Изобретение относится к области медицины, а именно к микробиологии.
Определение чувствительности к антибиотикам возбудителя чумы необходимо для быстрого выбора наиболее эффективного препарата для специальной профилактики и лечения чумной инфекции.
Известны классические способы определения чувствительности к антибиотикам возбудителя чумы - метод диффузии в агар и метод серийных разведений в жидкой или агаризованной питательных средах (Инструкция по экстренной профилактике и лечению опасных инфекционных заболеваний. М.: Военное издательство, Минздрав СССР, с.16-22. ДСП).
Недостатками этих способов являются длительные сроки получения окончательных результатов, а также возможность несовпадения данных по чувствительности микробов к антибиотикам с клиническими наблюдениями, поскольку исследования проводят в пробирочных условиях (ин витро).
Наиболее близким к заявляемому способу является способ определения антибиотикочувствительности возбудителя чумы, направленный на повышение чувствительности способа (Патент РФ 2045576, С 12 Q 1/04, опубликован 10.10.95. Бюл. 11).
Способ включает исследование нативного материала путем введения его опытным белым мышам, обработанным испытуемым антибиотиком в лечебной дозе, и контрольным мышам подкожно в область спины 0,5-1,0 мл суспензии исследуемого материала в физиологическом растворе, причем суспензию предварительно смешивают с желтком куриного яйца в объемном соотношении 1:1,4 с 25 мг поливинилпирролидона и с 7 мг циклофосфана, мазки - отпечатки готовят с места введения, а антибиотикочувствительность определяют по отсутствию возбудителя чумы в мазках - отпечатках опытных мышей при обнаружении его у контрольных.
Однако указанный способ основывается на иммунофлуоресцентном анализе материала с места введения и не предусматривает его исследование более простым и надежным серологическим методом (РНГА), включающим возможность относительно точного количественного определения содержания специфического капсульного антигена.
Целью предлагаемого изобретения является экспрессное определение антибиотикочувствительности возбудителя чумы с помощью реакции непрямой гемагглютинации (РНГА).
Поставленная цель достигается тем, что чистую 1-2-суточную культуру чумного микроба в дозе 107-109 КОЕ/мл (0,7-1 мл одномиллиардной суспензии) смешивают с консервированной кровью человека в объемном соотношении 1:0,5-1: 0,7, к полученной смеси добавляют 0,5-0,7 мл желтка куриного яйца, 5-7 мг кортизона (из расчета на одно животное) и вводят под кожу спины 2-м белым мышам - одной опытной, второй контрольной. К инокуляту, вводимому опытной мыши, предварительно добавляют испытуемый антибиотик в лечебной дозе. Результаты учитывают, определяя наличие или отсутовие роста чумного микроба на месте введения с помощью серологического метода.
Отличительные признаки заявляемого способа по отношению к прототипу заключаются в том, что обнаружение чумного микроба в материале из места введения исследуемой пробы осуществляют с помощью серологического метода, который по сравнению с иммунофлуоресцентным анализом является более точным, поскольку включает возможность количественного определения содержания специфического антигена фракции I.
Применение в качестве исследуемого материала чистой культуры возбудителя исключает возможность ложноположительных серологических реакций, которые могут быть за счет наличия контаминирующей микрофлоры.
Добавление к исследуемой культуре консервированной крови человека и кортизона (вместо поливинилпирролидона и циклофосфана) создает наиболее оптимальные условия для биосинтеза FI + штаммами чумного микроба в организме биопробного животного FI антигена и селективного накопления микробных клеток с продукцией фракции I на месте введения.
Способ осуществляется следующим образом.
Чистую 1-2-суточную культуру чумного микроба в дозе 107-109 КОЕ/мл (0,7-1 мл одномиллиардной суспензии) смешивают с консервированной кровью человека в объемном соотношении 1:0,5-1:0,7, к полученной смеси добавляют 0,5-0,7 мл желтка куриного яйца, 5-7 мг кортизона (из расчета на одно животное) и вводят под кожу спины 2-м белым мышам (опытной и контрольной). К инокуляту, вводимому опытной мыши, предварительно добавляют испытуемый антибиотик в лечебной дозе. Через 6 часов после заражения грызунов умерщвляют хлороформированием и прикрепляют к вскрывочной доске спиной кверху. Отсепаровывают кожу спины и кожный лоскут отбрасывают на голову грызуна. При этом легко обнаруживается место введения за счет пропитывания мягких тканей кровью. Патологически измененные ткани места введения опытной и контрольной мыши тщательно срезают ножницами и переносят их в отдельные стерильные фарфоровые ступки, в которые предварительно наливают 0,5 мл стерильного физиологического раствора, и тщательно растирают пестиком. Полученную эмульсию переносят в пробирки, обеззараживают по общепринятой методике (добавляют до 1% формалина) и используют для постановки реакции непрямой гемагглютинации (РНГА). Для постановки указанной реакции используют иммуноглобулиновые эритроцитарные диагностикумы, предназначенные для определения возбудителя чумы и лабораторной диагностики вызванного им заболевания.
Постановку РНГА осуществляют в У-образных лунках планшетов микротитратора Такачи. Для проведения одного анализа в 11 лунок двух рядов планшетов вносят по 0,05 мл разводящей жидкости. В первые лунки обоих рядов добавляют по 0,05 мл исследуемого материала опытной и контрольной мыши. Большими петлями микротитратора (0,05 мл) готовят два ряда двукратных разведений. Во все лунки вносят по 0,025 мл взвеси иммуноглобулинового эритроцитарного диагностикума, планшеты встряхивают и оставляют при комнатной температуре на 1,5-2 часа. Постановку РНГА сопровождают обязательным контролем эритроцитарного диагностикума на отсутствие спонтанной агглютинации. Для этого в последние лунки каждого ряда вносят по 0,05 мл разводящей жидкости и 0,025 мл взвеси эритроцитарного диагностикума.
О чувствительности возбудителя к антибиотикам судят по разнице в титрах антигена в опытом и контрольном рядах.
Анализ завершают определением степени чувствительности возбудителя к испытуемому антибиотику. Антибиотик относят к эффективным только в том случае, если положительный результат ингибиции микробного роста регистрируют только в пробах, приготовленных с места введения опытных мышей. Отсутствие разницы в титрах опытных и контрольных проб свидетельствует об устойчивости возбудителя к испытуемому антибиотику.
Возможность использования предлагаемого способа иллюстрируется примерами практического его выполнения с использованием полной совокупности заявляемых признаков.
Пример 1.
Чистую 1-2-суточную культуру чумного микроба в дозе 107 КОЕ/мл (0,7 мл одномиллиардной суспензии) смешивают с консервированной кровью человека в объемном соотношении 1:0,5, к полученной смеси добавляют 0,5 мл желтка куриного яйца, 5 мг кортизона (из расчета на одно животное) и вводят под кожу спины 2-м белым мышам (опытной и контрольной). К инокуляту, вводимому опытной мыши, предварительно добавляют испытуемый антибиотик в лечебной дозе. Через 6 часов после заражения грызунов умерщвляют хлороформированием, вскрывают и исследуют только материал из места заражения с помощью реакции непрямой гемагтлютинации (РНГА).
Обнаружение возбудителя чумы у контрольных животных при отсутствии его у опытных свидетельствует об эффективности испытуемого антибиотика. При неэффективности антибиотика возбудитель чумы обнаруживают как в контроле, так и в опыте.
Пример 2.
Чистую 1-2-суточную культуру чумного микроба в дозе 108 КОЕ/мл (0,8 мл одномиллиардной суспензии) смешивают с консервированной кровью человека в объемном соотношении 1:0,6, к полученной смеси добавляют 0,6 мл желтка куриного яйца, 6 мг кортизона (из расчета на одно животное) и вводят под кожу спины 2-м белым мышам (опытной и контрольной). К инокуляту, вводимому опытной мыши, предварительно добавляют испытуемый антибиотик в лечебной дозе. Через 6 часов после заражения грызунов умерщвляют хлороформированием, вскрывают и исследуют только материал из места заражения с помощью реакции непрямой гемагглютинации (РНГА).
Обнаружение возбудителя чумы у контрольных животных при отсутствии его у опытных свидетельствует об эффективности испытуемого антибиотика. При неэффективности антибиотика возбудитель чумы обнаруживают как в контроле, так и в опыте.
Пример 3.
Чистую 1-2-суточную культуру чумного микроба в дозе 109 КОЕ/мл (1 мл одномиллиардной суспензии) смешивают с консервированной кровью человека в объемном соотношении 1:0,7, к полученной смеси добавляют 0,7 мл желтка куриного яйца, 7 мг кортизона (из расчета на одно животное) и вводят под кожу спины 2-м белым мышам (опытной и контрольной). К инокуляту, вводимому опытной мыши, предварительно добавляют испытуемый антибиотик в лечебной дозе. Через 6 часов после заражения грызунов умерщвляют хлороформированием, вскрывают и исследуют только материал из места заражения с помощью реакции непрямой гемагглютинации (РНГА).
Обнаружение возбудителя чумы у контрольных животных при отсутствии его у опытных свидетельствует об эффективности испытуемого антибиотика При неэффективности антибиотика возбудитель чумы обнаруживают как в контроле, так и в опыте.
Как показали экспериментальные исследования, заявляемые пределы содержания ингредиентов, входящих в состав инокулята, а также дозы возбудителя чумы являются оптимальными для достижения поставленной цели, так как обеспечивают задержку, размножение и накопление микробных клеток чумы только на месте введения, что облегчает поиск возбудителя. При этом создаются оптимальные условия для интенсивного биосинтеза видоспецифического капсульного антигена - фракции I, что позволяет определять антибиотикочувствительность возбудителя чумы серологическим методом в живом организме (ин виво). При этом результат можно получить уже через 8-10 часов от начала анализа.
Таким образом, использование заявляемого способа позволит проводить экспрессное определение антибиотикочувствительности возбудителя чумы в живом организме (ин виво).
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ ВОЗБУДИТЕЛЯ ЧУМЫ ОТ ЭКТОПАРАЗИТОВ, НАПРИМЕР БЛОХ | 1998 |
|
RU2133274C1 |
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИБИОТИКОЧУВСТВИТЕЛЬНОСТИ ВОЗБУДИТЕЛЯ ЧУМЫ | 1991 |
|
RU2045576C1 |
СПОСОБ ПОСТАНОВКИ БИОПРОБЫ ПРИ ДИАГНОСТИКЕ ЧУМЫ | 2001 |
|
RU2218410C2 |
СПОСОБ ЛАБОРАТОРНОЙ ДИАГНОСТИКИ ЧУМЫ | 1993 |
|
RU2077591C1 |
СПОСОБ ВОССТАНОВЛЕНИЯ СПОСОБНОСТИ К БИОСИНТЕЗУ КАПСУЛЬНОГО АНТИГЕНА ЧУМНОГО МИКРОБА | 1999 |
|
RU2155962C1 |
СПОСОБ ВЫЯВЛЕНИЯ ВОЗБУДИТЕЛЯ БРУЦЕЛЛЕЗА | 1997 |
|
RU2132880C1 |
СПОСОБ ОБНАРУЖЕНИЯ ЧУМНОГО МИКРОБА В ОБЪЕКТАХ ВНЕШНЕЙ СРЕДЫ | 1998 |
|
RU2149407C1 |
СПОСОБ ОБНАРУЖЕНИЯ СЕКРЕТОРНЫХ АНТИТЕЛ К F-1 АНТИГЕНУ ПРИ ВАКЦИНАЦИИ ПРОТИВОИЕРСИНИОЗНЫМ ИММУНОГЕННЫМ ПРЕПАРАТОМ | 2006 |
|
RU2329506C1 |
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ЗАРАЖЕННОСТИ ПРОДОВОЛЬСТВИЯ ПАТОГЕННЫМИ БИОЛОГИЧЕСКИМИ АГЕНТАМИ В УСЛОВИЯХ ЧРЕЗВЫЧАЙНЫХ СИТУАЦИЙ | 2006 |
|
RU2350656C2 |
СПОСОБ СЕРОДИАГНОСТИКИ КАПСУЛЬНОГО АНТИГЕНА ЧУМНОГО МИКРОБА | 1994 |
|
RU2092852C1 |
Изобретение относится к микробиологии и может быть использовано для определения антибиотикочувствительности возбудителя чумы ин виво с помощью серологического метода - РНГА. Способ включает введение опытным белым мышам, обработанным испытуемым антибиотиком в лечебной дозе, и контрольным мышам подкожно в область спины суспензии исследуемого материала. В качестве исследуемого материала используют чистую культуру чумного микроба в дозе 107-109 КОЕ/мл (0,7-1 мл одномиллиардной суспензии), которую предварительно смешивают с консервированной кровью человека в объемном соотношении 1:0,5-1: 0,7, к полученной смеси добавляют 0,5-0,7 мл желтка куриного яйца, 5-7 мг кортизона из расчета на одно животное, а наличие или отсутствие возбудителя чумы на месте введения определяют с помощью реакции непрямой гемагглютинации (РНГА). Изобретение позволяет проводить экспрессное определение антибиотикочувствительности возбудителя чумы с помощью РНГА.
Способ экспрессного определения антибиотикочувствительности возбудителя чумы с помощью реакции непрямой гемагглютинации (РНГА), включающий введение опытным белым мышам, обработанным испытуемым антибиотиком в лечебной дозе, и контрольным мышам подкожно в область спины суспензии исследуемого материала в физиологическом растворе с активаторами, иммунодепрессантом и определение антибиотикочувствительности по отсутствию возбудителя чумы на месте введения у опытных мышей при обнаружении его у контрольных, отличающийся тем, что для повышения чувствительности способа в качестве исследуемого материала используют чистую культуру чумного микроба в дозе 107-109 КОЕ/мл (0,7-1 мл одномиллиардной суспензии), которую предварительно смешивают с консервированной кровью человека в объемном соотношении 1:0,5 - 1:0,7, к полученной смеси добавляют 0,5-0,7 мл желтка куриного яйца, 5-7 мг кортизона из расчета на одно животное, а наличие или отсутствие возбудителя чумы на месте введения определяют с помощью реакции непрямой гемагглютинации (РНГА).
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИБИОТИКОЧУВСТВИТЕЛЬНОСТИ ВОЗБУДИТЕЛЯ ЧУМЫ | 1991 |
|
RU2045576C1 |
СПОСОБ ЛАБОРАТОРНОЙ ДИАГНОСТИКИ ЧУМЫ | 1993 |
|
RU2077591C1 |
ДРОЖЕВКИНА М.С | |||
Диагностика особо опасных и малоизвестных инфекций | |||
Изд-во Ростовского университета, 1970, с.9, 53. |
Авторы
Даты
2003-12-10—Публикация
2002-02-14—Подача