СПОСОБ ОЦЕНКИ ТОКСИЧНОСТИ ФТОРИДА НАТРИЯ Российский патент 2008 года по МПК G01N33/48 C12N5/06 

Описание патента на изобретение RU2327988C2

Изобретение относится к медицине, а именно к фармакотерапии, и может быть использовано для лечения и профилактики в практической медицине и для научных исследований.

Фторид натрия является препаратом, включенным в Государственный реестр лекарственных средств [1], его токсичность и дозировки проверены на фазе доклинических и клинических испытаний (in vivo), проведено стандартное определение согласно утвержденной документации, недостатком такого подхода является необходимость проведения клинических испытаний, что небезопасно для человека. Известен потенциометрический метод (потенциометрия) определения концентрации вещества в растворе [8] - основан на измерении электродвижущей силы (ЭДС) и электродных потенциалов как функции концентрации анализируемого раствора, недостатком которого являются сложность и высокая стоимость аппаратуры и невозможность определения токсичности исследуемого вещества на биологическом объекте. Известно, что испытание на токсичность проводят на здоровых лабораторных животных [2], недостатком данного подхода является сложность и длительность выполнения такой технологии.

Прототипом заявленного изобретения является «Способ диагностики костного флюороза» - для выявления хронической фтористой интоксикации [4], включающий рентгенологическое обследование костей с выявлением остеопороза, а также выполнение трепанобиопсии из гребня подвздошной кости, после чего проводят гистологическое исследование трепаната и при выявлении признаков спонгиогизации компактной костной ткани и рентгенологического диффузного остеопороза диагностируют костный флюороз. Положительное в данном способе - диагностика костного флюороза, недостаток - в сложности методики и невозможности оценить токсичность фторида натрия.

Задача настоящего изобретения: повышение точности и упрощения способа определения токсичности фторида натрия.

Согласно изобретению поставленная задача достигается тем, что оценка токсичности фторида натрия проводится с использованием биологических объектов, где используется метод культивирования ткани, при котором 0,025 мл раствора фторида натрия соответствующей концентрации вносится в 1 мл питательной среды 199 с 15% бычьей сывороткой и антибиотиками, используемой для культивирования клеток почек, а оценку токсичности проводят по особенностям роста культуры тканей почек (in vitro), с помощью светооптического микроскопа при малом увеличении (×120), и по подсчету растущих колоний, эпителиоподобных клеток с некоторым присутствием фибробластоподобных клеток, оценивают степень токсичности, и ингибирование роста клеточных колоний, где свыше 75% свидетельствует о выраженном токсическом действии фторида натрия, а ингибирование роста от 63% до 74% характеризует низкую степень токсичности, ингибирование роста меньше 62% говорит об очень низкой токсичности данного вещества.

Предлагаемый способ выполняется следующим образом.

Для определения токсичности используется ткань гистологического препарата животного (in vitro), что значительно проще, дешевле и, вместе с тем, информативнее, так как позволяет судить об изменениях на клеточном уровне. В наших исследованиях токсическая оценка используемой на животных дозы фтора 0,1 мг/кг [3], эквивалентной суточной потребности человека, проводилась в культуре клеток ткани почек мыши in vitro. Методика культивирования клеток проводилась согласно правилам работы с культурами, описанными и принятыми Д.Полом (1963). Все исследования осуществлялись в стерильных условиях. Для эксперимента были взяты конвенциональные мыши - самцы весом 18 граммов (две штуки). Для получения достоверных результатов опыт проводился дважды. Под эфирным наркозом, декапитации, частичном обескровливании, в стерильных условиях извлекали почки, которые затем измельчали ножницами в растворе Хенкса с 200 ЕД пенициллина и стрептомицина. Для культивирования использовали перфорированную подложку из миллипоровых фильтров и полиамидную пленку [5, 6]. На подложку из миллипоровых фильтров наносили по 45 микрофрагментов ткани, а на полиамидную - 68 микрофрагментов. Культивирование микрофрагментов ткани проводили в пробирках в 1 мл среды. Для культивирования была взята среда 199 с 15% бычьей сывороткой и антибиотиками. В каждую пробирку на 1 мл среды вносили 0,025 мл раствора фторида натрия соответствующей концентрации. Было проведено четыре серии опытов с разными разведениями фторида натрия, в контрольную пробу вместо раствора фторида натрия добавляли адекватное количество дистиллированной воды. После завершения культивирования (через 9 дней) культуры окрашивали гематоксилин-эозином. Площадь зоны роста (подсчет растущих колоний) производили с помощью светооптического микроскопа при малом увеличении (×120). Анализ структуры клеток ткани почек показал, что наблюдался рост преимущественно эпителиоподобных клеток с некоторым присутствием фибробластоподобных клеток, которые образуют отдельные включения. При культивировании на полиамидной пленке общее количество выросших колоний в контрольной пробе - 29 (из 68 возможных). В первой опытной пробе при внесении в среду фторида натрия в концентрации 0,1% раствора число выросших колоний равнялось 3; при концентрации 0,05% раствора - 17; при концентрации 0,033% раствора - 25; при концентрации 0,017% раствора - 22 колонии. На основании проведенных исследовании было установлено, что растворы фторида натрия в концентрации от 0,02% до 0,0025% вызывают ингибирование роста клеточных колоний соответственно на 95,6% - 75%, что свидетельствует о выраженном токсическом действии фторида натрия. В дозах от 0,00165% до 0,00085% растворов фторида натрия ингибирование роста было минимальным, составив от 63% до 74%, что характеризует низкую степень токсичности. Используемая в опытах доза фторида натрия, равная 0,00012% раствора, в культуре была в 8 раз меньше последнего разведения (ингибирование роста составило меньше 62%), что говорит об очень низкой токсичности данного вещества. Оценка токсичности фторида натрия в культуре ткани почек мыши in vitro является одним из возможных тестов для заключения о возможности с достаточной степенью точности оценить токсичность исследуемого вещества. Предлагаемый способ не требует дорогостоящей аппаратуры, может быть применен в любых условиях, безвреден для обслуживающего персонала.

Пример конкретного выполнения 1. Исследовалась проба воды №1 с наличием неизвестного количества фторида натрия. Культивирование микрофрагментов ткани проводили в пробирках в 1 мл среды. Для культивирования была взята среда 199 с 15% бычьей сывороткой и антибиотиками. В пробирку на 1 мл среды вносили 0,025 мл исследуемой воды. После завершения культивирования (через 9 дней) культуры окрашивали гематоксилин-эозином. Площадь зоны роста (подсчет растущих колоний) производили с помощью светооптического микроскопа при малом увеличении (×120). При подсчете растущих колоний выявлено ингибирование роста клеточных колоний на 95%-75%, что свидетельствует о выраженном токсическом действии фторида натрия. Заключение: данную воду применять в пищу нельзя.

Пример конкретного выполнения 2. Исследовалась проба воды №2 с наличием неизвестного количества фторида натрия. Культивирование микрофрагментов ткани проводили в пробирках в 1 мл среды. Для культивирования была взята среда 199 с 15% бычьей сывороткой и антибиотиками. В пробирку на 1 мл среды вносили 0,025 мл исследуемой воды. После завершения культивирования (через 9 дней) культуры окрашивали гематоксилин-эозином. Площадь зоны роста (подсчет растущих колоний) производили с помощью светооптического микроскопа при малом увеличении (×120). При подсчете растущих колоний выявлено ингибирование роста клеточных колоний на 63-74%, что характеризует низкую степень токсичности. Заключение: данную воду применять в пищу нельзя или применять с разведением в два раза с повторным анализом.

Пример конкретного выполнения 3. Исследовалась проба воды №3 с наличием неизвестного количества фторида натрия. Культивирование микрофрагментов ткани проводили в пробирках в 1 мл среды. Для культивирования была взята среда 199 с 15% бычьей сывороткой и антибиотиками. В пробирку на 1 мл среды вносили 0,025 мл исследуемой воды. После завершения культивирования (через 9 дней) культуры окрашивали гематоксилин-эозином. Площадь зоны роста (подсчет растущих колоний) производили с помощью светооптического микроскопа при малом увеличении (×120). При подсчете растущих колоний выявлено ингибирование роста клеточных колоний меньше 62%, что говорит об очень низкой токсичности данного вещества. Заключение: данную воду применять в пищу можно.

ИСТОЧНИКИ ИНФОРМАЦИИ

1. Государственный реестр лекарственных средств, 2004, с.1019-1020.

2. Государственная фармакопея, XI, 1987.

3. Овруцкий Г.Д. Фтор и иммунобиологическая реактивность организма / Г.Д.Овруцкий, Х.С.Хамитов. - М., 1976. - 112 с.

4. Патент на изобретение РФ №2143226, А61В 10/00.

5. Авторское свидетельство СССР №1018711. - МКИ А61В 10/00.

6. Патент на изобретение РФ №1785530, МКИ А61В 10/00.

7. Пол Д. Культура клеток и тканей / Пол Д. - М., 1963. - 256 с.

8. Харитонов Ю.Я. Аналитическая химия (аналитика). Кн.2. Количественный анализ. Физико-химические (инструментальные) методы анализа / Ю.А.Харитонов. - М.: Высш. шк., 2001, с.211).

Похожие патенты RU2327988C2

название год авторы номер документа
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЭПИТЕЛИОПОДОБНЫХ КЛЕТОК ЛЕГКОГО ПЛОДА БУЙВОЛИЦЫ ДЛЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ ВИРУСОВ 2011
  • Будулов Нурдин Рагимханович
  • Кабардиев Садрутдин Шамшитович
  • Гайдарбекова Ханзадай Мансуровна
  • Магомедов Магомед Назирович
RU2496870C2
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ БЕЗОПАСНОСТИ ПРОБИОТИЧЕСКИХ МИКРООРГАНИЗМОВ С ПОМОЩЬЮ КЛЕТОЧНЫХ ТЕСТ-СИСТЕМ 2015
  • Клабукова Дарья Леонидовна
  • Машенцева Наталья Геннадьевна
  • Никонов Илья Николаевич
  • Фисинин Владимир Иванович
  • Чеботарёва Светлана Егоровна
  • Чеботарёв Иван Изотович
RU2604804C1
СПОСОБ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ КЛЕТОК ПЛОДОВ СВИНЬИ ДЛЯ ВИРУСОЛОГИИ 2021
  • Федотова Ольга Семеновна
  • Захарова Юлия Александровна
  • Шмелева Наталья Анатольевна
  • Вылых Иван Владимирович
  • Остапчук Анна Владимировна
RU2795135C2
СПЕЦИАЛИЗИРОВАННАЯ СРЕДА ДЛЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ КЛЕТОК АМНИОТИЧЕСКОЙ ЖИДКОСТИ И ФИБРОБЛАСТОВ ЧЕЛОВЕКА 2009
  • Табаков Вячеслав Юрьевич
  • Щепкина Юлия Васильевна
  • Честков Валерий Викторович
RU2415929C2
Способ хранения почки поросенка для получения монослоя первичнотрипсинизированных клеток и использования его в вирусологических исследованиях 2016
  • Манин Борис Леонидович
  • Коропова Наталья Владимировна
  • Стариков Вячеслав Алексеевич
RU2646135C1
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ БЕЗОПАСНОСТИ ПИЩЕВЫХ ИНГРЕДИЕНТОВ С ПОМОЩЬЮ КЛЕТОЧНЫХ ТЕСТ-СИСТЕМ 2015
  • Клабукова Дарья Леонидовна
  • Машенцева Наталья Геннадьевна
  • Никонов Илья Николаевич
  • Фисинин Владимир Иванович
  • Чеботарёва Светлана Егоровна
  • Чеботарёв Иван Изотович
RU2604802C1
ЛИНИЯ КЛЕТОК ПОЧКИ ТЕЛЕНКА Bos taurus RBT (Rene Bos Taurus) ДЛЯ РЕПРОДУКЦИИ ВИРУСОВ ЖИВОТНЫХ 2012
  • Манин Борис Леонидович
  • Коропова Наталья Владимировна
  • Кузнецова Елена Геннадьевна
  • Лабзова Мария Николаевна
  • Хлебопашникова Светлана Владимировна
RU2488631C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ СТАБИЛЬНЫХ КЛЕТОЧНЫХ КУЛЬТУР 2008
  • Глинских Нина Поликарповна
  • Бахарев Алексей Анатольевич
  • Устьянцев Павел Васильевич
  • Устьянцев Игорь Васильевич
RU2392318C1
Способ бесферментного получения островковой ткани из поджелудочной железы 2022
  • Скалецкая Галина Николаевна
  • Скалецкий Николай Николаевич
  • Севастьянов Виктор Иванович
  • Готье Сергей Владимирович
RU2796462C1
Штамм культивируемых перевиваемых клеток кожно-мышечной ткани эмбриона кролика, используемый для выделения и накопления вирусов 1988
  • Гвозденко Надежда Ивановна
  • Дьяконов Лев Петрович
  • Михайлова Галина Романовна
  • Соловьев Борис Васильевич
  • Пухова Нина Михайловна
SU1544797A1

Реферат патента 2008 года СПОСОБ ОЦЕНКИ ТОКСИЧНОСТИ ФТОРИДА НАТРИЯ

Изобретение относится к медицине, а именно к фармакотерапии, и может быть использовано для лечения и профилактики в практической медицине и для научных исследований. Изобретение представляет собой способ, включающий оценку токсичности фторида натрия с использованием биологических объектов, где используется метод культивирования ткани, при котором 0,025 мл раствора фторида натрия соответствующей концентрации вносится в 1 мл питательной среды 199 с 15% бычьей сывороткой и антибиотиками, используемой для культивирования клеток почек, а оценку токсичности проводят по особенностям роста культуры тканей почек (in vitro), с помощью светооптического микроскопа при малом увеличении (×120), и по подсчету растущих колоний, эпителиоподобных клеток с некоторым присутствием фибробластоподобных клеток, оценивают степень токсичности, и ингибирование роста клеточных колоний, где свыше 75% свидетельствует о выраженном токсическом действии фторида натрия, а ингибирование роста от 63% до 74% характеризует низкую степень токсичности, ингибирование роста меньше 62% говорит об очень низкой токсичности данного вещества.

Формула изобретения RU 2 327 988 C2

Способ оценки токсичности фторида натрия с использованием биологических объектов, отличающийся тем, что используют метод культивирования ткани, при котором 0,025 мл раствора фторида натрия соответствующей концентрации вносится в 1 мл питательной среды 199 с 15% бычьей сывороткой и антибиотиками, используемой для культивирования клеток почек, а оценку токсичности проводят по особенностям роста культуры тканей почек (in vitro), с помощью светооптического микроскопа при малом увеличении (×120), и по подсчету растущих колоний, эпителиоподобных клеток с некоторым присутствием фибробластоподобных клеток, оценивают степень токсичности, и ингибирование роста клеточных колоний, где свыше 75% свидетельствует о выраженном токсическом действии фторида натрия, а ингибирование роста от 63% до 74% характеризует низкую степень токсичности, ингибирование роста меньше 62% говорит об очень низкой токсичности данного вещества.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 2008 года RU2327988C2

Способ определения токсичности водной среды 1990
  • Антощина Маргарита Михайловна
  • Иванова Татьяна Ильинична
  • Рябченко Владимир Ильич
  • Рябченко Николай Ильич
  • Трофимова Марина Викторовна
  • Шеметов Валерий Юрьевич
  • Эрнестова Людмила Сергеевна
SU1748060A1
СПОСОБ ПРОФИЛАКТИКИ ИНФЕКЦИОННОГО РИНОТРАХЕИТА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА 2000
  • Глотов А.Г.
  • Юшков Ю.Г.
RU2196574C2
СПОСОБ ВЫЯВЛЕНИЯ ТОКСИЧНОСТИ ХИМИЧЕСКИХ АГЕНТОВ НА КУЛЬТУРАХ ФИБРОБЛАСТОВ КОЖИ И ЛЕГКИХ ЭМБРИОНА ЧЕЛОВЕКА 1993
  • Еропкина Е.М.
  • Афиногенов Г.Е.
  • Еропкин М.Ю.
RU2079130C1
ШТАММ ПЕРЕВИВАЕМОЙ КУЛЬТУРЫ КЛЕТОК ПОЧКИ КОШКИ ПК-91 ДЛЯ РЕПРОДУКЦИИ ПАРВОВИРУСОВ ПЛОТОЯДНЫХ 1994
  • Дурыманов Александр Гаврилович
  • Шестопалов Александр Михайлович
RU2121501C1
СПОСОБ ВЫЯВЛЕНИЯ ТОКСИЧНОСТИ ХИМИЧЕСКИХ АГЕНТОВ НА КУЛЬТУРАХ ФИБРОБЛАСТОВ КОЖИ И ЛЕГКИХ ЭМБРИОНА ЧЕЛОВЕКА 1993
  • Еропкина Е.М.
  • Афиногенов Г.Е.
  • Еропкин М.Ю.
RU2079130C1
ШТАММ ПЕРЕВИВАЕМОЙ КУЛЬТУРЫ КЛЕТОК ПОЧКИ КОШКИ ПК-91 ДЛЯ РЕПРОДУКЦИИ ПАРВОВИРУСОВ ПЛОТОЯДНЫХ 1994
  • Дурыманов Александр Гаврилович
  • Шестопалов Александр Михайлович
RU2121501C1
СПОСОБ ДИАГНОСТИКИ КОСТНОГО ФЛЮОРОЗА 1997
  • Разумов В.В.
RU2143226C1
Ekambaram P et
al
"Modulation of fluoride toxicity in rats by calcium carbonate and by withdrawal of fluoride exposure", Pharmacol Toxicol, 2002 Feb; 90 (2): 53-8
(реферат).

RU 2 327 988 C2

Авторы

Громова Людмила Евгеньевна

Пащенко Владимир Петрович

Назаренко Наталья Анатольевна

Дегтева Галина Николаевна

Даты

2008-06-27Публикация

2006-08-03Подача