Изобретение относиться к области фармации и касается количественного определения суммы флавоноидов в траве различных видов очанок и экстракционных препаратах очанки коротковолосистой.
Растения рода Очанка (о.) - это однолетние, полупаразитные травы сем. Scrophulariaceae, имеющие трудно отличимые морфолого-анатомические признаки. Они используются в народной медицине и гомеопатии для лечения воспалительных и склеротических заболеваний глаз (катаракта, глаукома, конъюнктивит, блефарит), желудочно-кишечного тракта (гепатит, колит, энтероколит), верхних дыхательных путей (бронхит, ангина, пневмония) [Растительные ресурсы СССР. Цветковые растения, их использование, семейства Caprifoliaceae - Plantaginaceae. - М.: Наука, 1990, С.139].
В ходе фитохимических исследований установлено, что основными группами действующих веществ травы о. коротковолосистой, о. мелкоцветной и о. Рейтера являются флавоноиды, иридоиды и фенолкарбоновые кислоты. Комплекс флавоноидных веществ этих растений представлен производными флавона - апигенином, лютеолином, цинарозидом [Сухинина Т.В. Фармакогностическое изучение растений рода очанка/Автореф. канд. дис. Пермь, 2002. 20 с.].
Фармакологические исследования экстракционных препаратов очанки показали наличие антимикробной, гипотензивной и противовоспалительной активности, сочетающейся с низкой токсичностью [Сухинина Т.В. Фармакогностическое изучение растений рода очанка/Автореф. канд. дис. Пермь, 2002. 20 с.]. Многолетний опыт использования в народной медицине и современные данные фармакологических исследований открывают перспективы внедрения травы очанки и экстракционных препаратов на ее основе в медицинскую практику.
Однако разработка и промышленный выпуск препаратов травы очанки затруднен из-за возможной фальсификации и использования недоброкачественного сырья, отсутствия способов промежуточного технологического контроля и оценки качества конечных продуктов. Указанные трудности обусловлены отсутствием надежного способа количественного определения действующих веществ.
Анализ патентной и научной литературы показал: прототип способа определения действующих веществ в траве различных видов очанок отсутствует. Об этом, в частности, свидетельствует отсутствие раздела определения действующих веществ в нормативно-технической документации на траву о. Ростковиуса и о. прямой в Германии [Deutschen Arcneimittel Codex, Stuttgart, 1997, A-192].
Известные способы количественного определения флавоноидов в растительных объектах не являются унифицированными и разработаны или только для сырья одного вида растений [Ярцева И.Б., Куркин В.А. Количественное определение суммы флавоноидов в траве одуванчика лекарственного//Фармация, 1996, №4, С.24-26; Самылина И.А., Евдокимова О.В., Кашникова М.В. Использование хлорида алюминия для определения суммы флавоноидов в цветках боярышника//Фармация, 1994, №6, С.42-45; Смирнова Л.П., Первых Л.Н. Количественное определение суммы флавоноидов в цветках бессмертника песчаного//Химико-фармацевтический журнал, 1998, №6, С.35-36], или только для препаратов, полученных на основе растительного сырья [Чемесова И.И., Чубарова С.Л., Саканян Е.И. и др. Спектрофотометрический метод количественной оценки содержания полифенолов в сухом экстракте из надземной части Mellilotus officinalis (L.) Pall. и в его лекарственной форме (таблетках)//Растительные ресурсы, 2000, Вып.1, Т.36, С.72-74; Кабишев К.Э., Саканян Е.И. Количественное определение суммы флавоноидных соединений в интраназальных лекарственных формах препарата ″Оксофил″ с полиэкстрактом из надземной части Oxytropis oxyphilla (Pall.) DC.// Растительные ресурсы, 2002, Вып.4, Т.38, С.120-127]. Использование этих способов для определения суммы флавоноидов в траве и экстракционных препаратах очанки не возможно из-за отличия:
- в химическом составе растений;
- в консистенции и структуре растительного материала;
- в спектральных характеристиках;
- в последовательности выполнения аналитических операций;
- в используемых государственных стандартных образцах (ГСО).
Целью настоящего изобретения является разработка унифицированного способа количественного определения, позволяющего определять сумму флавоноидов (действующих веществ):
- в сырье различных видов очанок;
- в водных извлечениях-настоях (1:10), сухих и жидких (1:2) экстрактах;
- в спиртовых извлечениях - настойках (1:5), сухих и жидких (1:2) экстрактах, субстанции, содержащей комплекс флавоноидов (фракция флавоноидов).
Для решения поставленной цели были решены следующие задачи:
- выбран доступный комплексообразующий реагент, позволяющий спектрально зафиксировать наличие флавоноидов в растениях и растительных препаратах путем образования устойчивого во времени комплексного соединения;
- определен метод спектрального обнаружения флавоноидов с комплексообразующим реагентом;
- выбрана аналитическая длина волны, позволяющая избирательно определять флавоноидные соединения;
- подобран государственный стандартный образец для пересчета суммы флавоноидов и определен его удельный показатель поглощения (Е1% 1см) в условиях способа количественного определения;
- определены оптимальные условия извлечения флавоноидов из сырья (экстрагент; соотношение сырья и экстрагента; время экстракции);
- разработаны оптимальные условия количественного определения суммы флавоноидов в экстракционных препаратах очанки коротковолосистой (рабочая длина волны, навески, разведение);
- проведена метрологическая характеристика способа количественного определения флавоноидов в сырье и экстракционных препаратах.
Способ количественного определения основан на использовании реакции комплексообразования флавоноидов очанки с алюминия хлоридом (AlCl3) в присутствии натрия ацетата (CH3COONa), с последующим количественным определением этого комплекса методом дифференциальной спектрофотометрии. Дифференциальная спектрофотометрия предусматривает использование в качестве контроля испытуемый раствор без реактивов, что позволяет исключить влияние окрашенных и сопутствующих веществ, а также веществ, не образующих комплексов с реактивами. Хлористый алюминий хлорид является дешевым и доступным реагентом и используется в сочетании с ионизирующей добавкой - ацетатом натрия. Одновременное использование комплексообразующих и ионизирующих реагентов вызывает более значительное батохромное смещение полос поглощения флавоноидов очанки по сравнению с использованием только комплексообразующего реагента (Δλ=6 нм), что позволяет вести определение флавоноидного комплекса в длинноволновой части спектра, свободной от поглощения гидроксикоричных кислот.
Для определения метода спектрального обнаружения и аналитической длины волны были изучены УФ-спектры спиртовых извлечений надземной части с корнями (далее травы) трех видов очанок - о. коротковолосистой, о. мелкоцветной и о. Рейтера и государственного стандартного образца (ГСО) цинарозида (ФС 42-3150-95). Установлено, что УФ-спектры исследованных видов очанок совпадают (табл.1), в качестве примера приведены спектры очанки коротковолосиситой (см. чертеж).
Как следует из полученных данных, спектр спиртового извлечения имеет один максимум (328 нм), который незначительно смещается при добавлении в испытуемый раствор хлористого алюминия и ацетата натрия и обусловлен, вероятно, присутствием в изучаемом экстракте гидроксикоричных и ацилхинных кислот, спектр поглощения которых находиться в области 310-330 нм [Бандюкова В.А. Фенолокислоты растений, их эфиры и гликозиды//Химия природ. соединений, 1983, №2, С.271-273]. Наблюдаемый при этом гипохромный эффект не позволяет использовать метод прямого спектрофотометрирования окрашенного комплекса и данную длину волны в качестве рабочей.
Дифференциальная кривая поглощения (см. чертеж) представляет собой интегрированный спектр наложения комплекса флавоноидных веществ, содержащихся в очанке, имеет всего один максимум 382 нм и перекрывается с длинноволновой полосой ГСО цинарозида в присутствии хлористого алюминия и ацетата натрия. Так как интервал между максимумами дифференциального спектра поглощения и длинноволновой полосы поглощения стандартного образца не превышает половины полуширины полосы поглощения стандартного образца, то погрешность измерения будет не значительной [Ловцева Е.А. Совершенствование способов контроля качества лекарственных средств производных пурина N-гликозидной структуры/Автореф. канд. дис., Пятигорск, 1993. 20 с.]. Это дает возможность использовать λ=382 нм в качестве аналитической, а с учетом измерения на разных приборах значение длин волн может отличаться на ±2 нм (λ=382±2 нм) [Государственная фармакопея СССР, XI изд., М; 1987, Т.1, С.36].
Для изучения возможности использования разработанного способа количественного определения флавоноидов в анализе экстракционных препаратов о. коротковолосистой были изучены их дифференциальные УФ-спектры с хлористым алюминием и ацетатом натрия (табл.2). Как следует из полученных данных, максимумы дифференциальных кривых совпадают, что позволяет использовать λ=382±2 нм в качестве рабочей длины волны в анализе исследованных препаратов.
При разработке оптимальных условий извлечения флавоноидов из сырья использовали воду и этанол различной концентрации. Наиболее полное извлечение определяемых веществ достигалось при экстрагировании 80%-ным этанолом при соотношении сырья и экстрагента 1:80. Время полной экстракции флавоноидов 20 мин. Дальнейшее увеличение времени экстракции нецелесообразно, так как происходит значительное снижение суммы флавоноидов в исследуемых экстрактах. Данные условия извлечения одинаковы для сырья трех видов очанок - о. коротковолосистой, о. мелкоцветной и о. Рейтера. В качестве примера приведены результаты исследования травы очанки коротковолосистой (табл.3).
Для пересчета содержания суммы флавоноидов в траве очанки на цинарозид нами рассчитан (табл.4) удельный показатель поглощения (Е1% 1см) комплексов растворов ГСО цинарозида и с хлористым алюминием и ацетатом натрия при аналитической длине волны 382 нм, который составляет 357,4±3,4. В связи с этим в формулу расчета нами включено теоретическое значение Е1% 1см=357, позволяющее не использовать в методике ГСО цинарозида.
Унифицированный способ количественного определения суммы флавоноидов подтверждается следующими примерами.
Пример 1. Определение суммы флавоноидов в траве о. коротковолосиситой, о. мелкоцветной и о. Рейтера. Аналитическую пробу воздушно-сухого сырья измельчают до размера частиц, проходящих сквозь сито по ГОСТ 214-83 с отверстиями диаметром 2 мм. Около 0,6 г (точная навеска) сырья помещают в коническую колбу вместимостью 100 мл со шлифом, прибавляют 50 мл 80%-ного этанола. Колбу присоединяют к обратному холодильнику и нагревают на кипящей водяной бане в течение 20 мин, считая с момента закипания экстрагента. Колбу охлаждают до комнатной температуры, извлечение фильтруют через ватный тампон в плоскодонную мерную колбу вместимостью 50 мл и через этот же фильтр доводят объем раствора 80%-ным этанолом до метки. Полученное извлечение фильтруют в плоскодонную колбу через бумажный фильтр (раствор А), первые 10 мл фильтрата отбрасывают. 1 мл раствора А помещают в мерную колбу вместимостью 50 мл, добавляют 1 мл 2%-ного спиртового раствора алюминия хлорида и 1 мл 8%-ного спиртового раствора ацетата натрия, доводят объем раствора до метки 80% этанолом и перемешивают (раствор Б). Спустя 30 мин измеряют оптическую плотность раствора Б на спектрофотометре при длине волны 382 нм в кювете с толщиной поглощающего слоя 10 мм. В качестве раствора сравнения используют 1 мл раствора А, доведенного 80%-ным этанолом до метки в мерной колбе вместимостью 50 мл. Содержание суммы флавоноидов в сухой надземной части с корнями очанки в пересчете на цинарозид вычисляют по формуле:
где D - оптическая плотность исследуемого раствора; m - навеска сырья, г; V - объем раствора А, взятого для разбавления, мл; 50 - объем раствора А, мл; 50 - объем раствора Б, мл; W - потеря в массе при высушивании сырья, %; 357 - удельный показатель поглощения комплекса цинарозида с реактивами при длине волны 382 нм.
Статистическая обработка результатов количественного определения выполнена по общепринятой методике ГФ-XI [Государственная фармакопея СССР, XI изд., M., 1987, 4.1, 336 с.]. Результаты (табл.5) показали, что ошибка единичного определения с достоверной вероятностью 95% находиться в пределах 4,5-5,5%.
Проверка на отсутствие систематической ошибки, путем добавки ГСО цинарозида к навеске сырья, выполнена на траве о. коротковолосистой. Установлено, что систематическая ошибка разработанного способа отсутствует (табл.6).
Пример 2. Определение суммы флавоноидов в настоях (1:10) очанки коротковолосистой. 1 мл настоя помещают в мерную колбу вместимостью 50 мл, добавляют 1 мл 2%-ного спиртового раствора алюминия хлорида и 1 мл 8%-ного спиртового раствора ацетата натрия, доводят объем раствора до метки 80% этанолом и перемешивают (раствор А). Спустя 30 мин измеряют оптическую плотность раствора А на спектрофотометре при длине волны 382 нм в кювете с толщиной поглощающего слоя 10 мм. В качестве раствора сравнения используют 1 мл настоя, доведенного 80%-ным этанолом до метки в мерной колбе вместимостью 50 мл. Содержание суммы флавоноидов в настоях очанки коротковолосистой в пересчете на цинарозид вычисляют по формуле:
где D - оптическая плотность исследуемого раствора; а - навеска настоя, мл; 50 - объем раствора А, мл; 357 - удельный показатель поглощения комплекса цинарозида с реактивами при длине волны 382 нм.
Пример 3. Определение суммы флавоноидов в жидком спиртовом экстракте (1:2) очанки коротковолосистой. 1 мл жидкого спиртового экстракта помещают в плоскодонную мерную колбу вместимостью 25 мл и доводят объем раствора 80%-ным этанолом до метки. Полученное разведение фильтруют в плоскодонную колбу через бумажный фильтр (раствор А), первые 10 мл фильтрата отбрасывают. 1 мл раствора А помещают в мерную колбу вместимостью 50 мл, добавляют 1 мл 2%-ного спиртового раствора хлористого алюминия и 1 мл 8%-ного спиртового раствора ацетата натрия, доводят объем раствора до метки 80% этанолом и перемешивают (раствор Б). Спустя 30 мин измеряют оптическую плотность раствора Б на спектрофотометре при длине волны 382 нм в кювете с толщиной поглощающего слоя 10 мм. В качестве раствора сравнения используют 1 мл раствора А, доведенного 80%-ным этанолом до метки в мерной колбе вместимостью 50 мл. Содержание суммы флавоноидов в жидком спиртовом экстракте (1:2) очанки коротковолосистой в пересчете на цинарозид вычисляют по формуле:
где D - оптическая плотность исследуемого раствора; а - навеска сырья, г; V - объем раствора А, взятого для разбавления, мл; 25 - объем раствора А, мл; 50 - объем раствора Б, мл; 357 - удельный показатель поглощения комплекса цинарозида с реактивами при длине волны 382 нм.
Пример 4. Определение суммы флавоноидов в сухом спиртовом и сухом водном экстракте очанки коротковолосистой. Около 0,1 г (точная навеска) сухого спиртового или водного экстракта, помещают в плоскодонную мерную колбу вместимостью 25 мл, растворяют и доводят объем раствора 80%-ным этанолом до метки. Полученное разведение фильтруют в плоскодонную колбу через бумажный фильтр (раствор А), первые 10 мл фильтрата отбрасывают. 1 мл раствора А помещают в мерную колбу вместимостью 50 мл, добавляют 1 мл 2%-ного спиртового раствора хлористого алюминия и 1 мл 8%-ного спиртового раствора ацетата натрия, доводят объем раствора до метки 80% этанолом и перемешивают (раствор Б). Спустя 30 мин измеряют оптическую плотность раствора Б на спектрофотометре при длине волны 382 нм в кювете с толщиной поглощающего слоя 10 мм. В качестве раствора сравнения используют 1 мл раствора А, доведенного 80%-ным этанолом до метки в мерной колбе вместимостью 50 мл. Содержание суммы флавоноидов в сухом спиртовом и водном экстракте очанки коротковолосистой в пересчете на цинарозид вычисляют по формуле:
где D - оптическая плотность исследуемого раствора; а - навеска сырья, г; V - объем раствора А, взятого для разбавления, мл; 25 - объем раствора А, мл; 50 - объем раствора Б, мл; W - потеря в массе при высушивании сухого экстракта, %; 357 - удельный показатель поглощения комплекса цинарозида с реактивами при длине волны 382 нм.
Пример 5. Определение суммы флавоноидов в субстанции, содержащей комплекс флавоноидов очанки коротковолосистой (фракция флавоноидов). Около 0,1 г (точная навеска) субстанции, содержащей сумму флавоноидов, помещают в плоскодонную мерную колбу вместимостью 25 мл, растворяют и доводят объем раствора 80%-ным этанолом до метки. Полученное разведение фильтруют в плоскодонную колбу через бумажный фильтр (раствор А), первые 10 мл фильтрата отбрасывают. 1 мл раствора А помещают в мерную колбу вместимостью 50 мл, добавляют 1 мл 2%-ного спиртового раствора хлористого алюминия и 1 мл 8%-ного спиртового раствора ацетата натрия, доводят объем раствора до метки 80% этанолом и перемешивают (раствор Б). Спустя 30 мин измеряют оптическую плотность раствора Б на спектрофотометре при длине волны 382 нм в кювете с толщиной поглощающего слоя 10 мм. В качестве раствора сравнения используют 1 мл раствора А, доведенного 80%-ным этанолом до метки в мерной колбе вместимостью 50 мл. Содержание суммы флавоноидов в субстанции в пересчете на цинарозид вычисляют по формуле:
где D - оптическая плотность исследуемого раствора; а - навеска субстанции, г; V - объем раствора А, взятого для разбавления, мл; 25 - объем раствора А, мл; 50 - объем раствора Б, мл; W - потеря в массе при высушивании субстанции, %; 357 - удельный показатель поглощения комплекса цинарозида с реактивами при длине волны 382 нм.
Пример 6. Определение суммы флавоноидов в жидком водном экстракте (1:2) очанки коротковолосистой. 1 мл жидкого водного экстракта помещают в плоскодонную мерную колбу вместимостью 25 мл и доводят объем раствора 80%-ным этанолом до метки. Полученное разведение фильтруют в плоскодонную колбу через бумажный фильтр (раствор А), первые 10 мл фильтрата отбрасывают, 1 мл раствора А помещают мерную колбу вместимостью 50 мл, добавляют 1 мл 2%-ного спиртового раствора алюминия хлорида и 1 мл 8%-ного спиртового раствора натрия ацетата, доводят объем раствора до метки 80% этанолом и перемешивают (раствор Б). Спустя 30 мин измеряют оптическую плотность раствора Б на спектрофотометре при длине волны 382 нм в кювете с толщиной поглощающего слоя 10 мм. В качестве раствора сравнения используют 1 мл раствора А, доведенного 80%-ным этанолом до метки в мерной колбе вместимостью 50 мл. Содержание суммы флавоноидов в жидком водном экстракте очанки коротковолосистой в пересчете на цинарозид вычисляют по формуле:
где D - оптическая плотность исследуемого раствора; а - навеска жидкого водного экстракта, мл; V - объем раствора А, взятого для разбавления, мл; 25 - объем раствора А, мл; 50 - объем раствора Б, мл; 357 - удельный показатель поглощения комплекса цинарозида с реактивами при длине волны 382 нм.
Статистическая обработка результатов количественного определения суммы флавоноидов в экстракционных препаратах приведена в табл.7. Как следует из полученных данных, ошибка единичного определения с достоверной вероятностью 95% находится в пределах от 0,49 до 2,65%.
Таким образом, способ количественного определения суммы флавоноидов является унифицированным, так как позволяет проводить определение действующих веществ в сырье различных видов очанок и экстракционных препаратов очанки коротковолосистой по единой методике, при этом отличие в анализе заключается только в величине навесок и степени их разведения до фотометрируемого раствора (табл.8).
Разработанный способ может быть использован в фармацевтической и медицинской промышленности для стандартизации сырья трех видов очанок и экстракционных препаратов очанки коротковолосистой по содержанию действующих веществ (флавоноидов), проведения технологического контроля за производством.
Литература
Растительные ресурсы СССР. Цветковые растения, их использование, семейства Caprifoliaceae - Plantaginaceae. - M.: Наука, 1990, с.139.
Сухинина Т.В. Фармакогностическое изучение растений рода очанка/Автореф. канд. дис., Пермь, 2002. 20 с.
Deutschen Arcneimittel Codex, Stuttgart, 1997, A-192.
Ярцева И.Б., Куркин В.А. Количественное определение суммы флавоноидов в траве одуванчика лекарственного//Фармация, 1996, №4, с.24-26.
Самылина И.А., Евдокимова О.В. Кашникова М.В. Использование хлорида алюминия для определения суммы флавоноидов в цветках боярышника//Фармация, 1994, №6, С.42-45.
Смирнова Л.П., Первых Л.Н. Количественное определение суммы флавоноидов в цветках бессмертника песчаного//Химико-фармацевтический журнал, 1998, №6, С.35-36.
Чемесова И.И., Чубарова С.Л., Саканян Е.И. и др. Спектрофотометрический метод количественной оценки содержания полифенолов в сухом экстракте из надземной части Mellilotus officinalis (L.) Pall. и в его лекарственной форме (таблетках)//Растительные ресурсы, 2000, Вып.1, Т.36, С.72-74.
Кабишев К.Э., Саканян Е.И. Количественное определение суммы флавоноидных соединений в интраназальных лекарственных формах препарата ″Оксофил″ с полиэкстрактом из надземной части Oxytropis oxyphilla (Pall.) DC.//Растительные ресурсы, 2002, Вып.4, Т.38, С.120-127.
Бандюкова В.А. Фенолокислоты растений, их эфиры и гликозиды//Химия природ. соединений, 1983, №2, С.271-273.
Ловцева Е.А. Совершенствование способов контроля качества лекарственных средств производных пурина N-гликозидной структуры/ Автореф. канд. дис., Пятигорск, 1993. 20 с.
Государственная фармакопея СССР, XI изд., М., 1987, T.I, 336 с.
(80%-ный этанол; соотношение сырья и экстрагента 1:80):
357±3,4
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ СРЕДСТВА, ОБЛАДАЮЩЕГО ПРОТИВОВОСПАЛИТЕЛЬНОЙ И ГИПОТЕНЗИВНОЙ АКТИВНОСТЬЮ | 2002 |
|
RU2220735C1 |
ФАРМАЦЕВТИЧЕСКОЕ СРЕДСТВО ДЛЯ ЛЕЧЕНИЯ ЗАБОЛЕВАНИЙ СУСТАВОВ И СПОСОБ ЕГО ПОЛУЧЕНИЯ | 2007 |
|
RU2342946C1 |
СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ СУММЫ ФЛАВОНОИДОВ В ТРАВЕ ТЫСЯЧЕЛИСТНИКА ОБЫКНОВЕННОГО | 2022 |
|
RU2806035C1 |
СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ СУММЫ ФЛАВОНОИДОВ В ТРАВЕ МОНАРДЫ ДУДЧАТОЙ | 2018 |
|
RU2696770C1 |
СРЕДСТВО, ОБЛАДАЮЩЕЕ АНТИМИКРОБНЫМ, ПРОТИВОВОСПАЛИТЕЛЬНЫМ И АНЕСТЕЗИРУЮЩИМ ДЕЙСТВИЕМ, И СПОСОБ ЕГО ПОЛУЧЕНИЯ | 2008 |
|
RU2396971C2 |
Способ количественного определения содержания рутина в осине обыкновенной | 2016 |
|
RU2633754C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ СРЕДСТВА, ОБЛАДАЮЩЕГО НЕФРОПРОТЕКТОРНОЙ АКТИВНОСТЬЮ | 2012 |
|
RU2505309C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЛЕКАРСТВЕННОГО СРЕДСТВА, ОБЛАДАЮЩЕГО ТИРЕОТРОПНОЙ И АНТИОКСИДАНТНОЙ АКТИВНОСТЬЮ | 2018 |
|
RU2707300C2 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ ВЕЩЕСТВ, ОБЛАДАЮЩИХ АНТИАГРЕГАЦИОННЫМ И ГИПОТЕНЗИВНЫМ ДЕЙСТВИЕМ | 2002 |
|
RU2222339C2 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ СРЕДСТВА, ОБЛАДАЮЩЕГО ПРОТИВОВОСПАЛИТЕЛЬНОЙ АКТИВНОСТЬЮ | 2008 |
|
RU2372934C1 |
Изобретение относится к области фармации, а именно к унифицированному способу количественного определения суммы флавоноидов в траве трех видов очанок: очанки коротковолосистой, очанки мелкоцветной, очанки Рейтера и экстракционных препаратах очанки коротковолосистой. Способ включает использование комплексообразующего агента - 2% спиртового раствора хлористого алюминия и ионизирующего агента - 8% спиртового раствора ацетата натрия; определение окрашенного комплекса методом дифференциальной спектрофотометрии при λ = 382±2 нм; использование для расчета суммы флавоноидов удельного показателя поглощения Е1% 1см = 357 ГСО цинарозида и серии разведений, индивидуальных для каждого экстракционного препарата. Технический результат: способ позволяет проводить стандартизацию лекарственного сырья и экстракционных препаратов очанки по содержанию действующих веществ (флавоноидов) и может использоваться при разработке нормативно-технической документации. 5 з.п. ф-лы, 8 табл., 1 ил.
Способ количественного определения флавоноидов в растительном сырье | 1987 |
|
SU1507394A1 |
Аппарат для охлаждения под вакуумом обжаренных овощей, рыбы и других продуктов | 1955 |
|
SU102728A1 |
Кристаллизатор машины непрерывного литья заготовок | 1984 |
|
SU1214315A1 |
СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ ФЛАВОНОИДОВ МЕТОДОМ ДИФФЕРЕНЦИАЛЬНОЙ ВОЛЬТАМПЕРОМЕТРИИ | 2002 |
|
RU2215288C2 |
Авторы
Даты
2005-12-20—Публикация
2003-12-24—Подача