Изобретение относится к области хроматографического разделения веществ, в частности к хроматографическому выделению альфа-фетопротеина из биологических материалов.
Известен способ выделения альфа-фетопротеина (АФП) из биологических материалов, включающий трехступенчатую колоночную хроматографию, вначале на иммуносорбенте иммобилизованном овечьими антителами против альфа-фетопротеина человека, затем на голубой сефарозе, и затем на Con-A-сефарозе. Выход альфа-фетопротеина (АФП) по известному способу составляет около 20% при степени чистоты АФП около 96% (D.Chudy, V.Zizkovsky, Asimple and napid method for the isolation of human alpha-fetoprotein from human cord serum, Neoplasma, v. 34, 4, 1987, 491-495).
Недостатком известного способа является невысокий выход и недостаточная чистота целевого продукта.
Наиболее близким по технической сущности и достигаемому результату является способ выделения альфа-фетопротеина из абортивного материала, включающий обработку материала бутиловым спиртом с получением супернатанта, его диализ против фосфатного буфера, аффинную хроматографию на иммобилизованной диэтилстильбестероном сефарозе и элюированием АФП смесью бутилового спирта с хлоридом натрия (авт. св. СССР N 583536, кл. A 61 K 38/00, 1979)
Недостаток способа невысокая чистота целевого продукта (около 95%).
Задача настоящего изобретения разработка хроматографического способа выделения альфа-фетопротеина высокой степени чистоты с удовлетворительным выходом.
Поставленная задача решается хроматографическим способом выделения альфа-фетопротеина, включающий обработку биологического фетального материала раствором хлорида лантана с получением супернатанта, его диализ против фосфатного буфера, аффинную хроматографию, предпочтительно на голубой сефарозе, адсорбционную очистку, предпочтительно на оксиде алюминия, иммуноаффинную хроматографию в две стадии, на первой на иммуносорбенте иммобилизованном моноспецифическими к альфа-фетопротеину антителами животных с элюацией АФП раствором карбоната натрия, на второй с использованием иммуносорбента иммобилизованного кроличными полиспецифическими к балластным белкам антителами животных, диализ раствора после второй стадии и лиофилизацию.
В качестве носителя иммуносорбентов рекомендовано использовать сефарозу, активированную бромцианом.
В качестве исходного фетального биологического материала можно использовать абортальную сыворотку, пуповинную кровь, плацентарную сыворотку.
В качестве антител животных антитела кроликов, овец, коз, мышей.
Сущность предложенного способа заключается в том, что заявленная последовательность стадий и используемые сорбенты позволяют получить высокочистый препарат АФП.
В таблице приводится схема получения АФП с указанием чистоты и выхода продукта по стадиям.
Пример осуществления способа. К девяти объемам абортальной сыворотки добавляют при перемешивании 1 объем 10% LaCl3•6H2O, смесь выдерживают 3 ч в рефрижераторе при 4oC. Центрифугируют при 6000 g в течение 20 мин. Полученный осадок 5 раз промывают 10-кратным объемом H2O дист. при перемешивании с последующим центрифугированием. Промытый осадок растворяют в 0,2 М растворе двузамещенного фосфата натрия, а одновременно образующийся осадок кислого фосфорнокислого лантана La2(HPO4)3 удаляют центрифугированием (6000 g, 15 мин). Полученный таким образом супернатант подвергали 2-х суточному диализу против 0,05 М фосфатного буфера (pH 7,3). После этого диализат пропускали через колонку, в которой в качестве афинного адсорбента балластных примесей (в основном сывороточного альбумина) использовалась голубая сефароза. Эту процедуру проводили под контролем иммунодиффузионного анализа в агаре с применением стандартных моноспецифических тест-систем по практически полной элиминации из диализата сывороточного альбумина. Полученный продукт подвергали адсорбционной хроматографии в объеме на Al2O3 L 5/4 в объемном соотношении 3: 1 в расчете на влажный сорбент. После одночасовой инкубации "в объеме" Al2O3 отделяли центрифугированием при 6000 g в течение 20 минут. Полученная таким образом конечная фракция представляла собой "полуочищенный" препарат АФП с чистотой 60% а выход целевого продукта составлял 30% (содержание АФП определялось с помощью стандартной моноспецифической тест-системы с чувствительностью 5 мкг/мл, а содержание общего белка определялось по методу Лоури). Результаты иммунодиффузионного анализа показали, что АФП, выделенный по приведенной схеме, полностью сохранил свои нативные антигенные свойства.
Иммуносорбент иммобилизованный кроличными моноспецифичными к АФП антителами получают следующим способом. Сефарозу 4D активированную бромцианом замачивают на 30 мин в 10 N растворе HCl, промывают водой, суспендируют в 0,1 N растворе NaHCO3 с 0,5 М NaCl, инкубируют с "полуочищенным" АФП при 4oC в течение 16 ч при осторожном перемешивании из расчета 10 мг белка на 1 мл геля. Проводят промывку тем же раствором, блокируют свободные реакционные группы раствором 1 М этаноламина с pH 8,0 в течение 2 ч. Отмывают 0,1 М NaHCO3 с 0,5 М NaCl. Трижды отмывают нековалентно связанный белок вначале ацетатным буфером (pH 4,0), затем боратным буфером (pH 8,0) и заливают буфером 0,1 М NaHCO3 + 0,5 M NaCl. Емкость полученного сорбента составила 1,5 мг антител на 1 мл антигенного сорбента.
Затем моноспецифическую антисыворотку к АФП, полученную путем иммунизации кроликов "полуочищенным" АФП с концентрацией антител 0,4 мг/мл пропускают через колонку с приготовленным иммуносорбентом в соотношении 350 мл антисыворотки на 10 см сорбента со скоростью 6 мл/мин. Промывают 2 М раствором NaCl с 0,05 М двузамещенным фосфатом натрия и водой. Элюируют 2% раствором Na2CO3 pH 11,4, и нейтрализуют элюат. Емкость полученного антительного иммуносорбента составила 0,5 мг белка на 1 мл сорбента.
На полученный, так называемый, "позитивный" иммуносорбент наносят полученный на предыдущих стадиях полупродукт, при этом иммуносорбент используют в режиме "воронки", т.е. получают единый элюат.
Сорбент промывают раствором 2 М NaCl+0,05 M Na2HPO4 и водой. Затем проводят элюирование 0,2 М раствором Na2CO3. Объем элюента равен количеству нанесенного сырья. Объем промывного раствора равен 10 объемам иммуносорбента.
Полученный элюат нейтрализуют 0,1 М раствором HCl до pH 7,3. Далее в элюат добавляют NaCl до 1 М и наносят его на "негативный" иммуносорбент, представляющий собой иммобилизованные иммуноаффинно выделенные полиспецифические "антидонорские" антитела на матрице цианбромированной сефарозы. Сырьем для выделения таких антител служила смесь 10-15 индивидуальных высокотитражных кроличьих антисывороток к плазме доноров. Антитела выделялись на антигенном иммуносорбенте, в котором лиганд представлен плазмопротеинами доноров.
При пропускании через колонку получают высокоочищенный АФП со степенью чистоты 98,6% Раствор диализуют против 0,1 М бикарбонатного буфера (pH 7,6) и лиофилизуют. "Негативный" иммуносорбент регерируют путем элюации связывающихся балластных белков 0,2 М Na2CO3 и промывают фосфатным буфером.
В результате получен альфа-фетопротеин чистотой 98,6% с выходом из исходного сырья около 30%
Таким же образом альфа-фетопротеин выделен из пуповинной крови и плацентарной сыворотки. Выход составил также около 30% а чистота препарата - до 99%
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
ХРОМАТОГРАФИЧЕСКИЙ СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ АЛЬФА-ФЕТОПРОТЕИНА | 1996 |
|
RU2094077C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ПРЕПАРАТА ДЛЯ НАПРАВЛЕННОЙ ДОСТАВКИ ПРОТИВООПУХОЛЕВОГО ЛЕКАРСТВА В РАКОВУЮ КЛЕТКУ | 1996 |
|
RU2097060C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ПРЕПАРАТА АЛЬФА-ФЕТОПРОТЕИНА | 1998 |
|
RU2123009C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АЛЬФА-ФЕТОПРОТЕИНА | 2006 |
|
RU2308286C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ОБОГАЩЕННОГО УГЛЕВОДАМИ АЛЬФАФЕТОПРОТЕИНА | 2002 |
|
RU2232770C2 |
СПОСОБ ОЧИСТКИ АЛЬФА-ФЕТОПРОТЕИНА ЧЕЛОВЕКА | 1994 |
|
RU2074193C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ПРЕПАРАТА АЛЬФА-ФЕТОПРОТЕИН СУХОЙ | 2005 |
|
RU2283131C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АЛЬФА-ФОТОПРОТЕИНА | 1995 |
|
RU2100031C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ТАБЛЕТОК ПРЕПАРАТА АЛЬФА-ФЕТОПРОТЕИНА | 2005 |
|
RU2319479C2 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АКТИВНОГО ФРАГМЕНТА АЛЬФА-ФЕТОПРОТЕИНА ЧЕЛОВЕКА | 2010 |
|
RU2448116C2 |
Использование: в хроматографическом выделении альфа-фетопротеина из биологических материалов. Сущность: фетальный биологический материал обрабатывают хлоридом лантана, диализуют против фосфатного буфера, хроматографируют на голубой сефарозе, очищают на Al2O3 и проводят двухстадийную аффинную хроматографию "полуочищенного" препарата на антительных иммуносорбентах, вначале на "позитивном" - сефарозе иммобилизованной моноспецифическими к АФП антителами, а затем на "негативном" - сефарозе иммобилизованной полиспецифическими к балластным белкам антителами. Получают высокочистый альфа-фетопротеин с соблюдением критериев биологической безопасности для человека. 5 з.п. ф-лы, 1 табл.
Neoplasma, 34, 4, 1987, 491 - 495 | |||
SU, авторское свидетельство, 583536, кл | |||
Устройство для сортировки каменного угля | 1921 |
|
SU61A1 |
Авторы
Даты
1997-10-27—Публикация
1996-07-23—Подача