КОМБИНИРОВАННАЯ ВАКЦИНА ПРОТИВ РЕСПИРАТОРНО-СИНЦИТИАЛЬНЫХ ВИРУСНЫХ (RSV) ИНФЕКЦИЙ ЧЕЛОВЕКА И СПОСОБ ИНДУЦИРОВАНИЯ ИММУННОГО ОТВЕТА С ЕЕ ПОМОЩЬЮ Российский патент 2023 года по МПК A61K39/295 A61P31/14 

Описание патента на изобретение RU2794440C1

ПЕРЕКРЕСТНАЯ ССЫЛКА НА РОДСТВЕННУЮ ЗАЯВКУ(И)

[0001] Настоящая заявка испрашивает преимущество и приоритет на основании китайской патентной заявки №202010863764.9, поданной в Национальное управление интеллектуальной собственности Китая 25 августа 2020 г. и озаглавленной «КОМБИНИРОВАННАЯ ВАКЦИНА ПРОТИВ РЕСПИРАТОРНО-СИНЦИТИАЛЬНЫХ ВИРУСНЫХ (RSV) ИНФЕКЦИЙ И СПОСОБ ИНДУЦИРОВАНИЯ ИММУННОГО ОТВЕТА С ЕЕ ПОМОЩЬЮ», которая полностью включена в настоящий документ посредством ссылки.

ОБЛАСТЬ ТЕХНИКИ

[0002] Настоящее изобретение относится к области техники биоинженерии, в частности, к комбинированной вакцине против инфекции респираторно-синцитиального вируса человека (RSV) и способу индуцирования иммунного ответа с ее помощью.

УРОВЕНЬ ТЕХНИКИ

[0003] Респираторно-синцитиальный вирус человека (RSV) широко распространен во всем мире, и восприимчивыми к нему популяциями являются в основном дети, пожилые люди и пациенты с ослабленным иммунитетом. 70% младенцев и детей младшего возраста могут быть инфицированы RSV в возрасте до 1 года, и почти все дети грудного и раннего возраста могут быть инфицированы RSV в возрасте до 2 лет. RSV является наиболее важным патогеном, вызывающим пневмонию у детей в возрасте до 5 лет, и является важным патогеном, приводящим к госпитализации и смерти пожилых людей и пациентов с ослабленным иммунитетом. Около 33,1 миллиона детей во всем мире заражаются RSV ежегодно, при этом 99% умерших детей приходится на развивающиеся страны. Видно, что RSV несет тяжелое экономическое и социальное бремя для стран по всему миру, особенно для развивающихся стран. Однако в настоящее время нет доступной коммерческой вакцины против RSV для детей.

[0004] Аденовирусные векторы широко используются в качестве вакцинных векторов благодаря их высокому титру репликации, желаемой безопасности и высокоэффективной экспрессии трансгена. Подобно живым аттенуированным вакцинам, аденовирусные векторные вакцины могут индуцировать слизистый и клеточный иммунитет; между тем, аденовирусные векторы также обладают адъювантным эффектом, вызывая более сильный иммунный ответ против белка, кодируемого трансгеном, в организме. Однако люди широко инфицированы аденовирусом 5 типа (Ad5), и ранее существовавший иммунитет к Ad5 может ограничивать эффективность рекомбинантных аденовирусных вакцин 5 типа (rAd5). Уровни ранее существовавших антител против аденовируса человека 26 типа (Ad26) и аденовируса шимпанзе 63 типа (ChAd63), соответственно, ниже, чем у Ad5, что позволяет избежать плохой эффективности при использовании Ad5. Более того, как рекомбинантный Ad26 (rAd26), так и рекомбинантный ChAd63 (rChAd63) можно выращивать до высоких титров на клеточных линиях, подходящих для производства вакцин клинического класса.

[0005] Когда для иммунизации используют аденовирусную векторную вакцину, она может индуцировать у вакцинируемого иммунный ответ против самого аденовирусного вектора, что будет мешать эффективности бустерной иммунизации, если один и тот же вектор используется дважды. Таким образом, гетерологичная «прайм-буст» иммунизация с использованием двух видов различных аденовирусных векторов является предпочтительной для предотвращения ингибирующего действия индуцированных аденовирусных антител посредством первичной иммунизации гомологичным бустером.

КРАТКОЕ ИЗЛОЖЕНИЕ СУЩНОСТИ ИЗОБРЕТЕНИЯ

[0006] Ввиду этого, чтобы преодолеть недостатки известного уровня техники, целью настоящего изобретения является обеспечение комбинированной вакцины против RSV-инфекций и способа индуцирования иммунного ответа с ее помощью.

[0007] Для достижения вышеуказанной цели настоящее раскрытие предлагает следующее техническое решение.

[0008] Комбинированная вакцина против RSV-инфекций, включающая: первую композицию и вторую композицию; в которой

[0009] первая композиция включает иммунологически эффективную дозу дефектного по репликации аденовирусного вектора человека 26 типа и фармацевтически приемлемого вектора, причем дефектный по репликации аденовирусный вектор человека 26 типа включает нуклеотид, кодирующий антигенный белок RSV;

[0010] вторая композиция включает иммунологически эффективную дозу дефектного по репликации аденовирусного вектора шимпанзе 63 типа и фармацевтически приемлемого вектора, причем дефектный по репликации аденовирусный вектор шимпанзе 63 типа включает нуклеотид, кодирующий антигенный белок RSV;

[0011] где первая композиция представляет собой композицию для первичной иммунизации, а вторая композиция представляет собой композицию для бустерной иммунизации; альтернативно, первая композиция представляет собой композицию для бустерной иммунизации, а вторая композиция представляет собой композицию для первичной иммунизации.

[0012] Предпочтительно, в первой композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор человека 26 типа включает нуклеотид, кодирующий гликопротеин слияния preF «до слияния», и/или нуклеотид, кодирующий а.к. 130-230 гликопротеина адгезии RSV.

[0013] Предпочтительно во второй композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор шимпанзе 63 типа включает нуклеотид, кодирующий preF, и/или нуклеотид, кодирующий G 130-230.

[0014] Предпочтительно, в первой композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор человека 26 типа включает нуклеотид, кодирующий preF, нуклеотидная последовательность которого представлена в SEQ ID NO: 1.

[0015] Предпочтительно, в первой композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор человека 26 типа включает нуклеотид, кодирующий G 130-230, нуклеотидная последовательность которого представлена в SEQ ID NO: 2.

[0016] Предпочтительно, в первой композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор человека 26 типа включает нуклеотид, кодирующий как preF, так и G 130-230, нуклеотидная последовательность которых представлена в SEQ ID NO: 3.

[0017] Предпочтительно во второй композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор шимпанзе 63 типа включает нуклеиновую кислоту, кодирующую по меньшей мере один из трех антигенных белков RSV.

[0018] Предпочтительно во второй композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор шимпанзе 63 типа включает нуклеиновую кислоту, кодирующую по меньшей мере один из трех антигенных белков RSV, где нуклеиновая кислота содержит нуклеотидные последовательности, представленные в SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2 и SEQ ID NO: 3.

[0019] Предпочтительно, в первой композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор человека 26 типа представляет собой rAd26; и во второй композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор шимпанзе 63 типа представляет собой rChAd63.

[0020] Предпочтительно комбинированную вакцину используют для выработки защитного иммунитета против инфекций RSV; при этом первый иммунизатор используют для вызова иммунного ответа, а вторую композицию используют для усиления иммунного ответа; альтернативно, второй иммунизатор используют для вызова иммунного ответа, а первую композицию используют для усиления иммунного ответа.

[0021] Из технических решений, представленных в примерах настоящего раскрытия, видно, что для индуцирования защитного иммунитета против RSV-инфекций применяют комбинированную вакцину против RSV-инфекции, а также композицию, вакцину и способ обеспечения защитного иммунитета против RSV-инфекций.

[0022] Дополнительные аспекты и преимущества настоящего раскрытия будут частично приведены в последующем описании и станут ясными в последующем описании, или будут изучены на практике настоящего раскрытия.

КРАТКОЕ ОПИСАНИЕ ЧЕРТЕЖЕЙ

[0023] Для более ясного описания технических решений примеров в настоящем раскрытии краткое представление чертежей для описания примеров выглядит следующим образом. По-видимому, чертежи в последующем описании являются лишь некоторыми примерами настоящего раскрытия, и для специалистов в данной области техники другие чертежи также могут быть получены из этих чертежей без творческих усилий.

[0024] На Фиг. 1 показан специфичный в отношении preF IgG, продуцируемый мышами BALB/c, иммунизированными рекомбинантный аденовирусом, представленным в примерах настоящего изобретения;

[0025] На Фиг. 2 показан специфичный в отношении postF IgG, продуцируемый мышами BALB/c, иммунизированными рекомбинантный аденовирусом, представленным в примерах настоящего изобретения;

[0026] На Фиг. 3 показано сывороточное нейтрализующее антитело, продуцируемое мышами BALB/c, иммунизированными рекомбинантным аденовирусом, представленным в примерах настоящего изобретения;

[0027] На Фиг. 4 показан иммунный ответ CD8+ Т-клеток, специфичный к RSV F, продуцируемый мышами BALB/c, иммунизированными рекомбинантный аденовирусом, представленным в примерах настоящего изобретения;

[0028] На Фиг. 5 показан специфичный в отношении preF IgG, продуцируемый мышами BALB/c, иммунизированными рекомбинантный аденовирусом, представленным в примерах настоящего изобретения;

[0029] На Фиг. 6 показан специфичный в отношении postF IgG, продуцируемый мышами BALB/c, иммунизированными рекомбинантный аденовирусом, представленным в примерах настоящего изобретения;

[0030] На Фиг. 7 показан специфичный в отношении G IgG, продуцируемый мышами BALB/c, иммунизированными рекомбинантный аденовирусом, представленным в примерах настоящего изобретения;

[0031] На Фиг. 8 показано сывороточное нейтрализующее антитело, продуцируемое мышами BALB/c, иммунизированными рекомбинантным аденовирусом, представленным в примерах настоящего изобретения; и

[0032] На Фиг. 9 показан иммунный ответ CD8+ Т-клеток, специфичный к RSV F, продуцируемый мышами BALB/c, иммунизированными рекомбинантным аденовирусом, представленным в примерах настоящего изобретения.

ПОДРОБНОЕ ОПИСАНИЕ ВАРИАНТОВ ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ

[0033] Варианты осуществления настоящего раскрытия подробно описаны ниже. Примеры вариантов осуществления показаны на чертежах. Одни и те же или подобные цифровые обозначения представляют одинаковые или подобные элементы или элементы, имеющие одинаковые или подобные функции во всем раскрытии. Варианты осуществления, описанные ниже со ссылкой на чертежи, являются примерами и используются только для пояснения настоящего раскрытия, но не должны рассматриваться как ограничение.

[0034] Специалистам в данной области техники должно быть понятно, что, если не указано иное, единственное число определенной и неопределенной формы, используемое здесь, может также включать формы множественного числа. Далее следует понимать, что слово «содержащий» или «включающий», используемое в описании настоящего раскрытия, относится к наличию описанных признаков, целых чисел, стадий, операций, элементов и/или компонентов, но не исключает наличия или добавления одного или нескольких других признаков, целых чисел, стадий, операций, элементов, компонентов и/или их групп. Следует понимать, что когда элемент «соединен» или «связан» с другим элементом, он может быть соединен или связан с другим элементом напрямую или через промежуточный элемент. Кроме того, термины «соединенный» или «связанный», используемые в настоящем документе, могут включать в себя беспроводное соединение или связь. Используемый в настоящем документе термин «и/или» включает любую единицу и все комбинации одного или нескольких связанных перечисленных элементов.

[0035] Специалистам в данной области техники должно быть понятно, что, если не указано иное, все термины (включая технические термины и научные термины), используемые в настоящем документе, имеют те же значения, которые обычно понимаются специалистами в данной области техники. Также следует понимать, что такие термины, как те, которые определены в общих словарях, следует понимать как имеющие значения, согласующиеся со значениями в контексте известного уровня техники, и, если в настоящем документе не определено иное, их не следует объяснять в идеальных или чрезмерно формальных значениях.

[0036] Для простоты понимания приведенных в настоящем документе примеров дальнейшее пояснение и описание приведено с использованием нескольких конкретных примеров в качестве примеров в сочетании с чертежами, и каждый пример не является ограничением приведенных в настоящем документе примеров.

[0037] Настоящее раскрытие направлено на изучение защитного иммунитета против RSV-инфекций с помощью стратегии «прайм-буст» иммунизации, в частности композиции, вакцины и способа для защитного иммунитета против RSV-инфекций.

[0038] Обнаружено, что «прайм-буст» комбинация вакцины дефектного по репликации аденовирусного вектора обеспечивает эффективную иммунную защиту против RSV. Таким образом, примеры согласно настоящему изобретению обеспечивают комбинированную вакцину против RSV-инфекций, включающую: первую композицию и вторую композицию; в которой

[0039] первая композиция включает иммунологически эффективную дозу дефектного по репликации аденовирусного вектора человека 26 типа и фармацевтически приемлемого вектора, причем дефектный по репликации аденовирусный вектор человека 26 типа включает нуклеотид, кодирующий антигенный белок RSV;

[0040] вторая композиция включает иммунологически эффективную дозу дефектного по репликации аденовирусного вектора шимпанзе 63 типа и фармацевтически приемлемого вектора, причем дефектный по репликации аденовирусный вектор шимпанзе 63 типа включает нуклеотид, кодирующий антигенный белок RSV.

[0041] В одном варианте осуществления настоящего раскрытия первая композиция представляет собой композицию для первичной иммунизации, а вторая композиция представляет собой композицию для бустерной иммунизации; альтернативно, первая композиция представляет собой композицию для бустерной иммунизации, а вторая композиция представляет собой композицию для первичной иммунизации.

[0042] В одном из примеров настоящего раскрытия в первой композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор человека 26 типа включает: нуклеотид, кодирующий гликопротеин слияния (preF) «до слияния», и/или нуклеотид, кодирующий а.к. 130-230 гликопротеина прикрепления (G 130-230) RSV; где нуклеотид, кодирующий а.к. 130-230 гликопротеина прикрепления RSV, обозначается аббревиатурой preF2A3G.

[0043] Во второй композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор шимпанзе 63 типа включает нуклеотид, кодирующий preF, и/или нуклеотид, кодирующий G 130-230.

[0044] В одном примере настоящего раскрытия, в первой композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор человека 26 типа включает нуклеотид, кодирующий preF, нуклеотидная последовательность которого представлена в SEQ ID NO: 1; или нуклеотид, кодирующий G 130-230, нуклеотидная последовательность которого представлена в SEQ ID NO: 2; или нуклеотид, кодирующий как preF, так и G 130-230, нуклеотидная последовательность которых представлена в SEQ ID NO: 3.

[0045] В одном примере настоящего раскрытия, во второй композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор шимпанзе 63 типа включает нуклеиновую кислоту, кодирующую по меньшей мере один из трех антигенных белков RSV. В частности, нуклеиновую кислоту, кодирующую по меньшей мере один из трех антигенных белков RSV, где нуклеиновая кислота содержит нуклеотидные последовательности, представленные в SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2 и SEQ ID NO: 3.

[0046] В одном примере настоящего раскрытия, в первой композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор человека 26 типа представляет собой rAd26; и во второй композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор шимпанзе 63 типа представляет собой rChAd63.

[0047] Примеры по настоящему раскрытию дополнительно обеспечивают способ индуцирования иммунного ответа против RSV у вакцинированного, включающий следующие стадии:

[0048] А. введение субъекту первой композиции, включающей иммунологически эффективное количество аденовирусного вектора, где аденовирусный вектор включает нуклеотид, кодирующий антигенный белок RSV; и

[0049] В. введение субъекту второй композиции, включающей иммунологически эффективное количество аденовирусного вектора, где аденовирусный вектор включает нуклеотид, кодирующий антигенный белок RSV; при этом

[0050] стадию (А) и стадию (В) проводят в любом порядке.

[0051] Пример 1

[0052] Прайм-буст иммунизация рекомбинантным аденовирусом, кодирующим гликопротеин слияния (preF) RSV «до слияния».

[0053] I. Иммунитет животных

[0054] Самок мышей BALB/c в возрасте 6-8 недель разделили на 6 групп; в день 0 собирали исходную сыворотку; в 1 день проводили первую иммунизацию внутримышечно. На 21 день после иммунизации отбирали кровь после первой иммунизации. На 28 день проводили повторную иммунизацию внутримышечно. На 49 день отбирали кровь после второй иммунизации. На 56 день проводили эксперимент с заражением интраназальным путем, и доза заражения составляла 1×106 БОЕ/50 мкл wtRSV.

[0055] Группирование и обработка представляли собой следующие:

[0056] первая группа (группа G1): вторичную иммунизацию проводили внутримышечной инъекцией; где первичный иммунизатор представлял собой раствор rChAd63/пустой вирус (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.), а вторичный иммунизатор представлял собой раствор rChAd63/пустой вирус (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.);

[0057] вторая группа (группа G2): вторичную иммунизацию проводили внутримышечной инъекцией; где первичный иммунизатор представлял собой раствор rAd26/пустой вирус (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.), а вторичный иммунизатор представлял собой раствор rAd63/пустой вирус (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.);

[0058] третья группа (группа G3): вторичную иммунизацию проводили внутримышечной инъекцией; где первичный иммунизатор представлял собой раствор rAd26/пустой вирус (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.), а вторичный иммунизатор представлял собой раствор rChAd26/пустой вирус (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.);

[0059] четвертая группа (группа G4): вторичную иммунизацию проводили внутримышечной инъекцией; где первичный иммунизатор представлял собой раствор rChAd63/preF вируса (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.), а вторичный иммунизатор представлял собой раствор rChAd63/preF вируса (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.);

[0060] пятая группа (группа G5): вторичную иммунизацию проводили внутримышечной инъекцией; где первичный иммунизатор представлял собой раствор rAd26/preF вируса (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.), а вторичный иммунизатор представлял собой раствор rAd63/preF вируса (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.); и

[0061] шестая группа (группа G6): вторичную иммунизацию проводили внутримышечной инъекцией; где первичный иммунизатор представлял собой раствор rAd26/preF вируса (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.), а вторичный иммунизатор представлял собой раствор rChAd26/preF вируса (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.).

[0062] II. Обнаружение IgG в сыворотке мышей после иммунизации

[0063] Тестируемый раствор представлял собой: сыворотку, выделенную и полученную из венозной крови мышей, собранную на 49-й день после иммунизации на стадии I.

[0064] Титр сывороточных антител определяли у мышей с помощью твердофазного иммуноферментного анализа (ELISA). Очищенный RSV наносили на планшет для микротитрования в концентрации 2500 БОЕ/лунку, белок F «до слияния» (preF) наносили на планшет для микротитрования в концентрации 450 нг/лунку, а белок F «после слияния» (postF) наносили на планшет для микротитрования в концентрации 1200 нг/лунку, и сывороточные антитела IgG у мышей обнаруживали с помощью ELISA.

[0065] III. Сывороточные нейтрализующие антитела иммунизированных мышей

[0066] 1. Клетки НЕр-2 инокулировали на 96-луночный планшет при плотности 2,0×104 клеток/лунку и культивировали в течение 24 часов.

[0067] 2. Сыворотку иммунизированных мышей инактивировали при 56°С в течение 30 мин и дважды разбавляли средой Игла, модифицированной по способу Дульбекко (DMEM), содержащей 2% фетальной бычьей сыворотки. К сывороткам разных разведений добавляли RSV-mGFP с конечной концентрацией до 1000 БОЕ/100 мкл, сыворотки перемешивали и инкубировали при 37°С в течение 1 ч.

[0068] 3. Среду удаляли из 96-луночного планшета, планшет 1-2 раза промывали PBS, и 100 мкл смеси (содержащей 1000 БОЕ RSV-mGFP) добавляли в 96-луночный планшет, покрытый монослоем клеток НЕр-2, с последующей инкубацией при 37°С в течение 48 часов. В то же время были созданы группа холостого контроля (без вируса, без сыворотки или антитела), группа отрицательного контроля (с RSV-mGFP, без сыворотки) и группа положительного контроля (альтернативная сыворотка с поликлональными антителами RSV), и культивированы в течение 2 дней.

[0069] 4. После завершения стадии 3 интенсивность флуоресценции зеленых флуоресцентных белков в каждой лунке определяли с использованием многофункционального считывающего устройства для микропланшетов SpectraMax М5е при длине волны возбуждения 479 нм и длине волны испускания 517 нм в течение 10 с.

[0070] 5. Данные группы холостого контроля вычитали из данных экспериментальной группы, группы отрицательного контроля и группы положительного контроля, соответственно, и уравнение линейной регрессии экспериментальной группы было установлено с помощью SPSS; титр антител с 50% снижением интенсивности флуоресценции (IC50) рассчитывали по уравнению линейной регрессии.

[0071] IV. Анализ клеточного иммунного эффекта иммунизированных мышей

[0072] Исследуемые клетки представляли собой: клетки селезенки мышей на 49 день

после иммунизации на стадии I.

[0073] 1. Мышей через 49 дней после иммунизации умерщвляли путем смещения шейных позвонков, и клетки селезенки собирали в асептических условиях на сверхчистом столе.

[0074] 2. Эффект клеточного иммунитета анализировали с помощью метода твердофазного иммуносорбента (ELISPOT), и подсчитывали количество лимфоцитов селезенки, секретирующих IFN-γ, после стимуляции Н-2K d-рестриктированным CTL-эпитопом F-белка RSV.

[0075] 3. На сверхчистом столе в каждую лунку добавляли 200 мкл среды 1640, и после выдерживания при комнатной температуре в течение 5-10 минут среду 1640 удаляли.

[0076] 4. В каждую экспериментальную лунку добавляли клеточную суспензию в количестве 100 мкл/лунка. 2×105 клеток/лунку добавляли в лунки положительного контроля, лунки отрицательного контроля и экспериментальные лунки, в то время как в лунки фонового контроля клетки не добавляли.

[0077] 5. Объем стимула, добавляемого в каждую лунку, составлял 10 мкл/лунку; в лунки положительного контроля добавляли рабочий раствор положительного стимула; бессывороточную среду 1640 добавляли в лунки отрицательного контроля и лунки холостого контроля; в экспериментальные лунки добавляли d-рестриктированные CTL-эпитопы белка F RSV Н-2K (KYKNAVTEL и TYMLTNSELL, чистота ≥95%) (по 0,5 мкг каждого из KYKNAVTEL и TYMLTNSELL добавляли к 2×105 клеток); инкубацию проводили в инкубаторе при 37°С, с 5% CO2 в течение 24-48 часов.

[0078] 6. После завершения стадии 5 клетки и среду в лунке сливали и добавляли ледяную деионизированную воду по 200 мкл/лунка; клетки помещали в холодильник при 4°С на 10 мин для проведения гипотонического лизиса клеток.

[0079] 7. Жидкость в лунке выливали, затем 5-7 раз промывали 1 x промывочным буфером по 200 мкл/лунка, каждый раз в течение 30-60 с, и сушили на впитывающей бумаге.

[0080] 8. В каждую экспериментальную лунку добавляли разбавленный и меченный биотином рабочий раствор антитела в количестве 100 мкл/лунка с последующей инкубацией при 37°С в течение 1 часа.

[0081] 9. После завершения стадии 8 жидкость в лунке выливали, затем 5-7 раз промывали 1 x промывочным буфером по 200 мкл/лунка, каждый раз в течение 30-60 с, и сушили на впитывающей бумаге.

[0082] 10. В каждую экспериментальную лунку добавляли разбавленный и меченный ферментом авидином рабочий раствор антитела в количестве 100 мкл/лунка с последующей инкубацией при 37°С в течение 1 часа.

[0083] 11. Жидкость в лунке выливали, затем 5-7 раз промывали 1 x промывочным буфером по 200 мкл/лунка, каждый раз в течение 30-60 с, и сушили на впитывающей бумаге.

[0084] 12. В каждую экспериментальную лунку добавляли свежеприготовленный рабочий раствор цветного проявителя АЕС в количестве 100 мкл/лунка и оставляли стоять при комнатной температуре на 15-45 мин.

[0085] 13. После того, как пятна выросли до подходящего размера, жидкость в лунке сливали, основание планшета открывали и промывали деионизированной водой 3-5 раз для прекращения развития окраски; планшет помещали в прохладное место при комнатной температуре для естественного высыхания до полного высыхания; 96-луночный планшет визуализировали с помощью считывающего устройства ELISPOT, а ряд пятен считывали и анализировали с помощью программного обеспечения для анализа изображений ImmunoSpot v4.0.

[0086] Пример 2

[0087] Прайм-буст иммунизация рекомбинантным аденовирусом, коэкспрессирующим гликопротеин слияния «до слияния» (preF) и гликопротеин прикрепления RSV.

[0088] I. Иммунитет животных

[0089] Самок мышей BALB/c в возрасте 6-8 недель разделили на 6 групп; в день 0 собирали исходную сыворотку; в 1 день проводили первую иммунизацию внутримышечно. На 21 день после иммунизации отбирали кровь после первой иммунизации. На 28 день проводили повторную иммунизацию внутримышечно. На 49-й день забор крови проводили непрерывно после второй иммунизации. На 56 день проводили эксперимент с заражением интраназальным путем, при этом доза заражения составляла 1×106 БОЕ/50 мкл wtRSV.

[0090] Группирование и обработка представляли собой следующие:

[0091] первая группа (группа G1): вторичную иммунизацию проводили внутримышечной инъекцией; где первичный иммунизатор представлял собой раствор rChAd63/пустой вирус (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.), а вторичный иммунизатор представлял собой раствор rChAd63/пустой вирус (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.);

[0092] вторая группа (группа G2): вторичную иммунизацию проводили внутримышечной инъекцией; где первичный иммунизатор представлял собой раствор rAd26/пустой вирус (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.), а вторичный иммунизатор представлял собой раствор rAd63/пустой вирус (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.);

[0093] третья группа (группа G3): вторичную иммунизацию проводили внутримышечной инъекцией; где первичный иммунизатор представлял собой раствор rAd26/пустой вирус (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.), а вторичный иммунизатор представлял собой раствор rChAd26/пустой вирус (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.);

[0094] четвертая группа (группа G4): вторичную иммунизацию проводили внутримышечной инъекцией; где первичный иммунизатор представлял собой раствор rChAd63/preF2A3G вируса (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.), а вторичный иммунизатор представлял собой раствор rChAd63/preF2A3G вируса (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.);

[0095] пятая группа (группа G5): вторичную иммунизацию проводили внутримышечной инъекцией; где первичный иммунизатор представлял собой раствор rAd26/preF2A3G вируса (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.), а вторичный иммунизатор представлял собой раствор rAd63/preF2A3G вируса (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.); и

[0096] шестая группа (группа G6): вторичную иммунизацию проводили внутримышечной инъекцией; где первичный иммунизатор представлял собой раствор rAd26/preF2A3G вируса (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.), а вторичный иммунизатор представлял собой раствор rChAd26/preF2A3G вируса (с вирусной нагрузкой 1×1010 в.ч.).

[0097] II. Обнаружение IgG в сыворотке мышей после иммунизации

[0098] Тестируемый раствор представлял собой: сыворотку, выделенную и полученную из венозной крови мышей, собранную на 49-й день после иммунизации на стадии I.

[0099] Титр сывороточных антител определяли у мышей с помощью твердофазного иммуноферментного анализа (ELISA). Очищенный RSV наносили на планшет для микротитрования в концентрации 2500 БОЕ/лунку, белок F «до слияния» (preF) наносили на планшет для микротитрования в концентрации 450 нг/лунку, белок F «после слияния» (postF) наносили на планшет для микротитрования в концентрации 1200 нг/лунку, ии G-белок наносили на планшет для микротитрования в концентрации 1600 нг/лунку, и сывороточные антитела IgG у мышей определяли с помощью ELISA.

[0100] III. Сывороточные нейтрализующие антитела иммунизированных мышей

[0101] 1. Клетки НЕр-2 инокулировали на 96-луночный планшет при плотности 2,0×104 клеток/лунку и культивировали в течение 24 часов.

[0102] 2. Сыворотку иммунизированных мышей инактивировали при 56°С в течение 30 мин и дважды разбавляли средой Игла, модифицированной по способу Дульбекко (DMEM), содержащей 2% фетальной бычьей сыворотки. К сывороткам разных разведений добавляли RSV-mGFP с конечной концентрацией до 1000 БОЕ/100 мкл, сыворотки перемешивали и инкубировали при 37°С в течение 1 ч.

[0103] 3. Среду удаляли из 96-луночного планшета, планшет 1-2 раза промывали PBS, 100 мкл смеси (содержащей 1000 БОЕ RSV-mGFP) добавляли в 96-луночный планшет, покрытый монослоем клеток НЕр-2, с последующей инкубацией при 37°С в течение 48 часов. В то же время были созданы группа холостого контроля (без вируса, без сыворотки или антитела), группа отрицательного контроля (с RSV-mGFP, без сыворотки) и группа положительного контроля (альтернативная сыворотка с поликлональными антителами RSV), и культивированы в течение 2 дней.

[0104] 4. После завершения стадии 3 интенсивность флуоресценции зеленых флуоресцентных белков в каждой лунке определяли с использованием многофункционального считывающего устройства для микропланшетов SpectraMax М5е при длине волны возбуждения 479 нм и длине волны испускания 517 нм в течение 10 с.

[0105] 5. Данные группы холостого контроля вычитали из данных экспериментальной группы, группы отрицательного контроля и группы положительного контроля, соответственно, и уравнение линейной регрессии экспериментальной группы было установлено с помощью SPSS; титр антител с 50% снижением интенсивности флуоресценции (IC50) рассчитывали по уравнению линейной регрессии.

[0106] IV. Анализ клеточного иммунного эффекта иммунизированных мышей

[0107] Исследуемые клетки представляли собой: клетки селезенки мышей на 49 день после иммунизации на стадии I.

[0108] 1. Мышей через 49 дней после иммунизации умерщвляли путем смещения шейных позвонков, и клетки селезенки собирали в асептических условиях на сверхчистом столе.

[0109] 2. Эффект клеточного иммунитета анализировали с помощью метода твердофазного иммуносорбента (ELISPOT), и подсчитывали количество лимфоцитов селезенки, секретирующих IFN-γ, после стимуляции Н-2K d-рестриктированным CTL-эпитопом F-белка RSV.

[0110] 3. На сверхчистом столе в каждую лунку добавляли 200 мкл среды 1640, и после выдерживания при комнатной температуре в течение 5-10 минут среду 1640 удаляли.

[0111] 4. В каждую экспериментальную лунку добавляли клеточную суспензию в количестве 100 мкл/лунка. 2×105 клеток/лунку добавляли в лунки положительного контроля, лунки отрицательного контроля и экспериментальные лунки, в то время как в лунки фонового контроля клетки не добавляли.

[0112] 5. Объем стимула, добавляемого в каждую лунку, составлял 10 мкл/лунку; в лунки положительного контроля добавляли рабочий раствор положительного стимула; бессывороточную среду 1640 добавляли в лунки отрицательного контроля и лунки холостого контроля; и в экспериментальные лунки добавляли d-рестриктированные CTL-эпитопы белка F RSV Н-2K (KYKNAVTEL и TYMLTNSELL, чистота ≥95%) (по 0,5 мкг каждого из KYKNAVTEL и TYMLTNSELL добавляли к 2×105 клеток); инкубацию проводили в инкубаторе при 37°С, с 5% CO2 в течение 24-48 часов.

[0113] 6. После завершения стадии 5 клетки и среду в лунке сливали и добавляли ледяную деионизированную воду по 200 мкл/лунка; клетки помещали в холодильник при 4°С на 10 мин для проведения гипотонического лизиса клеток.

[0114] 7. Жидкость в лунке выливали, затем 5-7 раз промывали 1 x промывочным буфером по 200 мкл/лунка, каждый раз в течение 30-60 с, и сушили на впитывающей бумаге.

[0115] 8. В каждую экспериментальную лунку добавляли разбавленный и меченный биотином рабочий раствор антитела в количестве 100 мкл/лунка с последующей инкубацией при 37°С в течение 1 часа.

[0116] 9. После завершения стадии 8 жидкость в лунке выливали, затем 5-7 раз промывали 1 x промывочным буфером по 200 мкл/лунка, каждый раз в течение 30-60 с, и сушили на впитывающей бумаге.

[0117] 10. В каждую экспериментальную лунку добавляли разбавленный и меченный ферментом авидином рабочий раствор антитела в количестве 100 мкл/лунка с последующей инкубацией при 37°С в течение 1 часа.

[0118] 11. Жидкость в лунке выливали, затем 5-7 раз промывали 1 x промывочным буфером по 200 мкл/лунка, каждый раз в течение 30-60 с, и сушили на впитывающей бумаге.

[0119] 12. В каждую экспериментальную лунку добавляли свежеприготовленный рабочий раствор цветного проявителя АЕС в количестве 100 мкл/лунка и оставляли стоять при комнатной температуре на 15-45 мин.

[0120] 13. После того, как пятна выросли до подходящего размера, жидкость в лунке сливали, основание планшета открывали и промывали деионизированной водой 3-5 раз для прекращения развития окраски; планшет помещали в прохладное место при комнатной температуре для естественного высыхания до полного высыхания; 96-луночный планшет визуализировали с помощью считывающего устройства ELISPOT, а ряд пятен считывали и анализировали с помощью программного обеспечения для анализа изображений ImmunoSpot v4.0.

[0121] Вышеописанное является просто конкретными вариантами осуществления настоящего раскрытия, и объем защиты в настоящем документе не ограничивается ими. Любая модификация или замена, легко предполагаемая специалистами в данной области техники в рамках технического объема настоящего изобретения, должна подпадать под заявленный в настоящем документе объем. Следовательно, заявленный объем настоящего изобретения должен соответствовать заявленному объему формулы изобретения.

--->

ПЕРЕЧЕНЬ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЕЙ

<110> Beijing Jiaotong University

Beijing Zhifei lvzhu Biopharmaceutical Co.,Ltd.

<120> КОМБИНИРОВАННАЯ ВАКЦИНА ПРОТИВ РЕСПИРАТОРНО-СИНЦИТИАЛЬНЫХ ВИРУСНЫХ

(RSV) ИНФЕКЦИЙ ЧЕЛОВЕКА И СПОСОБ ИНДУЦИРОВАНИЯ ИММУННОГО ОТВЕТА С

ЕЕ ПОМОЩЬЮ

<130> GWPCTP2021121119

<150> 202010863764.9

<151> 2020-08-25

<160> 3

<170> PatentIn version 3.5

<210> 1

<211> 1659

<212> ДНК

<213> Искусственная последовательность

<220>

<223> Нуклеотидная последовательность гликопротеина слияния "до слияния"

<400> 1

atggaactgc tgatcctgaa ggccaacgcc atcaccacca tcctgaccgc tgtgaccttc 60

tgcttcgcca gcggccagaa catcaccgag gaattctacc agagcacctg tagcgccgtg 120

tccaagggct acctgagcgc cctgcggacc ggctggtaca ccagcgtgat caccatcgag 180

ctgagcaaca tcaagaaaat caagtgcaac ggcaccgacg ccaagatcaa gctgatcaag 240

caggaactgg acaagtacaa gaacgccgtg accgagctgc agctgctgat gcagagcacc 300

cccgccacca acaaccaggc tagaggcagc ggaagcggac ggtccctggg cttcctgctg 360

ggcgtgggca gcgccattgc tagcggagtg gccgtgtcaa aggtgctgca cctggaaggc 420

gaagtgaaca agatcaagtc cgccctgctg agcaccaaca aggccgtggt gtccctgagc 480

aacggcgtgt ccgtgctgac cagcaaggtg ctggatctga agaactacat cgacaagcag 540

ctgctgccca tcgtgaacaa gcagagctgc agcatcccca acatcgagac agtgatcgag 600

ttccagcaga agaacaaccg gctgctggaa atcacccgcg agttcagcgt gaacgccggc 660

gtgaccaccc ccgtgtccac ctacatgctg accaacagcg agctgctgag cctgatcaac 720

gacatgccca tcaccaacga ccagaaaaag ctgatgagca acaacgtgca gatcgtgcgg 780

cagcagagct actccatcat gagcatcatc aaagaagagg tgctggccta cgtggtgcag 840

ctgcccctgt acggcgtgat cgacaccccc tgctggaagc tgcacaccag ccccctgtgc 900

accaccaaca ccaaagaggg cagcaacatc tgcctgaccc ggaccgaccg gggctggtac 960

tgcgataatg ccggcagcgt gtcattcttt ccacaagccg agacatgcaa ggtgcagagc 1020

aaccgggtgt tctgcgacac catgaacagc ctgaccctgc cctccgaagt gaacctgtgc 1080

aacgtggaca tcttcaaccc taagtacgac tgcaagatca tgacctccaa gaccgacgtg 1140

tccagctccg tgatcacctc cctgggcgcc atcgtgtcct gctacggcaa gaccaagtgc 1200

accgccagca acaagaaccg gggcatcatc aagaccttca gcaacggctg cgactacgtg 1260

tccaacaagg gggtggacac cgtgtccgtg ggcaacaccc tgtactacgt gaacaaacag 1320

gaaggcaaga gcctgtacgt gaagggcgag cccatcatca acttctacga ccccctggtg 1380

ttccccagcg accagttcga cgccagcatc agccaggtca acgagaagat caaccagagc 1440

ctggccttca tcagaaagag cgacgagctg ctgcacaatg tgaatgccgt gaagtccacc 1500

accaatatca tgatcaccac aatcatcatc gtgatcatcg tcatcctgct gtccctgatc 1560

gccgtgggcc tgctgctgta ctgcaaggcc cggtccaccc ctgtgaccct gtccaaggac 1620

cagctgagcg gcatcaacaa tatcgccttc tccaactga 1659

<210> 2

<211> 1014

<212> ДНК

<213> Искусственная последовательность

<220>

<223> Нуклеотидная последовательность 130-230aa гликопротеина прикрепления

<400> 2

atggacgcca tgaagagggg cctgtgctgc gtgctgctgc tgtgcggcgc cgtgttcgtg 60

agccccagca ccgtgaaaac aaagaacacc accaccaccc agacccagcc cagcaagccc 120

accaccaagc agcggcagaa caagcccccc aacaagccca acaacgactt ccacttcgag 180

gtgttcaact tcgtgccctg cagcatctgc agcaacaacc ctacctgctg ggccatctgc 240

aagcggaagc ctaacaagaa gcccggcaag aaaaccacca caaagcccac caagaagcct 300

accttcaaga ccacaaagaa ggacctgaag ccccagacca ccaagcccaa agaggtgccc 360

accactaagc ccggaggcgg cggatccaca gtgaaaacta agaataccac aacaacacag 420

acacagcctt ccaagcctac aacaaaacag aggcagaaca aacctcctaa caaacctaac 480

aatgattttc actttgaagt gttcaatttt gtgccttgct ccatctgctc caacaatcca 540

acatgttggg ctatctgtaa acgcaaaccc aacaagaaac ctgggaaaaa gaccaccacc 600

aaacctacaa agaaacccac ctttaaaacc accaagaaag atctgaaacc tcagacaaca 660

aaacctaaag aagtgcctac taccaagccc ggaggcggcg gatccaccgt gaaaacaaaa 720

aacacaacaa caactcagac tcagccctct aaacccacaa ctaagcagag acagaacaag 780

cctccaaaca agccaaacaa tgatttccat ttcgaagtgt ttaactttgt gccatgttct 840

atctgttcta acaatcccac ttgttgggcc atctgcaaaa gaaagccaaa caaaaaaccc 900

ggcaaaaaga caacaactaa gcctaccaaa aagcccacat tcaaaactac caaaaaggat 960

ctgaagccac agacaactaa gccaaaagaa gtgcccacaa caaaaccctg ataa 1014

<210> 3

<211> 2736

<212> ДНК

<213> Искусственная последовательность

<220>

<223> Нуклеотидная последовательность гликопротеина слияния "до слияния" и

гликопротеина прикрепления 130-230aa

<400> 3

atggaactgc tgatcctgaa ggccaacgcc atcaccacca tcctgaccgc tgtgaccttc 60

tgcttcgcca gcggccagaa catcaccgag gaattctacc agagcacctg tagcgccgtg 120

tccaagggct acctgagcgc cctgcggacc ggctggtaca ccagcgtgat caccatcgag 180

ctgagcaaca tcaagaaaat caagtgcaac ggcaccgacg ccaagatcaa gctgatcaag 240

caggaactgg acaagtacaa gaacgccgtg accgagctgc agctgctgat gcagagcacc 300

cccgccacca acaaccaggc tagaggcagc ggaagcggac ggtccctggg cttcctgctg 360

ggcgtgggca gcgccattgc tagcggagtg gccgtgtcaa aggtgctgca cctggaaggc 420

gaagtgaaca agatcaagtc cgccctgctg agcaccaaca aggccgtggt gtccctgagc 480

aacggcgtgt ccgtgctgac cagcaaggtg ctggatctga agaactacat cgacaagcag 540

ctgctgccca tcgtgaacaa gcagagctgc agcatcccca acatcgagac agtgatcgag 600

ttccagcaga agaacaaccg gctgctggaa atcacccgcg agttcagcgt gaacgccggc 660

gtgaccaccc ccgtgtccac ctacatgctg accaacagcg agctgctgag cctgatcaac 720

gacatgccca tcaccaacga ccagaaaaag ctgatgagca acaacgtgca gatcgtgcgg 780

cagcagagct actccatcat gagcatcatc aaagaagagg tgctggccta cgtggtgcag 840

ctgcccctgt acggcgtgat cgacaccccc tgctggaagc tgcacaccag ccccctgtgc 900

accaccaaca ccaaagaggg cagcaacatc tgcctgaccc ggaccgaccg gggctggtac 960

tgcgataatg ccggcagcgt gtcattcttt ccacaagccg agacatgcaa ggtgcagagc 1020

aaccgggtgt tctgcgacac catgaacagc ctgaccctgc cctccgaagt gaacctgtgc 1080

aacgtggaca tcttcaaccc taagtacgac tgcaagatca tgacctccaa gaccgacgtg 1140

tccagctccg tgatcacctc cctgggcgcc atcgtgtcct gctacggcaa gaccaagtgc 1200

accgccagca acaagaaccg gggcatcatc aagaccttca gcaacggctg cgactacgtg 1260

tccaacaagg gggtggacac cgtgtccgtg ggcaacaccc tgtactacgt gaacaaacag 1320

gaaggcaaga gcctgtacgt gaagggcgag cccatcatca acttctacga ccccctggtg 1380

ttccccagcg accagttcga cgccagcatc agccaggtca acgagaagat caaccagagc 1440

ctggccttca tcagaaagag cgacgagctg ctgcacaatg tgaatgccgt gaagtccacc 1500

accaatatca tgatcaccac aatcatcatc gtgatcatcg tcatcctgct gtccctgatc 1560

gccgtgggcc tgctgctgta ctgcaaggcc cggtccaccc ctgtgaccct gtccaaggac 1620

cagctgagcg gcatcaacaa tatcgccttc tccaacgagg gccgcggcag cctgctgacc 1680

tgcggcgacg tggaggagaa ccccggcccc ggtaccgcca ccatggacgc catgaagagg 1740

ggcctgtgct gcgtgctgct gctgtgcggc gccgtgttcg tgagccccag caccgtgaaa 1800

acaaagaaca ccaccaccac ccagacccag cccagcaagc ccaccaccaa gcagcggcag 1860

aacaagcccc ccaacaagcc caacaacgac ttccacttcg aggtgttcaa cttcgtgccc 1920

tgcagcatct gcagcaacaa ccctacctgc tgggccatct gcaagcggaa gcctaacaag 1980

aagcccggca agaaaaccac cacaaagccc accaagaagc ctaccttcaa gaccacaaag 2040

aaggacctga agccccagac caccaagccc aaagaggtgc ccaccactaa gcccggaggc 2100

ggcggatcca cagtgaaaac taagaatacc acaacaacac agacacagcc ttccaagcct 2160

acaacaaaac agaggcagaa caaacctcct aacaaaccta acaatgattt tcactttgaa 2220

gtgttcaatt ttgtgccttg ctccatctgc tccaacaatc caacatgttg ggctatctgt 2280

aaacgcaaac ccaacaagaa acctgggaaa aagaccacca ccaaacctac aaagaaaccc 2340

acctttaaaa ccaccaagaa agatctgaaa cctcagacaa caaaacctaa agaagtgcct 2400

actaccaagc ccggaggcgg cggatccacc gtgaaaacaa aaaacacaac aacaactcag 2460

actcagccct ctaaacccac aactaagcag agacagaaca agcctccaaa caagccaaac 2520

aatgatttcc atttcgaagt gtttaacttt gtgccatgtt ctatctgttc taacaatccc 2580

acttgttggg ccatctgcaa aagaaagcca aacaaaaaac ccggcaaaaa gacaacaact 2640

aagcctacca aaaagcccac attcaaaact accaaaaagg atctgaagcc acagacaact 2700

aagccaaaag aagtgcccac aacaaaaccc tgataa 2736

<---

Похожие патенты RU2794440C1

название год авторы номер документа
F-БЕЛОК РЕСПИРАТОРНО-СИНЦИТИАЛЬНОГО ВИРУСА И ЕГО ПРИМЕНЕНИЕ 2007
  • Грюнвальд Томас
  • Юберла Клаус
RU2464316C2
НУКЛЕИНОКИСЛОТНЫЕ И АМИНОКИСЛОТНЫЕ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТИ АДЕНОВИРУСА ОБЕЗЬЯН, ВЕКТОРЫ, СОДЕРЖАЩИЕ УКАЗАННЫЕ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТИ, И ИХ ПРИМЕНЕНИЕ 2010
  • Коллока Стефано
  • Никосия Альфредо
  • Кортезе Риккардо
  • Аммендола Вирджиния
  • Амброзио Мария
RU2604815C2
Иммунобиологическое средство и способ его использования для индукции специфического иммунитета против вирусов SARS-CoV-2 вариант B.1.617.2 (Delta) и SARS-CoV-2 вариант B.1.1.529 (Omicron) (варианты) 2022
  • Зубкова Ольга Вадимовна
  • Ожаровская Татьяна Андреевна
  • Должикова Инна Вадимовна
  • Попова Ольга
  • Зрелкин Денис Игоревич
  • Воронина Дарья Владимировна
  • Щебляков Дмитрий Викторович
  • Гроусова Дарья Михайловна
  • Джаруллаева Алина Шахмировна
  • Тухватулин Амир Ильдарович
  • Тухватулина Наталья Михайловна
  • Щербинин Дмитрий Николаевич
  • Есмагамбетов Ильяс Булатович
  • Токарская Елизавета Александровна
  • Ботиков Андрей Геннадьевич
  • Ерохова Алина Сергеевна
  • Ижаева Фатима Магометовна
  • Никитенко Наталья Анатольевна
  • Лубенец Надежда Леонидовна
  • Семихин Александр Сергеевич
  • Гущин Владимир Алексеевич
  • Народицкий Борис Савельевич
  • Логунов Денис Юрьевич
  • Гинцбург Александр Леонидович
  • Борисевич Сергей Владимирович
  • Чернецов Владимир Александрович
  • Крюков Евгений Владимирович
  • Бабира Владимир Федорович
  • Кутаев Дмитрий Анатольевич
  • Логинова Светлана Яковлевна
RU2779634C1
СЛИТЫЙ БЕЛОК ТЕЛОМЕРАЗНОЙ ОБРАТНОЙ ТРАНСКРИПТАЗЫ, КОДИРУЮЩИЕ ЕГО НУКЛЕОТИДЫ И ИХ ПРИМЕНЕНИЕ 2007
  • Чилиберто Дженнаро
  • Ла Моника Никола
  • Меннуни Кармела
  • Скарселли Элиза
RU2473691C2
АДЕНОВИРУС, СОДЕРЖАЩИЙ АЛЬБУМИН-СВЯЗЫВАЮЩИЙ УЧАСТОК 2015
  • Алемани Бонастре Рамон
  • Рохас Экспосито Луис Альфонсо
RU2711371C2
Средство для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 в жидкой форме (варианты) 2021
  • Зубкова Ольга Вадимовна
  • Ожаровская Татьяна Андреевна
  • Должикова Инна Вадимовна
  • Попова Ольга
  • Щебляков Дмитрий Викторович
  • Гроусова Дарья Михайловна
  • Джаруллаева Алина Шахмировна
  • Тухватулин Амир Ильдарович
  • Тухватулина Наталья Михайловна
  • Щербинин Дмитрий Николаевич
  • Есмагамбетов Ильяс Булатович
  • Токарская Елизавета Александровна
  • Ботиков Андрей Геннадьевич
  • Ерохова Алина Сергеевна
  • Ижаева Фатима Магомедовна
  • Никитенко Наталья Анатольевна
  • Лубенец Надежда Леонидовна
  • Семихин Александр Сергеевич
  • Борисевич Сергей Владимирович
  • Народицкий Борис Савельевич
  • Логунов Денис Юрьевич
  • Гинцбург Александр Леонидович
RU2743963C1
Мутантные полимеразы вируса гепатита В 2012
  • Мартен Перрин
  • Сильвестр Натали
  • Маршан Жан-Баптист
RU2625021C2
ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЬ, РАСПОЛОЖЕННАЯ ВЫШЕ ГЕНА CARP, ВЕКТОР, СОДЕРЖАЩИЙ ЭТУ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЬ, И ИХ ИСПОЛЬЗОВАНИЕ 2001
  • Бенуа Патрик
  • Шварц Бертран
  • Бранеллек Дидье
  • Чиэнь Кеннет
  • Чэнь Цзюй
RU2283865C2
Применение средства для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей 2021
  • Зубкова Ольга Вадимовна
  • Ожаровская Татьяна Андреевна
  • Должикова Инна Вадимовна
  • Попова Ольга
  • Щебляков Дмитрий Викторович
  • Гроусова Дарья Михайловна
  • Джаруллаева Алина Шахмировна
  • Тухватулин Амир Ильдарович
  • Тухватулина Наталья Михайловна
  • Щербинин Дмитрий Николаевич
  • Есмагамбетов Ильяс Булатович
  • Токарская Елизавета Александровна
  • Ботиков Андрей Геннадьевич
  • Ерохова Алина Сергеевна
  • Ижаева Фатима Магомедовна
  • Никитенко Наталья Анатольевна
  • Лубенец Надежда Леонидовна
  • Семихин Александр Сергеевич
  • Народицкий Борис Савельевич
  • Логунов Денис Юрьевич
  • Гинцбург Александр Леонидович
  • Борисевич Сергей Владимирович
  • Чернецов Владимир Александрович
  • Крюков Евгений Владимирович
  • Бабира Владимир Федорович
  • Кутаев Дмитрий Анатольевич
  • Логинова Светлана Яковлевна
RU2761904C1
Средство для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 в лиофилизированной форме (варианты) 2021
  • Зубкова Ольга Вадимовна
  • Ожаровская Татьяна Андреевна
  • Должикова Инна Вадимовна
  • Попова Ольга
  • Щебляков Дмитрий Викторович
  • Гроусова Дарья Михайловна
  • Джаруллаева Алина Шахмировна
  • Тухватулин Амир Ильдарович
  • Тухватулина Наталья Михайловна
  • Щербинин Дмитрий Николаевич
  • Есмагамбетов Ильяс Булатович
  • Токарская Елизавета Александровна
  • Ботиков Андрей Геннадьевич
  • Ерохова Алина Сергеевна
  • Ижаева Фатима Магомедовна
  • Никитенко Наталья Анатольевна
  • Лубенец Надежда Леонидовна
  • Семихин Александр Сергеевич
  • Борисевич Сергей Владимирович
  • Народицкий Борис Савельевич
  • Логунов Денис Юрьевич
  • Гинцбург Александр Леонидович
RU2743962C1

Иллюстрации к изобретению RU 2 794 440 C1

Реферат патента 2023 года КОМБИНИРОВАННАЯ ВАКЦИНА ПРОТИВ РЕСПИРАТОРНО-СИНЦИТИАЛЬНЫХ ВИРУСНЫХ (RSV) ИНФЕКЦИЙ ЧЕЛОВЕКА И СПОСОБ ИНДУЦИРОВАНИЯ ИММУННОГО ОТВЕТА С ЕЕ ПОМОЩЬЮ

Изобретение относится к биотехнологии и медицине. Предложена комбинированная вакцина против инфекции респираторно-синцитиального вируса (RSV) человека. Комбинированная вакцина включает первую композицию и вторую композицию. Первая композиция включает иммунологически эффективную дозу дефектного по репликации аденовирусного вектора человека 26 типа и фармацевтически приемлемого вектора. Дефектный по репликации аденовирусный вектор человека 26 типа содержит нуклеотид, кодирующий антигенный белок RSV. Вторая композиция включает иммунологически эффективную дозу дефектного по репликации аденовирусного вектора шимпанзе 63 типа и фармацевтически приемлемого вектора. Дефектный по репликации аденовирусный вектор шимпанзе 63 типа содержит нуклеотид, кодирующий антигенный белок RSV. Предложен способ индуцирования защитного иммунитета против RSV-инфекции с помощью заявленной комбинированной вакцины. Комбинированная вакцина против инфекции RSV имеет улучшенную эффективность за счет устранения ранее существовавшего иммунитета к Ad5. 2 н. и 10 з.п. ф-лы, 9 ил., 2 пр.

Формула изобретения RU 2 794 440 C1

1. Комбинированная вакцина против инфекции респираторно-синцитиального вируса человека (RSV), содержащая: первую композицию и вторую композицию,

где первая композиция включает иммунологически эффективную дозу дефектного по репликации аденовирусного вектора человека 26 типа и фармацевтически приемлемого вектора, причем дефектный по репликации аденовирусный вектор человека 26 типа включает нуклеотид, кодирующий антигенный белок RSV;

вторая композиция включает иммунологически эффективную дозу дефектного по репликации аденовирусного вектора шимпанзе 63 типа и фармацевтически приемлемого вектора, причем дефектный по репликации аденовирусный вектор шимпанзе 63 типа включает нуклеотид, кодирующий антигенный белок RSV;

где в первой композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор человека 26 типа включает нуклеотид, кодирующий гликопротеин слияния (preF) «до слияния», и/или нуклеотид, кодирующий а.к. 130-230 гликопротеина прикрепления (G 130-230) RSV.

2. Комбинированная вакцина по п. 1, отличающаяся тем, что в первой композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор человека 26 типа включает нуклеотид, кодирующий preF, нуклеотидная последовательность которого представлена в SEQ ID NO: 1.

3. Комбинированная вакцина по п. 1, отличающаяся тем, что в первой композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор человека 26 типа включает нуклеотид, кодирующий G 130-230, нуклеотидная последовательность которого представлена в SEQ ID NO: 2.

4. Комбинированная вакцина по п. 1, отличающаяся тем, что в первой композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор человека 26 типа включает нуклеотид, кодирующий как preF, так и G 130-230, нуклеотидная последовательность которых представлена в SEQ ID NO: 3.

5. Комбинированная вакцина по п. 1, отличающаяся тем, что во второй композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор шимпанзе 63 типа включает нуклеотид, кодирующий preF, и/или нуклеотид, кодирующий а.к. 130-230 G.

6. Комбинированная вакцина по п. 1, отличающаяся тем, что во второй композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор шимпанзе 63 типа включает нуклеиновую кислоту, кодирующую по меньшей мере один из трех антигенных белков RSV.

7. Комбинированная вакцина по п. 6, отличающаяся тем, что нуклеиновая кислота кодирует по меньшей мере три антигенных белка RSV, причем нуклеиновая кислота содержит нуклеотидные последовательности, представленные в SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2 и SEQ ID NO: 3.

8. Комбинированная вакцина по п. 1, отличающаяся тем, что в первой композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор человека 26 типа представляет собой rAd26; и во второй композиции дефектный по репликации аденовирусный вектор шимпанзе 63 типа представляет собой rChAd63.

9. Способ индуцирования защитного иммунитета против RSV-инфекции посредством комбинированной вакцины по любому из пп. 1-8, включающий следующие стадии, на которых:

А) вводят субъекту первую композицию; и

B) вводят субъекту вторую композицию;

причем стадию А) и стадию В) проводят в любом порядке.

10. Способ по п. 9, отличающийся тем, что субъект представляет собой человека или мышь.

11. Способ по п. 10, отличающийся тем, что, когда субъектом является мышь, первую композицию вводят в дозе 1×1010 в.ч., а вторую композицию вводят в дозе 1×1010 в.ч.

12. Способ по п. 9, отличающийся тем, что стадию А) и стадию В) проводят путем внутримышечной инъекции.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 2023 года RU2794440C1

CN 104780937 A, 15.07.2015
ЧЕРЕНОВА Л.В
и др
Печь для непрерывного получения сернистого натрия 1921
  • Настюков А.М.
  • Настюков К.И.
SU1A1
Способ изготовления электрических сопротивлений посредством осаждения слоя проводника на поверхности изолятора 1921
  • Андреев Н.Н.
  • Ландсберг Г.С.
SU19A1
Говорящий кинематограф 1920
  • Коваленков В.И.
SU111A1
Способ обработки грубых шерстей на различных аппаратах для мериносовой шерсти 1920
  • Меньшиков В.Е.
SU113A1
BARNES E., Novel Adenovirus-Based Vaccines Induce Broad and Sustained T Cell Responses to HCV in Man, SCIENCE TRANSLATIONAL

RU 2 794 440 C1

Авторы

Хэ, Цзиньшэн

Ду, Линь

Фу, Юаньхуэй

Чжу, Вэйхуа

Пэн, Сянлэй

Гао, Бо

Чжэн, Яньпэн

Лю, Мэйцинь

Даты

2023-04-18Публикация

2021-08-11Подача