAAAATT
GGATGACAGAAACCTTGTTGGTCCAAAATGCGAACCCAGATTGTAAGACTATTTTAAA A G
CGTTGGGACCAGCGGCTACACTAGAAGAAATGATGACAGCATGTCAGGGAGTAGGAGGAC
CTGGCCATAAGGCAAGAGTTTTGGCTGAAGCAATGAGCCAAGTAACAAATACAGCTGCCA
TAATGATGCAGAGAGGCAACTTTAGGAATCAAAGAAAGATGGTTAAGTGTTTCAATTGTG
GCAAAGAAGGGCACACAGCCAGAAATTGCAGGGCCCCTAGGAAAAAGGCTGTTGGAA A T
GTGGAAGGGAAGGACACCAAATGAAAGATTGTACTGAAAGGCAGGCTAATTTTTTAGGGA
AGATC
П р и м е р 2. Получение плазмиды pHG103.
Синтезированный на ДНК-матрице фрагмент ДНК гидролизуют рестриктазой SauIIIa в буфере для рестрикции (10 мМ Трис-HCl, 10 мМ MgCl2, 50 мМ NaCl и 1 мМ дитиотрейтол рН 7,5) в течение 16 ч при температуре 37оС.
Фермент инактивируется нагреванием при 70оС 15 мин. ДНК осаждают этиловым спиртом и растворяют в 50 мкл H2O. 10 мкл обработанного рестриктазами фрагмента ДНК помещают в эппендорфовскую пробирку, содержащую 3 мл лигазного буфера (50 мМ Трис-HCl, 10 мМ MgCl2, 20 мМ дитиотрейтол, 1,0 мМ АТФ, 50 мкг/мл бычий сывороточный альбумин), 2 мкл (0,2 мкг/мл) ДНК векторной плазмиды pEL5А, обработанной рестриктазой BamHI и 4 мкл H2O. К смеси добавляют 1 мкл (100 ед) Т4 ДНК лигазы и инкубируют 3 ч при 16оС.
Полученной лигазной смесью трансформируют клетки E. coli штамм PLT90 по обычной методике. Трансформированные клетки высевают на чашки с 1%-ным LB-агаром, содержащие 25 мкг/мл ампициллина. Выросшие колонии проверяют на наличие рекомбинантных плазмид. Для этого бактериальные клетки лизируют и выделяют плазмидную ДНК. Выделенную плазмидную ДНК обрабатывают рестриктазами Sma1 и Pst1 и гидролизат исследуют электрофорезом в 1%-ной агарозе.
Гидролизат плазмидной ДНК из рекомбинантного штамма HG103 имеет на электрофореграмме 2 полосы ДНК размерами 6400 и 1100 нуклеотидов, что соответствует размерам вектора и синтезированного нами фрагмента ДНК. При определении нуклеотидной последовательности плазмиды pHG103 установлено, что синтезированный фрагмент гена gag ВИЧ-1 через BamH1 сайт присоединен к 3'-концу гена β-галактозидазы E. coli.
П р и м е р 3. Штамм E. coli HG103, содержащий плазмиду pHG103, выращивают в 100 мл среды LB при 30оС до плотности 1 х 108. После этого температуру повышают до 37оС и растят клетки еще в течение 2 ч. Клетки собирают центрифугированием при 4000 об/мин в течение 15 мин. Клетки лизируют ультразвуком и выделяют белки. Выделенные белки анализируют в 10% ПААГ по стандартному методу Лэммли. В качестве маркеров молекулярных масс белков используют набор фирмы "Pharmacia", содержащий маркеры мол.м. 20-160 кД. В качестве контроля используют полученный аналогичным образом лизат клеток штамма E. coli PLT90, содержащий векторную плазмиду pEL5А и не содержащий полученную плазмиду pHG103. Сравнительный анализ белкового состава показывает, что штамм E. coli HG103, содержащий плазмиду pHG103, экспрессирует гибридный полипептид мол.м. 150-160 кД. Этот полипептид назван G103. Аминокислотная последовательность гибридного полипептида (последовательность β-галактозидазы не представлена), определенная на основании нуклеотидной последовательности клонированного фрагмента провирусной ДНК ВИЧ-2, следующая:
S L Y N T V A T L Y C V H Q R I D I K D T K E A L D K
I E E E Q N K S K K K A Q Q A A A D T G N S S Q V S Q
N Y P I V Q N I Q G Q M V H Q A I S P R T L N A W V
K V I E E K A F S P E V I P M F S A L S E G A T P Q D
L N T M L N T V G G H Q A A M Q M L K E T I N E E A A
E W D R I H P V H A G P I A P G Q M R E P R G S D I
A G T T S T L Q E Q I G W M T N N P P I P V G D I Y K
R W I I L G L N K I V R M Y S P T S I L D I R Q G P K
E P F R D Y V D R F Y K T L R A E Q A S Q E V K N W
M T E T L L V Q N A N P D C K T I L K A L G P A A T L
E E M M T A C Q G V G G P G H K A R V L A E A M S Q V
T N T A A I M M Q R G N F R N Q R K M V K C F N C G
K E G H T A R N C R A P R K K G C W K C G R E G H Q M
K D C T E R Q A N F L G K I слитный с β-галактозидазой E.coli.
П р и м е р 4. Контроль антигенной активности.
Контроль антигенной активности препаратов осуществляют методом иммуноблотинга. Для этого проводят процедуру электрофореза (как описано в примере 3), затем осуществляют перенос электрофоретически разделенных белков на нитроцеллюлозные мембраны BH85 с помощью аппарата для электроблотинга в режиме 24 В, 400 мА в течение 1 ч. Качество переноса проверяют окрашиванием мембран раствором 0,2% Понсо S в 3%-ной TXУ в течение 5 мин при комнатной температуре. Краску дважды отмывают в течение 30 мин буфером TBS (0,15 М NaCl, 20 мМ трис-HCl, рН 7,4) с 0,05% Твина-20 при комнатной температуре. На следующем этапе проводят блокирование нитроцеллюлозных мембран с иммобилизованными белками раствором 5% -ного обезжиренного сухого молока, приготовленном на 0,1 М Na-фосфатном буфере, рН 7,4, в течение 30 мин при комнатной температуре. После блокирования мембраны в течение 1 ч при 37оС обрабатывают сыворотками, содержащими антитела к ВИЧ-1 или ВИЧ-2, в разведении 1:100. Затем проводят трехкратную отмывку мембран TBS с 0,05%-ным Твином-20 в течение 30 мин при комнатной температуре. Выявление специфических антител осуществляют инкубацией фильтра с антивидовым пероксидазным конъюгатом при 37оС в течение часа. Далее повторяют процедуру трехкратной отмывки. Реакцию проверяют добавлением 100 мкл 30%-ной перекиси водорода и 50 мл раствора 4-хлор-1-нафтола (20 мг в 0,1 М трис-HCl, рН 8,0). Анализ показывает, что полипептид Gl03 связывается с антителами к вирусу иммунодефицита человека первого и второго типов.
Таким образом, изобретение позволяет определять антитела к продуктам гена gag ВИЧ-1 и ВИЧ-2 с высокой эффективностью и специфичностью, а сам процесс определения не требует работы с высокоинфекционным вирусным материалом.
Использование: биотехнология, генная инженерия и иммунология. Сущность изобретения заключается в том, что создан гибридный полипептид G103, состоящий из полипептида продукта гена gag ВИЧ-1 и β -галактозидазы E. coli. Гибридный полипептид синтезируется бактериальным штаммом Escherichia coli ВКПМ N B-5871. Штамм получен в результате трансформации плазмидной ДНК pHG103, несущей фрагмент гена gag ВИЧ-1. 4 с.п. ф-лы.
содержащий на 3′-конце стоп-кодон.
Патент ЕПВ 0361749, кл | |||
Способ гальванического снятия позолоты с серебряных изделий без заметного изменения их формы | 1923 |
|
SU12A1 |
Авторы
Даты
1995-09-10—Публикация
1992-02-28—Подача