Изобретение относится к биотехнологии, а именно к конструированию штамма холерного вибриона О139 серогруппы, и может быть использовано в качестве основы для конструирования живых вакцин против диарейных заболеваний, вызываемых патогенными вибрионами V. cholerae О139, а также в качестве продуцента для выделения очищенной иммуногенной В-субъединицы холерного токсина, входящей в состав диагностической тест-системы, позволяющей выявлять токсигенные клоны V. cholerae О139.
В настоящее время отсутствуют эффективные живые вакцины против возбудителей холеры V. cholerae О139. В связи с этим возникает необходимость получения безопасных штаммов О139 серогруппы, продуцирующих протективные антигены, вызывающие образование антитоксического, антиколонизирующего и антибактериального иммунитета, и являющихся основой для дальнейшего конструирования вакцинных штаммов против холеры, вызываемой V. cholerae О139.
Известен вирулентный штамм SG25, на основе которого сконструирован авирулентный атоксигенный штамм V. cholerae L911 серогруппы О139, предложенный в качестве вакцинного штамма. Штамм V. cholerae L911 лишен гена, кодирующего А-субъединицу холерного токсина, и поэтому не образует основного фактора патогенности возбудителя холеры - холерного токсина. Однако, ввиду того, что штамм L911 сконструирован на основе штамма SG25, который содержит гены токсин-корегулируемых пилей, он является потенциально опасным. Токсин-корегулируемые пили адгезии служат рецепторами для фага СТХϕ, несущего гены токсигенности, и, следовательно, предлагаемый штамм может быть конвертирован в токсигенный. Поэтому, штамм L911 не отвечает необходимым требованиям безопасности, предъявляемым к вакцинным штаммам (Т. Ledon, Е. Valle et al. Construction and characterization of O139 cholerae vaccine candidates // Vaccine-2002. - V.3393. - p.1-10).
Также известен природный штамм V. cholerae KM 118В, на основе которого сконструирован атоксигенный штамм V. cholerae KM184 биовара эльтор (патент РФ №2058388 МКИ: C 12 N 1/20, А 61 К 39/106//(C 12 N 1/20, C 12 R1:63)). Однако он также содержит гены токсин-корегулируемых пилей адгезии, что делает штамм V. cholerae KM184, сконструированный на его основе, потенциально опасным для использования в целях вакцинопрофилактики холеры и не соответствует требованиям безопасности, предъявляемым к вакцинньм штаммам.
Задача изобретения - получение авирулентного, безопасного штамма с высокой продукцией протективных антигенов и являющегося основой для конструирования живых вакцин против диарейных заболеваний, вызываемых патогенными штаммами V. cholerae O139.
Сущность изобретения заключается в том, что полученный штамм удовлетворяет поставленным требованиям.
Заявляемый штамм создан на основе хорошо изученного природного авирулентного гемолизпозитивного (Hly+) штамма О139 серогруппы Vibrio cholerae 170, лишенного ключевых генов патогенности (ctxAB- и tcpA-), но продуцирующего О139-антиген и полисахаридную капсулу, являющихся протективными антигенами. На первом этапе методом индуцированного мутагенеза в геном штамма внесена мутация в ген hly, кодирующий биосинтез гемолизина, в результате которой штамм утратил способность образовывать этот фактор вирулентности. На втором этапе в Hly- штамм методом конъюгации введена рекомбинантная плазмида рIЕМ3 (КmrТсr) с клонированным геном В-субъединицы холерного токсина (ctxB). Данная плазмида несет в своем составе гены резистентности к двум антибиотикам - тетрациклину (tet) и канамицину (kan), а также ген ctxB, детерминирующий синтез иммуногенной В-субъединицы холерного токсина.
Изучение продукции В-субъединицы холерного токсина методом радиального пассивного иммунного гемолиза (РПИГ) и иммуноферментным методом (ELISA) у клеток штамма показало, что он образует значительные количества В-субъединицы холерного токсина и стабильно сохраняет этот признак при длительном хранении на питательных средах.
В результате получен авирулентный штамм V. cholerae O139, не продуцирующий гемолизин и стабильно образующий значительное количество иммуногенной В-субъединицы холерного токсина, а также протективных поверхностных антигенов - O139 антигена и полисахаридной капсулы.
Штамм депонирован в Государственной коллекции патогенных бактерий РосНИПЧИ “Микроб” (г.Саратов) под номером КМ168.
Культурально-морфологические, биохимические и серологические свойства штамма
Грамотрицательные, слегка изогнутые палочки, подвижные, с полярно расположенным жгутиком.
На твердых питательных средах формирует средней величины круглые, с ровными краями, мутные колонии сероватого цвета. При росте в бульоне вызывает равномерное помутнение среды.
Факультативный анаэроб. Ферментирует до кислоты без газа маннозу, сахарозу, маннит, мальтозу. Не ферментирует лактозу и арабинозу. По биохимической активности относится к I группе Хейберга. Не лизирует эритроциты барана. Прототроф.
Резистентен к диагностическим холерным фагам С и эльтор.
Агглютинируется диагностической О139-специфической холерной сывороткой (титр реакции агглютинации с монорецепторной О139 антисывороткой составляет 1:1600). Образует полисахаридную капсулу.
Не агглютинируется диагностическими холерными сыворотками О, Инаба, Огава, RO.
Основные свойства штамма
- Авирулентность.
- Отсутствие продукции гемолизина.
- Высокий уровень продукции O139 антигена и полисахаридной капсулы.
- Высокий уровень продукции В-субъединицы холерного токсина.
- Стабильность указанных свойств.
Пример 1. Определение наличия в геноме штамма КМ168 генов вирулентности.
Штамм КМ168 серогруппы O139 не содержит генов А-субъединицы холерного токсина - ctxA, основной субъединицы токсин-корегулируемых пилей адгезии - tcpA, одного из основных регуляторных генов toxT, непосредственно контролирующих экспрессию многих генов вирулентности, а также специфического участка внедрения фага СТХϕ в хромосому - attRS сайта. Детекцию вышеуказанных генов вирулентности проводят с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР) с праймерами на гены ctxA, tcpA, toxT и последовательности attRS. Для этого клетки штамма выращивают в течение 18 ч, лизируют кипячением и используют в концентрации 107 кл/мл для исследования в ПЦР. Отсутствие специфического амплификата свидетельствует об отсутствии генов вирулентности у полученного штамма.
Пример 2. Определение продукции O139 антигена
Готовят ряд разведений сыворотки в изотоническом растворе хлорида натрия от 1:50 до 1/2 титра сыворотки в объеме 0,5 мл. Во все разведения сыворотки добавляют по 0,5 мл взвеси 18-24-часовой агаровой культуры, содержащей 1 млрд. микробных тел в 1 мл. После добавления культуры получают ряд разведений от 1:100 до 1:3200. Постановка реакции сопровождается двумя контролями - контролем антигена (0,5 мл взвеси культуры +0,5 мл изотонического раствора хлорида натрия) и контролем сыворотки (сыворотка в разведении 1:50). В качестве контрольного штамма используют V. cholerae P16064 cap-, титр агглютинации которого составляет 1:1600.
Титр реакции агглютинации заявляемого штамма определяют как конечное разведение, в котором регистрируется образование мелкохлопчатого осадка. Титр агглютинации равен 1:1600.
Пример 3. Определение продукции капсулы по морфологии колоний
При выращивании на твердых питательных средах клетки, продуцирующие полисахаридную капсулу, образуют мутные колонии, в то время как у клеток, не образующих капсулу, колонии прозрачны. Штамм образует на плотных средах мутные колонии, что свидетельствует о его способности продуцировать полисахаридную капсулу.
Пример 4. Определение продукции гемолизина.
Для установления отсутствия продукции гемолизина культуру штамма предварительно рассевают до изолированных моноколоний на полноценных средах, после 18 ч роста клетки методом реплик наносят на полноценные агаровые среды с добавлением 1% бараньих эритроцитов и выращивают в течение 16-18 ч при температуре 37°С. Заявленный штамм не образует зон лизиса эритроцитов вокруг макроколоний.
Пример 5. Определение продукции В-субъединицы холерного токсина
Для определения продукции В-субъединицы холерного токсина в сконструированном штамме используют реакцию пассивного иммунного гемолиза (РПИГ) на плотной среде и иммуноферментный метод (ELISA). При определении продукции В-субъединицы холерного токсина с помощью РПИГ изолированные клетки штамма наносят на плотную питательную среду, содержащую эритроциты барана. Зона просветления среды вокруг колоний штамма свидетельствует о продукции этим штаммом В-субъединицы холерного токсина. Размеры зоны иммунного гемолиза (3,5 мм) свидетельствуют о высокой продукции этого фактора иммуногенности у полученного штамма.
Также продукцию В-субъединицы холерного токсина определяют с помощью высокочувствительного количественного иммуноферментного метода ELISA. Установлено, что по результатам этого метода сконструированный штамм продуцирует в среду выращивания 2,5-3 мкг/мл В-субъединицы холерного токсина.
Пример 6. Определение стабильности
Стабильность наследования плазмиды рIЕМ3 определяют путем выращивания штамма в неселективных условиях без антибиотиков в течение 48-72 ч в жидкой питательной среде при 37°С, затем рассевают до моноколоний на плотной питательной среде. Полученные изолированные колонии проверяют по маркерам резистентности плазмиды рIЕМ3, т.е. определяют способность клеток штамма расти на средах с канамицином (50 мкг/мл) и тетрациклином (2 мкг/мл). Клетки штамма в 100% случаях наследуют данную плазмиду.
Стабильность введенной рекомбинантной плазмиды проверяется также в условиях in vivo при выращивании штамма в организме биомоделей - в крольчатах-сосунках. Крольчат-сосунков заражают указанным штаммом внутрикишечно в дозе 1×109 м.т. Через 48 ч после заражения содержимое кишечника высевают на плотную питательную среду, колонии проверяют на наличие плазмидных маркеров резистентости к антибиотикам. Установлено, что после 48-часового пребывания в кишечнике крольчат 82% изученных клонов сохраняют рекомбинантную плазмиду рIЕМ3.
Пример 7. Определение безвредности штамма
Безвредность сконструированного штамма изучают на модели крольчат-сосунков. Крольчат-сосунков заражают внутрикишечно в дозах 1×109 и 5×109 кл./мл. За животными наблюдают в течение 48 ч. Установлено, что введение полученного штамма не приводит к развитию диареи или гибели животных. У животных, зараженных штаммом, не наблюдается ни макроскопических, ни микроскопических изменений тканей.
Таким образом, заявляемый штамм негемолитичен, обладает высоким и стабильным уровнем продукции иммуногенной В-субъединицы холерного токсина и протективных антигенов O139 серогруппы - О139 антигена и полисахаридной капсулы, которые обеспечивают формирование антибактериального и антитоксического иммунитета. Штамм безопасен для лабораторных животных. Указанные свойства полученного штамма V. cholerae KM168 свидетельствуют о том, что он может использоваться как основа для конструирования живых вакцин против диарейных заболеваний, вызываемых патогенными штаммами V. cholerae О139, а также, являясь продуцентом В-субъединицы холерного токсина, может использоваться для выделения очищенной иммуногенной В-субъединицы холерного токсина, которая входит в состав диагностических тест-систем, позволяющих выявлять токсигенные клоны Vibrio cholerae О139.
Изобретение относится к биотехнологии. Штамм V. cholerae О139 получен методом индуцированного мутагенеза с последующим введением рекомбинантной плазмиды pIEMЗ (KmrTcr) с клонированным геном В-субъединицы холерного токсина (ctxB). Штамм негемолитичен, не содержит основных генов вирулентности и авирулентен для лабораторных животных, обладает высоким и стабильным уровнем продукции В-субъединицы холерного токсина (продуцирует в среду выращивания 2,5-3 мкг/мл В-субъединицы ХТ) и протективных антигенов возбудителя холеры О139 серогруппы - О139 антигена и полисахаридной капсулы, обеспечивающих формирование антибактериального и антитоксического иммунитета при холере.
Штамм бактерий Vibrio cholerae КМ 168 (Государственная коллекция патогенных бактерий "Микроб") - основа для конструирования живых вакцин против диарейных заболеваний, вызываемых патогенными штаммами V. cholerae О139.
| RU 2000132731 А, 27.12.2002 | |||
| RU 96108963 А, 10.10.1998 | |||
| RU 2058388 С1, 20.04.1996. |
