СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ ВИРУСОВ Российский патент 1996 года по МПК C12N7/00 G01N33/535 

Описание патента на изобретение RU2065497C1

Изобретение относится к области биохимии вирусов, преимущественно иммунохимии вирусов, и может быть использовано в различных областях вирусологии, медицины, сельского хозяйства, ветеринарии, микробиологической промышленности, контроля окружающей среды, для высокочувствительного экспресс-анализа широкого круга вирусов.

Известны различные способы диагностики вирусных инфекций. Среди них - тесты на растениях и животных как индикаторах, электронная микроскопия, а также различные серологические методы капельная преципитация, иммунодиффузия в агаре, латексагглютинация [1] Каждый из этих методов при несомненных достоинствах отличается отдельными недостатками: неколичественностью определения, относительно низкой чувствительностью и специфичностью, трудоемкостью серийных определений. Методы иммунохимического анализа независимо от морфологии вирусных частиц обеспечивают высокую точность и специфичность определения аналита в сочетании с относительной простотой при рутинной диагностике многочисленных образцов [2]
Для проведения массовых анализов наиболее эффективным методом иммунодиагностики вирусов является иммуноферментный анализ (ИФА), основанный на применении антител (или антигенов), меченных молекулой фермента [2]
Известен способ иммуноанализа вирусов, включающий стадию добавления в исследуемый образец антител, меченных ферментом, с последующим разделением компонентов иммунологической реакции путем последовательного добавления полиэлектролитов (полианиона и поликатиона) и определения исследуемого вируса по концентрации фермента-маркера в надосадке или перерастворенном осадке [3]
Недостатком известного способа является сложность процесса отделения очень малого количества осадка с использованием методов центрифугирования и фильтрации. Отсутствие соответствующего оборудования, позволяющего быстро проводить декантацию большого числа исследуемых образцов, делает метод длительным и трудоемким. Время анализа в данном случае лимитируется длительностью отделения осадка полиэлектролитного комплекса, его отмывкой и определением ферментативной активности в перерастворенном осадке. Кроме того, многостадийность метода осложняет возможность автоматизации проводимых измерений.

Задачей данного изобретения является разработка способа количественного определения вирусов, при котором существенно упрощается процесс разделения компонентов аналитической системы применительно к большим масштабам проводимых измерений.

Способ осуществляют следующим образом. К исследуемому образцу добавляют антитела, меченные ферментом. После протекания иммунохимической реакции в растворе его приводят в контакт с нерастворимым положительно заряженным носителем (полимером), вследствие чего компоненты, связанные с определяемым вирусом, адсорбируются на носителе в результате кооперативных электростатических взаимодействий между отрицательно заряженными вирусными частицами, имеющими регулярную структуру, и положительно заряженной матрицей. После промывания носителя с целью удаления неспецифически связавшегося конъюгата антител с ферментом на него наносят раствор субстрата фермента и количественно измеряют концентрацию продукта. Эта величина пропорциональна концентрации определяемого вируса и служит характеристикой его содержания в исследуемом растворе. Концентрацию вируса в образце определяют с помощью калибровочного графика, полученного при использовании стандартных вирусных растворов. Если в качестве носителя выбирают положительно заряженную мембрану, а продукт ферментативной реакции является водонерастворимым и удерживается на мембране, то детекцию вируса можно проводить визуально.

В качестве положительно заряженных нерастворимых полимеров могут быть использованы пористые матрицы (например, нитроцеллюлозные, ацетилцеллюлозные, капроновые, нейлоновые, поливинилфторидные и другие синтетические мембраны), на которых предварительно был адсорбирован поликатион (например, поли-N-этил-4-винилпиридиний бромид с линейной структурой и молекулярной массой от 40 до 2000 кДа, а также другие модифицированные поликатионы на основе поли-4-винилпиридина).

Детекция ферментативной активности может проводиться как непосредственно на матрице, так и в смывных растворах. Применение в первом случае субстратных систем, приводящих к образованию нерастворимого продукта, позволяет визуально оценить результаты анализа. Для детекции щелочной фосфатазы, например, могут быть использованы следующие субстратные системы, дающие водонерастворимый окрашенный продукт ферментативной реакции: альфа(бета)-нафтилфосфат и прочный голубой (Fast Blue); нафтол-AS-MX-фосфат и прочный красный (Fast Red); нитро-голубой тетразолий и 5-бром-4-хлориндолилфосфат и др. Для пероксидазы хрена наиболее распространенным субстратом является диаминобензидин в присутствии перекиси водорода и хлористого кобальта; для бета-галактозидазы чаще всего используют 5-бром-4-хлор-3-индолил-бета-Д-галактопиранозид в комбинации с солями тетразолия. Визуальная регистрация окраски поверхности пористого носителя в отраженном свете (а не на пропускание, как это имеет место при сравнении окраски жидких образцов в способе-прототипе) позволяет с большей точностью проводить сравнение получаемых образцов со стандартами. С другой стороны, обратимость ион-ионного взаимодействия при высоких значениях ионной силы позволяет многократно использовать нерастворимый положительно заряженный полимер, элюируя с него связавшиеся компоненты и измеряя ферментативную активность в элюате.

Пример 1. Анализ Х-вируса картофеля (ХВК).

В качестве антител используют гамма-глобулиновую фракцию кроличьей антисыворотки к ХВК. Гамма-глобулиновую фракцию сыворотки крови выделяют двукратным осаждением в 20%-ном водном растворе полиэтиленгликоля (М.м. 6 кДа) с последующим диализом против 0,01 М К-фосфатного буфера (0,1 М NaCl, pН 7,4).

В качестве фермента-маркера используют щелочную фосфатазу из кишечника теленка (1000-2500 IU/мг). Введение ферментной метки в молекулу антител проводят с помощью гетеробифункционального сшивающего агента - 3-малеимидобензоил-N-гидроксисукцинимида. Ацилирование аминогрупп щелочной фосфатазы осуществляют по методике [4] Ацилированный фермент затем используют для конъюгации с частично восстановленными молекулами антител [4] При этом к 1 мг модифицированной щелочной фосфатазы в 2 мл 0,1 М трис-HCl (1 мМ MgCl2; 0,1 мМ ZnCl2; pН 7,0) добавляют 10 мг антител, содержащих активные SH-группы, в 2 мл 50 мМ Na-ацетатном буфере, pН 5,0. Далее реакционную смесь инкубируют 20 часов при +4oC и постоянном перемешивании. После чего в нее добавляют 0,03 мл 0,1 М раствора 2-меркаптоэтаноламина и инкубируют при комнатной температуре 20 мин. Конъюгат выделяют на колонке (1,5•120) см с носителем-ультрагелем АсА-34, уравновешенным 10 мМ трис-HCl буфером (0,1 М NaCl; 1 мМ MgCl2; 0,1 мМ ZnCl2; 0,5 г/л NaN3; pH 7,0). Фракции конъюгата хранят при +4oC в присутствии 0,1% BSA.

В качестве антигена используют высокоочищенный вирусный препарат ХВК. Препаративное выделение очищенных экстрактов ХВК, его очистку и концентрирование проводят по стандартной методике, используя несколько циклов дифференциального центрифугирования [5]
Поли-N-этил-3-винилпиридиний бромид получают алкилированием поли-4-винилпиридина избытком бромистого этила при 60oC в течение 30 часов с последующим осаждением в эфире. В работе используют поликатион с молекулярной массой 2000 кДа.

Растительный сок получают, растирая материал в фарфоровой ступке, с добавлением 0,01 М К-фосфатного буфера (0,1 М NaCl; 0,1% тритон Х-100; pН 7,8) в соотношении 1:5 (растительная масса/объем буфера). Полученную смесь осветляют центрифугированием при 8000 об/мин 5 мин.

Нерастворимый заряженный полимер готовят следующим образом. Нитроцеллюлозные фильтры производства ВНИИМедполимеров инкубируют в 10-7 М водном растворе поли-N-этил-4-винилпиридиний бромида с молекулярной массой 40 кДа в течение 1 часа при комнатной температуре. Затем фильтры отмывают водой и высушивают при комнатной температуре.

В серию инкубационных пробирок, содержащих 0,1 мл исследуемого образца (растительный сок или очищенный препарат ХВК), добавляют 0,1 мл раствора меченных ферментом антител (10-9 М), инкубируют 10 мин при комнатной температуре. Разделение компонентов аналитической смеси проводят, пропуская ее через нитроцеллюлозный фильтр с иммобилизованным поликатионом. Детекцию ферментной метки на фильтре осуществляют визуально после инкубации его в растворе субстратов, содержащем Fast Blue RR (2 мг/мл) и альфа-нафтилфосфат (2,5 мг/мл) в 0,1 М трис-HCl буфере, pН 9,2. Чувствительность метода составляет 5-10 нг/мл ХВК. Время анализа не превышает 20-30 мин. Метод дает возможность определять ХВК в проростках и листьях растений на различных стадиях вегетации, а также осуществлять контроль растений, оздоровленных методом культуры меристем. Вследствие своей уникальной чувствительности и простоты предложенный метод пригоден для решения многих научных и практических задач, например изучения динамики вирусной инфекции, контроля степени очистки вирусов и т.д.

Пример 2. Анализ вируса табачной мозаики (ВТМ).

В качестве антител используют гамма-глобулиновую фракцию кроличьей антисыворотки к ВТМ.

В качестве антигена используют высокоочищенный вирусный препарат ВТМ. Препаративную очистку ВТМ проводят по стандартной методике [6]
В анализе используют полидиметиламиноэтилметакрилат с молекулярной массой 100 кДа.

Нерастворимый заряженный полимер готовят следующим образом. Ацетилцеллюлозные фильтры производства ПО "Полимерсинтез", г. Владимир, инкубируют в 10-7 М водном растворе поли-N-этил-4-винилпиридиний бромида с молекулярной массой 100 кДа в течение 30 мин при комнатной температуре. Затем фильтры отмывают водой и высушивают при комнатной температуре на фильтровальной бумаге.

Ферментативную активность метки детектируют на фильтре, инкубируя его в субстратной смеси: Fast Red (1 мг/мл), нафтил-AS-MX-фосфат (0,2 мг/мл) в 0,1 М трис-HCl буфере, pН 8,2.

Остальные растворы готовят по описанию в примере 1.

Анализ ВТМ проводят аналогично методу определения ХВК в примере 1. Чувствительность анализа составляет 5-10 нг/мл ВТМ, время анализа 30 мин.

Пример 3. Анализ У-вируса картофеля (УВК).

Выделение очищенного препарата УВК проводят по методу [7] В качестве антител используют гамма-глобулиновую фракцию кроличьей антисыворотки к УВК.

В качестве контроля при тестировании УВК в очищенных препаратах используют очищенные гетерологичные вирусы ХВК и ВТМ. При анализе растительного материала, зараженного УВК, контролем служат листья и клубни здоровых растений картофеля.

В анализе используют поли-N-этил-4-винилпиридиний бромид с молекулярной массой 500 кДа.

Нерастворимый заряженный полимер готовят следующим образом. Капроновые фильтры, изготовленные по технологии ВНИИМедполимеров, инкубируют в 10-7 М водном растворе поли-N-этил-4-винилпиридиний бромида с молекулярной массой 500 кДа в течение 10 мин при комнатной температуре.

Ферментативную активность метки детектируют на фильтре, инкубируя его в субстратной смеси: нитро-голубой тетразолий (0,33 мг/мл) и 5-бром-4-хлориндолилфосфат (0,17 мг/мл) в 0,33% N,N-диметилформамидном буфере, pН 9,5.

Остальные растворы готовят по описанию в примере 1.

Анализ УВК проводят аналогично методу определения ХВК в примере 1. Чувствительность анализа 10 нг/мл УВК, время анализа не превышает 30 мин.

Пример 4. Анализ вируса мозаики нарцисса (ВМН).

Выделение очищенного препарата ВМН проводят по методу [8] В качестве антител используют гамма-глобулиновую фракцию кроличьей антисыворотки к ВМН.

В анализе используют поликатион поли-N-этил-4-винил-пиридиний бромид с молекулярной массой 1000 кДа и найлоновые фильтры производства Эксперим. лаб Р/К Хийу Калур, г. Таллинн. Мембраны инкубируют в 10-7 М водном растворе поликатиона в течение 5 мин при комнатной температуре. Затем фильтры промывают водой и высушивают при комнатной температуре.

Приготовление остальных растворов и реагентов для анализа ВМН, а также проведение анализа осуществляют согласно примеру 1.

Чувствительность метода 10 нг/мл ВМН, время анализа не превышает 30 мин.

Предлагаемый способ количественного определения вирусов является универсальным для анализа отрицательно заряженных вирусных частиц, независимо от их морфологии, биологических и физико-химических свойств. Так, например, ХВК относится к группе потексвирусов (размеры вирионов ХВК 515•15 нм, молекулярный вес вирионной РНК немного более 2 млн дальтон), в то время как УВК относится к группе потивирусов (размеры вирионов УВК 730•11 нм, молекулярный вес вирионной РНК 3 млн дальтон). Метод позволяет определять крупные палочковидные вирусы (ВТМ) и нитевидные (ВМН), которые невозможно идентифицировать методом иммунодиффузии в агаре. Кроме того, данный метод является специфичным и избирательным. Наличие других вирусов наряду с исследуемым не мешает анализу. Общая продолжительность анализа не превышает 30 мин, что в 6 раз меньше длительности известных твердофазных методов ИФА, в 60 раз меньше времени метода радиальной иммунодиффузии (метода, широко используемого в биохимической практике) и сопоставимо с длительностью проведения анализа по прототипу (30 мин) [3] Предложенный способ иммунохимического анализа вирусов сопоставим по своей чувствительности с известными твердофазными методами и с определением вирусов по прототипу. Высокая чувствительность предлагаемого метода позволяет проводить детекцию ХВК в клубнях, где концентрация вируса настолько мала, что исключается возможность применения капельного теста (который используется при определении ХВК только в листьях больного растения).

Таким образом, высокая чувствительность представленного метода позволяет исключить затраты, связанные с выращиванием растений для индексации посевного материала. Метод позволяет анализировать 0,01-0,1 мл пробы, т.е. для индикации данным методом требуется небольшое количество исследуемого материала, что особенно важно для селекционных работ. Кроме свежего материала, для анализа пригодны замороженные и высушенные образцы.

Высокая скорость, низкая стоимость, простота, универсальность разделения компонентов аналитической системы делают предложенный способ экспресс-анализа в целом практичным и эффективным.

ЛИТЕРАТУРА
1. Николаева О.В. Современные иммунологические методы в массовой диагностике вирусов растений. М. 1986, с. 1-53; ВАСХНИЛ-ВНИИТЭИСХ.

2. Voller A. Barlett A. Bidwell D. et al. The detection of Viruses by enzyme-linked immunosorbent assay //J. Genet. virol. 1976, v. 33, N 1, p. 165-167.

3. Авторское свидетельство СССР N 1343319, БИ N 37, 1987.

4. J. of Immunoassay, 1983, v.4, N 3, p. 209-327. Ed.E.Ishikawa Enzyme-labeling of antibodies.

5. Куст С. В. Добров Е.Н. Тихоненко Т.И. Исследование структуры РНК в частицах Х-вируса картофеля //Мол. биология, 1972, N 1, т. 6, с. 42-50.

6. Fraenhel-Conrot H. The role of nucleic acid in the reconstitution of active tobacco mosoic virus //J. Amer. Chem. Soc. 1956, v. 78, p. 882-886.

7. Новиков В.К. Атабеков И.Г. Агур М.О. и др. Метод получения препарата У-вируса картофеля и приготовления диагностических антисывороток //Сельскохоз. биология, 1982, т. 17, N 5, с. 706-711.

8. Baneroff I.B. Abonhaidor M. Erickson J.W. Purification and properties of clever yellow mosoic virus //Virology, 1979, v. 98, N 1, p. 121-130.

Похожие патенты RU2065497C1

название год авторы номер документа
СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ РАСТИТЕЛЬНЫХ ВИРУСОВ 1994
  • Дзантиев Б.Б.
  • Блинцов А.Н.
  • Гольдштейн М.И.
  • Атабеков И.Г.
  • Бобкова А.Ф.
  • Нацвлишвили Н.М.
  • Снегирева Н.С.
  • Князева В.П.
  • Новиков В.К.
RU2083986C1
Способ количественного определения вирусов 1986
  • Дзантиев Б.Б.
  • Блинцов А.Н.
  • Березин И.В.
  • Егоров А.М.
  • Изумрудов В.А.
  • Кабанов В.А.
  • Бобкова А.Ф.
  • Атабеков И.Г.
  • Зезин А.Б.
SU1394708A1
МЕМБРАНА ДЛЯ РАЗДЕЛЕНИЯ КОМПОНЕНТОВ ИММУНОЛОГИЧЕСКОЙ РЕАКЦИИ 1992
  • Осипов А.П.
  • Горовиц Б.М.
  • Горовиц Е.Л.
  • Дзантиев Б.Б.
RU2038600C1
Способ получения ферментного препарата для синтеза антивирусных веществ 1988
  • Бабоша Александр Валентинович
  • Ладыгина Марина Евгеньевна
  • Трофимец Линеон Никифорович
SU1701227A1
Способ иммуноанализа биологически активных веществ 1990
  • Осипов Александр Павлович
  • Горовиц Борис Маркович
  • Горовиц Елена Львовна
  • Духович Алексей Феликсович
  • Дзантиев Борис Борисович
  • Изумрудов Владимир Алексеевич
SU1801214A3
ИНДУКТОР УСТОЙЧИВОСТИ ПАСЛЕНОВЫХ К ВОЗБУДИТЕЛЯМ ВИРУСНЫХ БОЛЕЗНЕЙ 1993
  • Трофимец Леонид Никифорович[Ru]
  • Озерецковская Ольга Леонидовна[Ru]
  • Гилязетдинов Шамиль Ямилович[Ru]
  • Балахонцев Евгений Николаевич[Ru]
  • Янишевский Леонид Владимирович[Ua]
  • Марданшин Ильдар Салимьянович[Ru]
RU2072779C1
СПОСОБ УСИЛЕНИЯ ИММУННОГО ОТВЕТА 2010
  • Атабеков Иосиф Григорьевич
  • Карпова Ольга Вячеславовна
  • Кирпичников Михаил Петрович
  • Никитин Николай Александрович
  • Трифонова Екатерина Алексеевна
  • Чирков Сергей Николаевич
  • Шевелева Анна Александровна
RU2442604C1
Способ диагностики вирусных заболеваний пасленовых культур 1989
  • Обручков Владимир Степанович
SU1705344A1
СПОСОБ ИММУНОХРОМАТОГРАФИЧЕСКОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ СПЕЦИФИЧЕСКИХ АНТИТЕЛ 2013
  • Сотников Дмитрий Васильевич
  • Жердев Анатолий Виталиевич
  • Дзантиев Борис Борисович
RU2545909C2
НОВЫЙ ТИП ЧАСТИЦ-НОСИТЕЛЕЙ (ПЛАТФОРМ) ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ АКТИВНЫХ КОМПЛЕКСОВ 2010
  • Атабеков Иосиф Григорьевич
  • Карпова Ольга Вячеславовна
  • Кирпичников Михаил Петрович
  • Никитин Николай Александрович
  • Архипенко Марина Владимировна
  • Чирков Сергей Николаевич
RU2441667C1

Реферат патента 1996 года СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ ВИРУСОВ

Использование: вирусология. Сущность изобретения: представляет собой способ количественного определения вирусов, который заключается в образовании комплекса исследуемого вируса со специфическими антителами, меченными ферментом, разделении компонентов иммунохимической реакции и применении полиэлектролитов с последующими стадиями добавления субстрата фермента и регистрации концентрации исследуемого вируса по концентрации фермента.

Формула изобретения RU 2 065 497 C1

Способ количественного определения вирусов, предусматривающий образование комплекса исследуемого вируса со специфическими антителами, меченными ферментом, разделение компонентов иммунохимической реакции с применением полиэлектролитов с последующим добавлением субстрата фермента и регистрацией концентрации исследуемого вируса по концентрации фермента, отличающийся тем, что полизлектролит нанесен на подложку из полимерного синтетического материала, в качестве полиэлектролита используют ароматические поликатионы - производные поли-4-винилпиридина и алифатические поликатионы - полидиметилдиаллиламмоний хлорид и полидиметиламиноэтилметакрилат с линейной структурой и мол. м. 40-2000 кДа, а в качестве субстрата используют вещества, дающие в результате ферментативной реакции нерастворимый окрашенный продукт.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 1996 года RU2065497C1

Voller A., Barlett A., Bidwell D
et al
The detection of viruses by enzyme-linked immynosorbent assay
J
Genet
virol., 1976, v
Способ сопряжения брусьев в срубах 1921
  • Муравьев Г.В.
SU33A1
Устройство для отыскания металлических предметов 1920
  • Миткевич В.Ф.
SU165A1
Способ количественного определения фосфолипидов 1986
  • Еремин Владимир Александрович
  • Позняков Сергей Петрович
  • Авдюшко Сергей Александрович
SU1343319A1
Печь для непрерывного получения сернистого натрия 1921
  • Настюков А.М.
  • Настюков К.И.
SU1A1

RU 2 065 497 C1

Авторы

Дзантиев Б.Б.

Блинцов А.Н.

Гапонова Н.К.

Осипов А.П.

Атабеков И.Г.

Изумрудов В.А.

Зезин А.Б.

Бобкова А.Ф.

Нацвлишвили Н.М.

Михайлов М.И.

Картвелишвили М.Э.

Снегирева Н.С.

Вовчук А.И.

Князева В.П.

Трофимец Л.Н.

Даты

1996-08-20Публикация

1993-06-02Подача