СПОСОБ ВЫЯВЛЕНИЯ ПРОДУКЦИИ МИКРООРГАНИЗМАМИ ИНГИБИТОРОВ АНТИМИКРОБНОГО БЕЛКА ТРОМБОЦИТОВ (β-ЛИЗИНА) Российский патент 2009 года по МПК C12Q1/02 C12Q1/04 

Изобретение относится к медицинской микробиологии и может быть использовано в работе научно-исследовательских институтов и бактериологических лабораторий медицинских учреждений, определяющих факторы патогенности и персистенции микроорганизмов для установления их этиологической значимости при инфекционно-воспалительных процессах.

Известно, что переход инфекционного процесса в хроническую форму обеспечивают факторы микроорганизмов, направленные на инактивацию компонентов неспецифической противоинфекционной резистентности макроорганизма: лизоцима, комплемента, интерферона и др. (Бухарин О.В. Персистенция патогенных бактерий. - М., Медицина, 1999. - С.195-261).

Известны способы определения способности бактерий к инактивации лизоцима - антилизоцимной, комплемента - антикомплементарной, трипсина - антитрипсиновой, интерферона - антиинтерфероновой, карнозина - антикарнозиновой и других активностей микроорганизмов (Бухарин О.В. Персистенция патогенных бактерий. - М., Медицина, 1999. - С.86-99).

Наиболее близким по совокупности признаков к заявляемому способу является способ определения микробных ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов (тромбоцитарного катионного белка, β-лизина) - антитромбоцитарной катионно-белковой активности микроорганизмов (RU 2120999, 27.10.1998).

Недостатками данного способа являются его неточность и трудоемкость (необходимость подсчета колоний тест-культуры на большом числе чашек, вариабельность числа выросших колоний тест-культуры в различных сериях экспериментов). Также недостатком данного способа является этап стерилизации супернатантов хлороформом, что способствует разрушению микробных клеток и выходу внутриклеточных факторов в среду. Данное обстоятельство препятствует тестированию наличия секреторных ингибиторов В-лизина, поскольку в среду выходят периплазматические факторы. Аналогичные данные были получены для микробных ингибиторов лизоцима (Гриценко В.А. Анализ взаимосвязи антилизоцимной активности и репродуктивной функции у эшерихий // ЖМЭИ. - 1997. - №4. - С.67-71).

Заявляемый способ решает задачу повышения точности и уменьшения трудоемкости при выявлении продукции микроорганизмами ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина).

Для решения указанной задачи в заявляемом способе выявления продукции микроорганизмами ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина) исследуемую культуру микроорганизмов выращивают в жидкой питательной среде, отделяют супернатант от микробных клеток путем фильтрации через мембраны с размером пор 0.2-0.45 мкм, добавляют к супернатанту антимикробный белок тромбоцитов (β-лизина), параллельно готовят две контрольные пробы, добавляют в контроль 1 антимикробный белок тромбоцитов (β-лизина) и жидкую питательную среду, в контроль 2 вместо антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина) добавляют физиологический раствор, инкубируют опытную и контрольные пробы, после инкубации добавляют во все пробы тест-культуру Bacillus subtilis ГИСК №010011, инкубируют, опытную и контрольные пробы центрифугируют, осажденные клетки тест-культуры ресуспендируют в жидкой питательной среде или 0.75 М растворе сахарозы, инкубируют, замеряют оптические плотности опытной и контрольных проб и по изменению роста тест-культуры в опытной пробе по сравнению с контрольными судят о продукции микроорганизмами ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина).

Новым в заявляемом способе является то, что супернатант исследуемой культуры микроорганизмов стерилизуют через мембраны с размером пор 0.2-0.45 мкм, после инкубации с тест-культурой опытную и контрольные пробы центрифугируют, отделяют супернатант, осажденные клетки тест-культуры ресуспендируют в жидкой питательной среде или 0.75 М растворе сахарозы, инкубируют, замеряют оптические плотности опытной и контрольных проб и по изменению роста тест-культуры в опытной пробе по сравнению с контрольными судят о продукции микроорганизмами ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов (В-лизина).

Достигаемый при осуществлении изобретения технический результат состоит в том, что заявляемый способ позволяет повысить точность выявления продукции микроорганизмами ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов (В-лизина) и сократить сроки при их выявлении.

Известно использование тест-культуры Bacillus subtilis ГИСК №010011 для тестирования биологической активности антимикробного белка тромбоцитов (RU 2120999, 27.10.1998).

Известно применение мембран с размером пор 0.2-0.45 мкм для стерилизации супернатантов бульонных культур микроорганизмов («Организация и контроль производства лекарственных средств. Стерильные лекарственные средства. Методические указания. Испытание стерилизующей способности мембранных фильтров дискового типа МУ 42-51-17-93», 08.02.1993, №МУ 42-51-1-93 + МУ 42-51-26-93; RU 2151798, 27.06.2000; Ivanov I.B., Gritsenko V.A., Kuzmin M.D. Staphylococcal secretory inhibitor of platelet microbicidal protein is associated with prostatitis source // J. Med. Microbiol. - 2006.- Vol.55. - P.1645-1648).

Авторами экспериментально установлено повышение точности выявления секреторных ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов при использовании заявляемого способа.

Проводился следующий эксперимент. Сравнительное описание эксперимента представлено в таблице 1.

Как видно из таблицы 1, заявляемый способ и способ-прототип содержат одинаковое количество этапов. Однако заявляемый способ является более быстрым по времени.

Таблица 1. Сравнительная характеристика заявляемого способа и способа-прототипа Этапы Способ-прототип Заявляемый способ 1. Приготовление взвесей исследуемых культур микроорганизмов (10⁹ КОЕ/мл) Приготовление взвесей исследуемых культур микроорганизмов (10⁹ КОЕ/мл) 2. Засев 0.1 мл взвеси в 3.0 мл мясопептонного бульона Засев 0.1 мл взвеси в 3.0 мл жидкой питательной среды 3. Инкубация при 37°С в течение 18-24 часов Инкубация при 37°С в течение 18-24 часов 4. Стерилизация бульонных культур хлороформом в течение 1 часа Отделение супернатантов от микробных клеток фильтрацией через мембраны с размером пор 0.2-0.45 мкм 5. Отделение супернатанта от микробных клеток центрифугированием (3000 об/мин - 15 мин) Отсутствует 6. Добавление к супернатанту антимикробного белка тромбоцитов Добавление к супернатанту антимикробного белка тромбоцитов 7. Приготовление контролем: а) контроль 1 (антимикробный Приготовление контролей: а) контроль 1 (антимикробный   белок тромбоцитов + жидкая питательная среда); контроль 2 (физиологический раствор + жидкая питательная среда) белок тромбоцитов + жидкая питательная среда); контроль 2 (физиологический раствор + жидкая питательная среда) 8. Инкубация в течение 1 ч при 37°С Инкубация в течение 1 ч при 37°С 9. Добавление в опытную и контрольные пробы взвеси тест-культуры B.subtilis (OD=0.27 с разведением в 1000 раз) Добавление в опытную и контрольные пробы взвеси тест-культуры B.subtilis (OD=0.27 с разведением в 1000 раз) 10. Инкубация в течение 1 ч при 37°С Инкубация в течение 1 ч при 37°С 11. Высев на плотную питательную среду опытной и контрольных проб Отсутствует 12. Отсутствует Центрифугирование опытной и контрольных проб (3000 об/мин - 15 мин). Удаление супернатантов из опытной и контрольных проб 13. Отсутствует Добавление в опытную иконтрольные пробы жидкой питательной среды или 0.75 М раствора сахарозы. 14. Инкубация 24 ч при 37°С Инкубация 2-18 ч при 37°С 15. Учет результатов методом подсчета выросших колоний B.subtilis и расчет способности бактерий к инактивации антимикробного белка тромбоцитов Учет результатов методом замера оптических плотностей опытной и контрольных проб и расчет способности бактерий к инактивации антимикробного белка тромбоцитов

Антимикробный белок тромбоцитов получали известным способом (Бухарин О.В., Черешнев В.А., Сулейманов К.Г. Антимикробный белок тромбоцитов.- Екатеринбург: УрО РАН, 2000. - С.35-99).

В эксперименте использовали клинические штаммы Staphylococcus aureus (n=7) и Escherichia coli (n=5).

Исследования проводили в 5 независимых сериях. Результаты эксперимента представлены в таблице 2.

Как видно из таблицы 2, использование заявляемого способа позволяет более точно выявить и количественно определить продукцию микроорганизмами ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина).

Таблица 2. Сравнительная характеристика способности микроорганизмов к продукции ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов (В-лизина), % Штаммы Способность к продукции ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов (В-лизина), % Способ-прототип Заявляемый способ S.aureus 1 23.7 (16.8-35.0)* 25.1 (22.7-26.2) S.aureus 2 13.4 (9.5-15.7) 11.8 (9.8-12.7) S.aureus 3 16.9 (15.0-23.7) 18.7 (17.7-19.3) S.aureus 4 7.3 (4.0-10.5) 8.9 (7.8-10.0) S.aureus 5 12.4 (9.5-18.3) 11.2 (10.7-12.9) S.aureus 6 14.7 (11.5-18.9) 13.5 (12.0-14.0) S.aureus 7 6.8 (3.2-10.5) 8.7 (7.5-9.5) E.coli 1 32.8 (22.4-39.0) 37.8 (35.0-40.5) E.coli 2 27.7 (21.5-36.5) 28.9 (27.0-31.2) E.coli 3 44.3 (36.0-49.5) 43.1 (40.9-44.5) E.coli 4 21.8 (18.0-26.5) 22.3 (21.5-24.8) E.coli 5 34.7 (30.0-39.5) 31.9 (29.7-34.5) * - результаты представлены в качестве средних с разбросом значений, которые указаны в скобках.

Из таблицы 2 видно, что при использовании заявляемого способа при проведении нескольких серий эксперимента получается более узкий разброс значений количественного уровня ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина), чем при применении способа-прототипа. Таким образом заявляемый способ является более точным при количественном определении уровня ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина). Поскольку к нормальной микрофлоре относят микроорганизмы, не обладающие способностью к инактивации антимикробного белка тромбоцитов или обладающие способностью к инактивации антимикробного белка тромбоцитов 20% и менее (RU 2260054, 10.09.2005), к нормальной микрофлоре отнесены штаммы S.aureus №№2, 3, 4, 5, 6, 7.

Способ осуществляется следующим образом

1. Исследуемые культуры микроорганизмов выращиваются в жидкой питательной среде в течение 18-24 ч (для анаэробных микроорганизмов срок выращивания увеличивается до 36-48 ч, а для грибов - до 5 сут) при 37°С.

2. Супернатант выросших культур микроорганизмов стерилизуют отделением от клеток фильтрацией через мембраны с размером пор 0.2-0.45 мкм.

3. В опытные пробирки разливают по 0.6 мл супернатантов исследуемых культур микроорганизмов и добавляют 0.3 мл разведения антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина) в разведении 1/3 титра активности (за титр активности принимают то разведение антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина), при котором наблюдается 50% подавление роста тест-культуры B.subtilis). Параллельно готовят два контроля: а) контроль 1: к 0.3 мл антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина) в указанном выше разведении добавляют 0.6 мл жидкой питательной среды, использованной для выращивания исследуемых видов микроорганизмов; б) контроль 2: к 0.3 мл физиологического раствора добавляют 0.6 мл жидкой питательной среды, использованной для выращивания исследуемых видов микроорганизмов.

4. Полученные смеси инкубируют в течение 1 ч при 37°С.

5. Во все пробирки добавляют по 0,1 мл взвеси B.subtilis (способ приготовления взвеси: 16-18-часовую культуру B.subtilis смывают физиологическим раствором и готовят микробную взвесь, густота которой спектрофотометрически (длина волны 650 нм) соответствует оптической плотности 0.27. Полученную взвесь разводят физиологическим раствором в 1000 раз и используют).

6. Полученные смеси инкубируют в течение 1 ч при 37°С.

7. Осаждают клетки тест-культуры B.subtilis центрифугированием при 3000 об/мин в течение 15 мин. Удаляют надосадочную жидкость.

8. Осажденные клетки тест-культуры B.subtilis ресуспендируют в 2-3 мл жидкой питательной среды или 0.75 М раствора сахарозы.

9. Взвеси инкубируют в течение 2-18 ч при 37°С.

10. Замеряют оптические плотности выросшей тест-культуры B.subtilis в опытной и контрольных пробах и по изменению роста тест- культуры B.subtilis в опытной пробе по сравнению с контрольными судят о продукции микроорганизмами ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина).

Примеры конкретного выполнения способа

Пример 1. У больного С. с диагнозом «Хронический простатит. Обострение» из спермы в монокультуре была выделена E.coli, при этом ПМО не достигал этилогически значимого уровня (10³ КОЕ/мл). Для решения вопроса об этиологической значимости у штамма E.coli была определена способность к продукции ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина). Для этого исследуемую культуру вырастили в 2-3 мл мясо-пептонного бульона при 37°С в течение 24 ч. Супернатант выросшей культуры стерилизовали отделением от клеток фильтрацией через мембраны с размером пор 0.2-0.45 мкм. В опытную пробирку разлили 0.6 мл супернатанта исследуемой культуры и добавили 0.3 мл разведения антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина) в разведении 1/3 титра активности (за титр активности приняли то разведение антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина), при котором наблюдалось 50% подавление роста тест-культуры B.subtilis). Параллельно приготовили два контроля: а) контроль 1: к 0.3 мл антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина) в указанном выше разведении добавили 0.6 мл мясо-пептонного бульона; б) контроль 2: к 0.3 мл физиологического раствора добавили 0.6 мл мясо-пептонного бульона. Полученные смеси инкубировали в течение 1 ч при 37°С. Во все пробирки добавили по 0,1 мл взвеси B.subtilis (способ приготовления взвеси: 16-18-часовую культуру B.subtilis смыли физиологическим раствором и приготовили микробную взвесь, густота которой спектрофотометрически (длина волны 650 нм) соответствовала оптической плотности 0.27. Полученную взвесь развели физиологическим раствором в 1000 раз и использовали). Полученные смеси инкубировали в течение 1 ч при 37°С. Осадили клетки тест-культуры B.subtilis центрифугированием при 3000 об/мин в течение 15 мин. Удалили надосадочную жидкость. Осажденные клетки тест-культуры B.subtilis ресуспендировали в 3 мл 0.75 М растворе сахарозы (рН 6.2). Взвеси инкубировали в течение 2 ч при 37°С. Замерили оптические плотности выросшей тест-культуры B.subtilis в опытной и контрольных пробах, которые составили Do=0.137; Dk1=0.1; Dk2=0.22. По формуле (Do-Dk1)×100:(Dk2-Dk1) рассчитали количественное содержание ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов, которое составило 30.83%. Поскольку к нормальной микрофлоре урогенитального тракта человека относят микроорганизмы, не обладающие способностью к инактивации антимикробного белка тромбоцитов или обладающие способностью к инактивации антимикробного белка тромбоцитов 20% и менее (RU 2260054, 10.09.2005), выявление у штамма Е.coli способности к продукции ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина) позволило установить его этиологическую значимость в развитии простатита.

Пример 2. У больного В. с диагнозом «Хронический неспецифический уретрит» из уретры были выделены и по совокупности признаков идентифицированы Staphylococcus capitis (ПМО - 10³ КОЕ/мл) и Enterococcus faecalis (ПМО - 10³ КОЕ/мл). Для дифференциации нормальной микрофлоры от возбудителя уретрита вышеописанным способом у выделенных штаммов была определена способность к продукции ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина). Штамм E.faecalis продуцировал ингибиторы антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина) - 27%, а штамм S.capitis - 12.3%, что позволило отнести последний к нормальной микрофлоре (RU 2260054, 10.09.2005). Изучение спектра чувствительности E.faecalis антибиотикам и проведение направленной терапии привело к элиминации возбудителя и выздоровлению больного.

Таким образом, заявляемый способ позволяет быстро и точно выявить способность микроорганизмов к продукции ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина), что повышает эффективность диагностики и лечения инфекционно-воспалительных заболеваний микробной этиологии.

Изобретение относится к медицинской микробиологии. Способ предусматривает следующее. Исследуемую культуру микроорганизмов выращивают в жидкой питательной среде. Затем супернатант отделяют от микробных клеток путем фильтрации через мембраны с размером пор 0.2-0.45 мкм. После чего добавляют к супернатанту антимикробный белок тромбоцитов (β-лизин). Параллельно с этим готовят две контрольные пробы: в контроль 1 добавляют антимикробный белок тромбоцитов (β-лизин); в контроль 2 вместо антимикробного белка добавляют физический раствор. Инкубируют опытную и контрольные пробы. После инкубации во все пробы добавляют тест-культуру Bacillus subtilis ГИСК №010011. Затем снова инкубируют. После чего опытную и контрольные пробы центрифугируют. Осажденные клетки тест-культуры ресуспендируют в 0,75 М растворе сахарозы и инкубируют. Затем замеряют оптические плотности опытной и контрольных проб и по изменению роста тест-культуры в опытной пробе по сравнению с контрольными судят о продукции микроорганизмами ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина). Изобретение позволяет повысить точность выявления способности микроорганизмов к продукции ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина). 1 з.п. ф-лы, 2 табл.

1. Способ выявления продукции микроорганизмами ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина), включающий выращивание исследуемой культуры микроорганизмов в жидкой питательной среде, стерилизацию выросшей культуры, отделение супернатанта от бактериальных клеток центрифугированием, добавление к супернатанту антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина), параллельное приготовление контрольных проб, инкубацию опытной и контрольных проб, после инкубации добавление во все пробы тест-культуры Bacillus subtilis ГИСК №010011, инкубацию и высев, отличающийся тем, что стерилизацию супернатанта выросшей культуры микроорганизмов осуществляют фильтрацией через мембраны с размером пор 0,2-0,45 мкм, после инкубации с тест-культурой опытную и контрольные пробы центрифугируют, отделяют супернатант, осажденные клетки тест-культуры ресуспендируют в жидкой питательной среде, инкубируют, замеряют оптические плотности опытной и контрольных проб и по изменению роста тест-культуры в опытной пробе по сравнению с контрольными судят о секреции микроорганизмами ингибиторов антимикробного белка тромбоцитов (β-лизина).

2. Способ, по п.1, отличающийся тем, что в качестве жидкой питательной среды для ресуспендирования клеток тест-культуры Bacillus subtilis ГИСК №010011 используют 0,75 М раствор сахарозы.