Известен способ моделирования постмедикаментозного иммунодефицита (Микроволны миллиметрового диапазона в профилактике экспериментального постмедикаментозного иммунодефицита цитостатического генеза. Авт. Н.И.Демешко и др. Актуальные вопросы восстановительной медицины, курортологии и физиотерапии: Матер. Международного конгресса «Здравница - 2006. - М., 2006). Способ прототипа заключается в инициации иммунодефицитного состояния посредством разовой внутрибрюшинной инъекции 0,5 мл цитостатика циклофосфана в дозе 4-8 мг/100 г массы тела животного. Этот способ нельзя признать полностью адекватным реальным клиническим ситуациям, когда у многих онкологических пациентов химиотерапия протекает на фоне другого не менее важного фактора иммунодефицита - стресса.
Способ изобретения гораздо более близок к этим ситуациям. Сущность его заключается в том, что вначале у экспериментальных животных, например крыс, вызывают стресс. Этот процесс осуществляется путем вынужденного плавания животных в водопроводной воде при температуре 18°-20°С по 15-20 минут в течение 3 дней ежедневно. На следующий день производят инъекцию циклофосфана в дозе 8-10 мг/100 г массы тела животного внутрибрюшинно. На 5 день после инъекции проводят прижизненные иммунологические исследования - содержание лейкоцитов и лейкоформула крови, фагоцитоз нейтрофилами по Иванову и Чухловину (К методике определения поглотительной и переваривающей способности нейтрофилов. - Лаб. дело. - 1967. - 10. - 610-613), масс селезенки и тимуса.
Способ осуществляют следующим образом - вначале инициируют модель стресса путем вынужденного плавания животных в питьевой водопроводной воде при температуре 18°-20°С по 15-20 минут в течение 3 дней ежедневно, на следующий день производят разовую внутрибрюшинную инъекцию 8-10 мг циклофосфана в расчете на 100 г массы тела животного в 1,0 мл раствора. На 5-6 день после инъекции исследуют иммунологические показатели.
Для изучения адекватности и тяжести предлагаемой модели изучено 31 крыс-самцов линии Вистар массой тела 200-250 г, разделенные на 4 группы. Первую группу представляли 7 интактных животных. 7 крыс второй группы получали инъекцию циклофосфана в дозе 8-10 мг/100 г массы тела; у 8 животных 3 группы инициировали стресс путем вынужденного плавания животных в питьевой водопроводной воде при температуре 18°-20°С по 15-20 минут в течение 3 дней ежедневно); 4 группа - крысы, у которых сначала инициировался стресс по вышеописанной методике, а затем они получали инъекцию циклофосфана (9).
На 5-6 день после инъекции производилось исследование иммунологических тестов.
Данные таблицы убедительно показывают, что в результате воздействия по способу изобретения развиваются достоверные иммуносупрессорные сдвиги как в отношении масс иммунокомпетентных органов, так и по основным показателя фагоцитоза - ФАЛ (фагоцитарная активность лейкоцитов), ФИЛ (фагоцитарный индекс лейкоцитов) и ПЗФ (показатель завершенности фагоцитоза).
Способ может быть проиллюстрирован следующими примерами.
1. Интактная крыса-самец линии Вистар №1, масса тела 210 г. Дополнительных воздействий не получала. Исследование животного осуществлено одновременно с животными опытной группы (на 5 день после инъекции циклофосфана). Масса селезенки 1200 мг, масса тимуса 243 мг, АОК селезенки 104 Кл/чП, ФАЛ 54%, ФИЛ 1,56 ед., ПЗФ 28,2%.
2. Крыса-самец линии Вистар №23, масса тела 210 г получила инъекцию раствора циклофосфана в вышеуказанной дозе. Исследование животного осуществлено на 5 день после инъекции. Масса селезенки 570 мг, масса тимуса 64 мг, АОК селезенки 136 Кл/чП, ФАЛ 26%, ФИЛ 0,28 ед., ПЗФ 7,14%.
3. Крыса-самец линии Вистар №13, масса тела 230 г, у которой сначала инициировался стресс по вышеописанной методике, а затем она получила инъекцию циклофосфана в вышеуказанной дозе. Исследование животного осуществлено на 5 день после инъекции. Масса селезенки 970 мг, масса тимуса 86 мг, АОК селезенки 120 Кл/чП, ФАЛ 24%, ФИЛ 0,36 ед., ПЗФ 11,1%.
4. Крыса-самец линии Вистар №14, масса тела 250 г, у которой сначала инициировался стресс по вышеописанной методике, а затем она получила инъекцию циклофосфана в вышеуказанной дозе. Исследование животного осуществлено на 5 день после инъекции. Масса селезенки 1130 мг, масса тимуса 140 мг, АОК селезенки 160 Кл/чП, ФАЛ 24%, ФИЛ 0,26 ед., ПЗФ 7,6%.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
СПОСОБ ОЦЕНКИ ПОСТМЕДИКАМЕНТОЗНОГО ИММУНОДЕФИЦИТА | 2008 |
|
RU2393480C2 |
СПОСОБ ПРОФИЛАКТИКИ ИММУНОДЕФИЦИТОВ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ | 2002 |
|
RU2243794C2 |
СПОСОБ ОЦЕНКИ ПРОФИЛАКТИКИ ИММУНОДЕФИЦИТА | 2003 |
|
RU2262700C2 |
СПОСОБ ОЦЕНКИ ЭФФЕКТА ЭЛЕКТРОМАГНИТНЫХ ВОЛН МИЛЛИМЕТРОВОГО ДИАПАЗОНА (КВЧ) В ЭКСПЕРИМЕНТЕ | 2012 |
|
RU2529694C2 |
СПОСОБ ОЦЕНКИ ПРОФИЛАКТИКИ ПОСТСТРЕССОРНОЙ ИММУНОПАТОЛОГИИ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ | 2005 |
|
RU2303260C2 |
Способ иммуномодуляции в эксперименте | 1990 |
|
SU1772818A1 |
СПОСОБ ОЦЕНКИ ЭФФЕКТИВНОСТИ ОЗОНОТЕРАПИИ | 2008 |
|
RU2374700C1 |
СПОСОБ МОДЕЛИРОВАНИЯ ВТОРИЧНОГО ИММУНОДЕФИЦИТА В ЭКСПЕРИМЕНТЕ | 1992 |
|
RU2061968C1 |
СПОСОБ ОЦЕНКИ ИММУНОПРОФИЛАКТИЧЕСКОГО ЭФФЕКТА УЛЬТРАЗВУКА В ЭКСПЕРИМЕНТЕ | 2010 |
|
RU2445713C1 |
СПОСОБ МОДЕЛИРОВАНИЯ ВОСПАЛИТЕЛЬНОГО ПОРАЖЕНИЯ СУСТАВОВ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ | 2007 |
|
RU2345424C1 |
Изобретение относится к экспериментальной медицине и может быть использовано для моделирования иммунодефицита, характерного для онкологических пациентов. Для чего осуществляют вынужденное плавание животных в водопроводной воде при температуре 18°-20°С по 15-20 минут в течение 3 дней ежедневно. Затем на следующий день проводят разовую внутрибрюшинную инъекцию 8-10 мг циклофосфана в расчете на 100 г массы тела животного в 1,0 мл раствора и исследование иммунологических показателей на 5-6 день после инъекции. Способ обеспечивает адекватное воспроизведение модели, наиболее приближенной к реальной ситуации за счет предварительной инициации стресса. 1 табл.
Способ моделирования иммунодефицита, характерного для онкологических пациентов, включающий вынужденное плавание животных в водопроводной воде при температуре 18°-20°С по 15-20 мин в течение 3 дней ежедневно, затем на следующий день разовую внутрибрюшинную инъекцию 8-10 мг циклофосфана в расчете на 100 г массы тела животного в 1,0 мл раствора и исследование иммунологических показателей на 5-6 день после инъекции.
ДЕМЕШКО Н.И | |||
Актуальные вопросы восстановительной медицины, курортологии и физиотерапии | |||
- Матер | |||
Пломбировальные щипцы | 1923 |
|
SU2006A1 |
СПОСОБ МОДЕЛИРОВАНИЯ ВТОРИЧНОГО ИММУНОДЕФИЦИТА В ЭКСПЕРИМЕНТЕ | 1992 |
|
RU2061968C1 |
СПОСОБ МОДЕЛИРОВАНИЯ СОСТОЯНИЯ ТЕПЛОВОГО ШОКА У ЛАБОРАТОРНЫХ ЖИВОТНЫХ IN VIVO ДЛЯ ПОСЛЕДУЮЩЕГО ИССЛЕДОВАНИЯ МЕТАБОЛИЗМА ПЕЧЕНИ | 2001 |
|
RU2193236C1 |
ТАРТАКОВСКИЙ В.Л | |||
«К вопросу о моделировании иммунодефицитов», Приобретенные иммунодефицитные состояния в клинике и в эксперименте, 1990 г. |
Авторы
Даты
2009-03-27—Публикация
2007-07-23—Подача