СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ МИЛЛЕРИТА С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ СУЛЬФАТРЕДУЦИРУЮЩИХ БАКТЕРИЙ Российский патент 2014 года по МПК C22B3/18 C01G53/11 C12N1/20 

Описание патента на изобретение RU2528777C2

Изобретение относится к способу получения чистого миллерита (NiS) из растворов, содержащих металлы, с использованием сульфатредуцирующих бактерий (СРБ).

Предложенный способ можно использовать для получения чистого миллерита из сточных вод, содержащих ионы двухвалентных металлов, включая никель, и жидких отходов добывающих и перерабатывающих металлургических предприятий. При применении предложенного способа возможно избирательное осаждение никеля в виде сульфидов. Важным преимуществом таких технологий является их избирательность по отношению к различным металлам. Так, например, из сточных вод, содержащих железо и никель, могут быть отдельно осаждены сульфиды никеля. Эта особенность позволяет использовать сточные воды в качестве вторичного источника сырья для получения некоторых сульфидов никеля. Миллерит - хороший проводник электричества, немагнитен, антиферромагнетик. Миллерит используется в технике благодаря антиферромагнитным свойствам и сильной магнитной анизотропии; применяется также в радиотехнике в качестве кристаллического детектора, используется в качестве катализатора для реакции дегидросульфирования и гидрогенизирования.

Как один из наиболее богатых никелем минералов (содержит 64,7% Ni) миллерит, представляет несомненный интерес для производства цветных металлов. Никель может быть извлечен из сульфидов традиционным гидрометаллургическим или пирометаллургическим способом.

Сульфиды металлов, в том числе никеля, могут быть получены химическими методами, например в химической реакции непосредственным соединением металлов с серой. Известен способ получения сульфидов никеля из сернокислых растворов путем осаждения из продуктивных растворов сернокислотного выщелачивания при атмосферном давлении (патент РФ, №2281978, С22В 23/00, 2006 г.). Данный способ относится к металлургии и включает варьирование рН и добавление сульфидсодержащего компонента. При этом до осаждения сульфидов никеля проводят предварительную нейтрализацию пульпы и восстановление Fe (III) до Fe (II) с одновременным осаждением примесей в виде сульфидов с последующей дополнительной нейтрализацией и фильтрованием осадка. В качестве сульфидсодержащего реагента используют гидросульфид натрия. Нейтрализацию пульпы перед восстановлением железа проводят до рН не выше 0,8. Восстановление железа и осаждение примесей проводят гидросульфидом натрия при рН=0,8-1,2. Дополнительную нейтрализацию пульпы проводят до рН=3,0-4,0. Осаждение сульфидов никеля и кобальта начинают проводить при рН=3,0-4,0. Недостатками способа является большая энергозатратность производства, необходимость использования специального, дорогостоящего оборудования. Кроме того, отходы химического производства негативно сказываются на состоянии окружающей среды.

Известно образование сульфидов никеля при культивировании смешанных культур СРВ (Gramp et al., 2007). В данном исследовании были получены такие сульфиды никеля, как хизлевудит (Ni3S2) и ваесит (NiS2), но миллерит не образовывался.

Наиболее близким по сущности и достигаемому результату к заявленному изобретению является способ получения сульфида никеля миллерита (NiS) путем помещения чистой культуры сульфатредуцирующих бактерий рода Desulfovibrio в синтетическую среду, содержащую металлы, с добавлением питательных веществ, включающих в себя растворы витаминов, солей, кофакторов, лактата, сульфида натрия, с дальнейшим культивированием при температуре 28°С и высушиванием (VI Молодежная школа-конференция с международным участием «Актуальные аспекты современной микробиологии», М.: 2010. - с.97-99).

Недостатками известного способа является то, что в данных условиях кристаллы миллерита образуются при культивировании в течении 58 суток. В данном способе образование сульфида никеля, миллерита, начинается с 7 суток культивирования, а стабильная кристаллическая фаза миллерита образуется в течении 20 суток.

Задачей настоящего изобретения является разработка способа получения миллерита, не содержащего примеси других сульфидов металлов, с использованием сульфатредуцирующих бактерий при укороченных сроках культивирования.

Поставленная задача решается путем помещения высокоустойчивых к ионам меди и другим металлам СРБ в синтетическую среду, моделирующую сточные воды, содержащие металлы, с добавлением питательных веществ, включающих в себя растворы витаминов, солей, кофакторов, лактата, сульфида натрия, с дальнейшим культивированием в термостате и высушиванием, но, в отличие от прототипа, в качестве донора электронов и углерода добавляется глицерин, культивирование проводят при температуре 28°C в течение 20 суток.

Культивирование проводят в синтетической среде (таблица 1) с внесением питательных веществ, стимулирующих рост бактерий.

В синтетическую среду перед посевом культуры бактерий вносятся питательные вещества и двухвалентный никель. Состав питательных веществ и последовательность их внесения указаны в таблице 2. Все питательные вещества, кроме витаминов, автоклавируют при 1 атм 30 мин. Витамины стерилизуют фильтрованием с помощью бактериального фильтра (0,20 мкм).

Посев проводят в стерильные емкости, объем инокулята (культуры СРБ) в количестве 10% от объема емкости. Емкости с инокулятом заливают синтетической средой (со всеми внесенными питательными веществами) до верха. pH среды доводят до 7,0-7,8 раствором NaHCO3. Флаконы закрывают алюминиевыми колпачками, запечатывают и помещают в термостат при температуре 28°C. Образование миллерита происходит на дне емкости. После культивирования осадок собирают центрифугированием и высушивают на воздухе.

Примеры осуществления изобретения в лабораторных условиях приведен ниже.

Пример 1.

Чистые культуры СРБ культивировали на синтетической среде, содержащей двухвалентный никель в концентрации 100-250 мг Ni/л. В первом флаконе объемом 120 мл культивировали Desulfovibrio sp. A4, во втором - Desulfovibrio sp. A2, в третьем - Desulfosporosinus sp. DB. Кристаллы миллерита получали на дне флаконов.

Все флаконы засевали синтетической средой одинакового состава. Посев проводили в стерильном ламинарном шкафу, который перед этим дезинфицировали ультрафиолетом 30 минут. Перед посевом синтетическую среду (таблица 1) доводили до кипения и затем быстро охлаждали под струей холодной воды для удаления растворенного кислорода. В охлажденную до комнатной температуры среду вносили питательные вещества (таблица 2) (в расчете на 1 л) в следующей последовательности: витамины (2 мл), раствор солей (10 мл), раствор кофакторов (1 мл), органический субстрат - глицерин (10 мл), лактат (0,8 мл), раствор NaHCO3 (pH доводили до 7,0-7,8), раствор сульфида натрия (2 мл).

Стоковый раствор никеля в первый флакон (с Desulfovibrio sp. A4) добавляли в количестве 25 мл на 1 литр синтетической среды (таким образом достигалась концентрация никеля в среде 250 мг/л).

Стоковый раствор никеля во второй флакон (с Desulfovibrio sp. A2) добавляли в количестве 10 мл на 1 литр синтетической среды (таким образом, достигалась концентрация никеля в среде 100 мг/л).

Стоковый раствор никеля в третий флакон (с Desulfosporosinus sp. DB) добавляли в количестве 20 мл на 1 литр синтетической среды (таким образом, достигалась концентрация никеля в среде 200 мг/л).

Во флаконы вносили около 50 мл синтетической среды с внесенными в нее добавками и 10 мл инокулята (культуры бактерий), после чего доливали средой до верха. Резиновые пробки притирали к краям флаконов с помощью стерильной иглы, что уменьшало вероятность проникновения кислорода из воздуха. В конце посева флаконы закрывали алюминиевыми колпачками, запечатывали флакон закаточной машинкой и помещали в термостат при температуре 28°C.

Образованный осадок собирали центрифугированием и высушивали на воздухе. Масса образовавшегося осадка в первом флаконе с культурой Desulfovibrio sp. A4 была равна 0,47 г. Масса образовавшегося осадка во втором флаконе с культурой Desulfovibrio sp. A2 была равна 0,52 г. Масса образовавшегося осадка в третьем флаконе с культурой Desulfosporosinus sp. DB. - 0,41 г.

Изучение образованных осадков проводили с использованием сканирующей электронной микроскопии (Philips SEM515 с анализатором EDAX ECON IV). Кристаллическую фазу определяли методом рентгенофазового анализа на дифрактометре Shimadzu XRD 6000.

Размеры кристаллов, образованные при культивировании различных штаммов СРБ и определенные под сканирующим электронным микроскопом, составляли 1-20 мкм (рисунки 1-3).

Осадки, полученные при культивировании штамма Desulfovibrio sp. A4, содержали никель, серу, железо и кислород. Соотношение элементов представлено в таблице 3. При изучении осадков с помощью рентгенофазового анализа было показано начало образования кристаллического сульфида никеля, миллерита, в течение 7 суток, а стабильная кристаллическая фаза миллерита образуется в течение 20 суток (рисунок 4).

Осадки, полученные при культивировании штамма Desulfovibrio sp. A2, содержали никель, серу и железо (рисунок 5, углерод и кислород происходят от углеродного скотча, на котором лежал образец). Соотношение элементов представлено в таблице 4. При изучении осадков с помощью рентгенофазового анализа было показано начало образования кристаллического сульфида никеля, миллерита, в течение 6 суток, а стабильная кристаллическая фаза миллерита образуется в течение 14 суток.

Осадки, полученные при культивировании штамма Desulfosporosinus sp. DB, содержали никель, серу и железо, углерод и кислород происходят от углеродного скотча, на котором лежал образец (рисунок 6). Соотношение элементов представлено в таблице 5. При изучении осадков с помощью рентгенофазового анализа было показано начало образования кристаллического сульфида никеля, миллерита, в течение 8 суток, а стабильная кристаллическая фаза миллерита образуется в течение 21 суток.

В контрольных осадках, полученных при инкубировании без добавления инокулята, кристаллической фазы не наблюдали и основными элементами были никель и кислород.

Предлагаемый нами способ включает в себя возможность использования в качестве синтетической среды для получения миллерита сточных вод и жидких отходов добывающих и перерабатывающих металлургических предприятий.

Таблица 1 Состав синтетической среды Реактив Концентрация, мг/л Na2SO4 4000 MgCl22O 400 NaCl (25%) 0,0125* FeSO4*7H20 2,1 H3BO3 0,03 MnCl2*4H2O 0,1 CoCl2*6Н2O 0,19 NiCl2*6H2O 0,024 CuCl2*2H2O 0,002 ZnSO4*7H2O 0,144 Na2MoO4*2H2O 0,036 CuSO4*7H2O 750 H2O 1 л * - мл/л

Таблица 2 Состав питательных веществ, добавляемых к синтетической среде Раствор (вносимое количество на 1 литр синтетической среды) Реактив Концентрация 1. Витамины (2 мл/л) 4-аминобензойная кислота 4 мг/л Биотин 1 мг/л Никотиновая кислота 10 мг/л Кальция пантотенат 10 мг/л Пиридоксин дигидрохлорид 15 мг/л Цианкобаламин 1 ампула, содержащая 200 мг/мл цианкобаламина на 1 см3. 2. Раствор солей (10 мл/л) КН2РO4 20 г/л NH4Cl 25 г/л NaCl 100 г/л KCl 50 г/л CaCl2 11,3 г/л H2O 1 л 3. Раствор кофакторов (1 мл/л) NaOH 4 г/л Na2SeO3×5H2O 6 мг/л Na2WO4×2H2O 8 мг/л H2O 1 л 4. Раствор глицерина (10 мл/л) Глицерин 10% 4. Раствор лактата (0,8 мл/л) Лактат 40% 5. Раствор Na2S (2 мл/л) Na2S×9Н2O 4,8 г H2O 100 мл

Таблица 3 Соотношение элементов, определенное при использовании спектрального анализа осадка, образованного штаммом Desulfovibrio sp. A4 при культивировании с Ni(II) (250 мг Ni/л) Элемент Wt % At % S 18.9 23.2 Ni 36.1 24.2

Таблица 4 Соотношение элементов, определенное при использовании спектрального анализа осадка, образованного штаммом Desulfovibrio sp. A2 при культивировании с Ni(II) (100 мг Ni/л) Элемент Wt % At % S 35.64 49.60 Fe 37.84 30.24 Ni 26.52 20.16

Таблица 5 Соотношение элементов, определенное при использовании спектрального анализа осадка, образованного штаммом Desulfosporosinus sp. DB при культивировании с Ni(II) (200 мг Ni/л) Элемент Wt % At % С 47.68 64.80 О 24.76 25.27 S 09.28 04.72 Fe 08.70 02.54 Ni 09.59 02.67

Похожие патенты RU2528777C2

название год авторы номер документа
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ СУЛЬФИДОВ КОБАЛЬТА С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ШТАММА БАКТЕРИИ DESULFOVIBRIO SP. 2016
  • Карначук Ольга Викторовна
  • Ковалева Анастасия Анатольевна
  • Иккерт Ольга Павловна
  • Лущаева Инна Владимировна
RU2637389C1
АЦИДОФИЛЬНЫЙ ШТАММ DESULFOSPOROSINUS SP. ДЛЯ ОЧИСТКИ ЗАГРЯЗНЕННЫХ ЭКОСИСТЕМ С ЭКСТРЕМАЛЬНО КИСЛЫМИ ЗНАЧЕНИЯМИ ОТ ИОНОВ ТЯЖЕЛЫХ МЕТАЛЛОВ 2015
  • Пименов Николай Викторович
  • Марданов Андрей Владимирович
  • Булаев Александр Генрихович
RU2603277C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ СУЛЬФИДА КАДМИЯ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ СУЛЬФАТРЕДУЦИРУЮЩИХ БАКТЕРИЙ 2013
  • Карначук Ольга Викторовна
  • Иккерт Ольга Павловна
  • Лущаева Инна Владимировна
  • Козлова Анна Валерьевна
RU2526456C1
ШТАММ БАКТЕРИЙ DESULFOVIBRIO SP. ДЛЯ ОЧИСТКИ СТОЧНЫХ ВОД ОТ ИОНОВ ТЯЖЕЛЫХ МЕТАЛЛОВ 2013
  • Карначук Ольга Викторовна
  • Иккерт Ольга Павловна
  • Лущаева Инна Владимировна
  • Герасимчук Анна Леонидовна
RU2542402C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ХАЛЬКОПИРИТА С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ АЦИДОТОЛЕРАНТНЫХ СУЛЬФАТРЕДУЦИРУЮЩИХ БАКТЕРИЙ, УСТОЙЧИВЫХ К МЕДИ 2012
  • Карначук Ольга Викторовна
  • Иккерт Ольга Павловна
  • Лущаева Инна Владимировна
  • Козлова Анна Валерьевна
RU2482062C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ КОВЕЛЛИТА С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ СУЛЬФАТРЕДУЦИРУЮЩИХ БАКТЕРИЙ, УСТОЙЧИВЫХ К МЕДИ 2010
  • Карначук Ольга Викторовна
  • Буторова Ольга Павловна
  • Герасимчук Анна Леонидовна
  • Лущаева Инна Владимировна
  • Козлова Анна Валерьевна
  • Забудченко Ольга Вячеславовна
  • Мишин Иван Петрович
RU2426783C1
ШТАММ БАКТЕРИЙ DESULFOVIBRIO SP. VK-9 ДЛЯ ОЧИСТКИ КИСЛЫХ СТОЧНЫХ ВОД ОТ ИОНОВ ТЯЖЕЛЫХ МЕТАЛЛОВ 2015
  • Карначук Ольга Викторовна
  • Герасимчук Анна Леонидовна
  • Франк Юлия Александровна
  • Лущаева Инна Владимировна
RU2603249C1
ШТАММ БАКТЕРИЙ DESULFOVIBRIO DESULFURICANS, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ОЧИСТКИ ПРОМЫШЛЕННЫХ СТОЧНЫХ ВОД ОТ ИОНОВ ТЯЖЕЛЫХ МЕТАЛЛОВ 1991
  • Губин Виктор Евдокимович
  • Гоготова Галина Ивановна
  • Вайнштейн Михаил Борисович
RU2017814C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЖИДКИХ УГЛЕВОДОРОДОВ 1991
  • Беляева М.И.
  • Золотухина Л.М.
  • Багаева Т.В.
RU2027760C1
Питательная среда для культивирования сульфатредуцирующих бактерий рода Desulfovibrio spp. и способ ее получения 2023
  • Плоскирева Антонина Александровна
  • Куликова Нина Георгиевна
  • Битюмина Люция Айткалиевна
  • Попова Анна Юрьевна
  • Горелов Александр Васильевич
RU2820701C1

Иллюстрации к изобретению RU 2 528 777 C2

Реферат патента 2014 года СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ МИЛЛЕРИТА С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ СУЛЬФАТРЕДУЦИРУЮЩИХ БАКТЕРИЙ

Изобретение относится к биотехнологии. Предложен способ получения миллерита путем помещения чистой культуры сульфатредуцирующих бактерий, устойчивых к ионам меди и других металлов, в синтетическую среду, содержащую соли металлов, с добавлением двухвалентного никеля и питательных веществ, включающих в себя растворы витаминов, солей калия, аммония, натрия, кальция, кофакторов, лактата, сульфида натрия. При этом в питательную среду вводят глицерин. Осуществляют культивирование бактерий при температуре 28ºС. Образовавшийся осадок, содержащий миллерит, собирают центрифугированием и высушивают. Образование кристаллического миллерита начинается в течение 7 суток, а стабильная кристаллическая фаза миллерита образуется в течение 20 суток. Способ позволяет получать миллерит, не содержащий примесей других сульфидов, при укороченных сроках культивирования. 6 ил., 3 табл., 1 пр.

Формула изобретения RU 2 528 777 C2

Способ получения миллерита путем помещения чистой культуры сульфатредуцирующих бактерий, устойчивых к ионам меди и других металлов, в синтетическую среду, содержащую соли металлов, с добавлением двухвалентного никеля и питательных веществ, включающих в себя растворы витаминов, солей калия, аммония, натрия, кальция, кофакторов, лактата, сульфида натрия, с дальнейшим культивированием при температуре 28ºС, отличающийся тем, что при культивировании сульфатредуцирующих бактерий в питательную среду добавляют глицерин, образовавшийся осадок, содержащий миллерит, собирают центрифугированием и высушивают.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 2014 года RU2528777C2

БУТОРОВА О
П
И ДР
"Образование миллерита штаммами Desulfovibrio", VI Молодежная школа-конференция с международным участием "Актуальные аспекты современной микробиологии", Тезисы, Москва, 25-27 октября 2010, с.97-99
KOLMERT A
ET AL
"Remediation of acidic waste waters using immobilised, acidophilic sulfate-reducing bacteria", Journal of

RU 2 528 777 C2

Авторы

Карначук Ольга Викторовна

Иккерт Ольга Павловна

Лущаева Инна Владимировна

Козлова Анна Валерьевна

Даты

2014-09-20Публикация

2012-10-05Подача