Изобретение относится к способам получения ферментных препаратов, а именно пируватдекарбоксилазы, и может быть использовано в микробиологической промышленности для получения пируватдекарбоксилазы, используемой при ферментативном определении уровня тиаминдифосфата в
крови или другой биологической жидкости человека и животных.
Цель изобретения - повышение стабильности препарата при хранении.
Способ осуществляют следующим образом.
Берут свежую пастообразную массу пивных дрожжей Saccharomyces carls- bergensis 7-9 регенераций и готовят суспензию для экстрагирования белко- вого препарата Приготовленную суспензию обрабатывают ультразвуком с частотой 20-22 кГц в течение 18- 25 мин и проводят фракционирование ацетоном и сульфатом аммония. Затем выполняют адсорбционную хроматографию на оксиапатите и ионообменную хроматографию на КМ-целлюлоэе, добиваясь очистки пируватдекарбокси- лазы до гомогенного состояния. Ста- билизацию белкового препарата осуществляют добавлением к гомогенной пируватдекарбоксилазе 2-3 Ы сульфата аммония и 0,01-0,05 М сульфата магния в 0,02-0,1 М Wa-фосфатном бу- фере, рН 6,8 с последующей лиофили- зацией суспензии при -35°С. Лиофшга- зированный порошок хранят в плотно закрытых тюбиках при -15 С„
Наилучший эффект достигается . при обработке суспензии дрожжей ультразвуком с частотой 20-22 кГц в течение 18-25 мин и добавлении к гомогенному препарату 2-3 М сульфата аммония и 0,01-0,05 М сульфата магни в 0,02-0,1 М Na-фосфатном буфере, рН 6,8. Уменьшение частоты ультразвука ниже 20 кГц или времени обработки суспензии мене.е 18 мин ведет к недостаточному разрушению клеток (неполный выход продукта), а увели- чение частоты ультразвука свыше 22 кГц или времени обработки более 25 мин - к частичному разрушению пируватдикарбоксилазы.
-
Снижение молярности Wa-фосфатно го буфера ниже 0,02 М и уменьшение концентрации сульфата аммония ниже 2 М и сульфата магния менее 0,01 М в исходном Na-фосфатном буфере ведет к снижению стабильности препарата Стабильность белкового препарата уменьшается в таком случае от 2 до 5 раз. Увеличение молярности Na-фосфатного буфера свыше 03 М,
-
а также концентрации сульфата аммо- ния более 3 М не приводит к повышению эффекта по сравнению с применяемыми молярностью буфера или концентрациями соли. Сульфат магния в концентрациях свыше 0,05 М способствует инактивации фермента.
Пример 1. Берут 5 кг свежих пивных дрожжей Saccharomyees carlsbe . JQ 2Q
25 я3 5
40
45
0
rgensis 7-9 регенераций. Свежую дрожжевую массу многократно промывают холодной водой и центрифугируют 15 мин при 5000g. Полученную пастообразную массу дрожжевых клеток используют для приготовления суспензии и экстрагирования белкового препарата. С этой целью 400 г дрожжевых клеток смешивают с 1750 мл водного раствора, содержащего 67 мл глицерина, 0,668 г ЭДТА, 13,2 г и 2,8 г (HH4)4S04.
Приготовленную суспензию интенсивно перемешивают в течение 10 мин. Интенсивно перемешанную суспензию охлаждают до -2 °С и обрабатывают ультразвуком при частоте 22 кГц в течение 20 мин, добиваясь полного разрушения клеток, способствующего максимальному выходу конечного продукта. Полученный экстракт центрифугируют в течение 30 мин при 4000g, а затем в течение ч при lOSOOOg. Осевшие после центрифугирования субклеточные фракции удаляют, а к над- осадочной жидкости при непрерыв- i ном перемешивании приливают охлажденный до -20°Г, ацетон до 37,5%-ного насыщения, не допуская нагревания раствора выше 0°С„ После выдерживания 15 мин при этой температуре суспензию центрифугируют в течение 5 мин при 4000g и осадок отбрасывают. На каждые 100 мл надосадочной жидкости повторно приливают по 10 мл ацетона и доводят температуру раствора до -2°СС Через 15 мин экстракт центрифугируют, а конечный осадок быстро суспендируют в 400 мл 0,02 М трис-HCl буфера. рН 7,3 с 1 мМ ЭДТА и 5 мМ цистеин-гвдрохлоридом и перемешивают „ После перемеривания в i течение 30 мин при 0°С однородный белковый раствор подвергают фракционированию сульфатом аммония, добавляя 108 г сухого измельченного (Ш14)80. Через 1 ч смесь центрифугируют, осадок отбрасывают, а на каждые 100 мл надосадочной жидкости вносят по 7 г сульфата аммония (44-53%-ное насыщение) в течение 20 мин при перемешивании Высоленный белок собирают центрифугированием. На данной стадии активность пируватдекарбоксилазы достигает 8,3 Е, однако присутствующие в препарате незначительные остаточные концентрации НАД Н-зависимых оксидаз приводят к самопроизвольному окислению НАД Н«.
Заключительную очистку проводят мтодами адсорбционной хроматографии на оксиапатите и ионного обмена на КМ-целлюлозе. Для достижения гомогенности 1 г грубой сулъфо-аммоний- ной пасты растворяют в 1,5 мл 0,005 М Na-фосфатного буфера, рН 6,8 с 2 мМ I мМ ЭДТА, 0,5 мМ тиаминдифосфатом и 5 мМ цистеин- гидрохлоридом и пропускают через колонку (3, см, 48 мл/ч) с сефа- дексом С-25, уравновешенную исходны буфером0 Значение рН и ионной силы уравновешивающего буфера подобраны экспериментально, при которых пиру- ватдекарбоксилаза не связывается оксиапатитом и обнаруживается в первых же фракциях элгоирующего раствора, тогда как сопутствующие примеси все еще эффективно удерживались на носителе. Обессоленный белковый элю ат смешивают с трехкратным объемом уплотненного осадка оксиапатита, уравновешенного этим же буфером, после якспозиции в течение 10 мин при 4°0 центрифугируют в течение 5 мин при lOOOOg. Адсорбент повторно промывают 3 мл буфера, надосадоч ную жидкость объединяю рН доводят 20 мМ ацетатом Na с 80 мМ Na- фосфа- том до 5,06 и наносят на колонку (2,1X20 см) с КМ-целлюлозой. Пиру- ватдекарбоксилаза не связывается катионообменником и элюируется Na- ацетатно-фосфатным буфером (20 и 80 мМ соответственно), рН 5,06 в пустом объеме колонки со скоростью 36 мл/ч. Объем фракций 2 мл После десорбции белка значение рН элюата увеличивается до 6,5, добавляя к фракциям по 1 мл 1 М фосфата На, рН 6,8. Результаты всех стадий очистки суммированы в табл 1 .
Стабилизацию пнруватдекарбокси- лазы осуществляют сульфатом аммония в присутствии ионов Mg . К белковому элюату, содержащему 3 мг белка в 1 мл, добавляют при перемешивании сульфат аммония и сульфат магния в 0,05 М Na-фосфатном буфере, рН 6,8 до конечной концентрации компонентов 2,7 и 0,02 М соответственно, после чего замороженную суспензию лиофилизируют на установке для сублимационной сушки при температуре -35 С и давлении 610 Па. Лиофилизированный порошок хранят в плотно закрытых тюбиках при -15°С. Все операции по выделению и очистке пи- руватдекарбоксилазы проводят при
+А°С.
Пример 2. Подготовку исходного материала, приготовление суспензии для экстрагирования белка с обработкой ее ультразвуком, проведение ацетонового и аммонийного фракционирований и заключительную очистку белкового препарата до гомогенного состояния проводят аналогич-. 5 но примеру 1. Стабилизацию пируват- декарбокоилаэы осуществляют сульфатом аммония в присутствии ионов К б.елковому элюату, содержащему 3 мг белка в 1 мл, добавляют при переме- 0 шивании сульфат аммония и сульфат
магния в 0,02 М Na-фосфатном буфере,- рН 6,8 до конечной концентрации компонентов 2 и 0,01 М соответственно, после чего замороженную суспензию 5 лиофилизируют на установке для сублимационной сушки при температуре -35°С и давлении , Лиофили- зированный порошок хранят в плотно закрытых тюбиках при -15°СС 0Влияние стабилизирующих агентов
с указанной конечной концентрацией (2 М сульфат аммония и 0,01 М сульфат магния в 0,02 М Na-фосфатном буфере, рН 6,8) на активность пиру- 5 ватдекарбоксилазы показано в табл. 2. Пример 3. Подготовку исходного материала, приготовление суспензии для экстрагирования белка с обработкой ее ультразвуком, проведение 0 ацетонового и аммонийного фракционирований и заключительную очистку белкового препарата до гомогенного состояния проводят аналогично примеру 1 .
Стабилизацию пируватдекзрбокси- 5 лазы осуществляют сульфатом аммония в присутствии ионов Mg t К белковому элюату, содержащему 3 мг белка в 1 мл, добавляют при перемешивании . сульфат аммония и сульфат магния в 0 0,1 М фосфатном буфере, рН 6,8 до конечной концентрации компонентов 3 и 0,05 М соответственно, после чего замороженную суспензию лиофилизируют на установке для сублимацион-1 ной сушки при температуре -35 С и давлении 6-10 Па. Лиофилизирован- ный порошок хранят в плотно закрытых тюбиках при -15°С. Влияние стабилизирующих агентов с указанной их
конечной концентрацией (3 М сульфат аммония и 0,05 М сульфат магния в 0,1 М Na-фосфатном буфере, рН 6,8) на активность пируватдекарбоксилазы показано в табл. 2.
Применение изобретения позволяет получить ферментный препарат с удельной активностью 64,8 Е и выходом 31% (см. табло 1), при этом весь процесс получения пируватдекарбоксилазы занимает 8 ч.
Стабильность высокоочищенного фермента при +4°С в водных или буферных растворах в отсутствии и в присутствии стабилизирующих агентов, блокирующих реакционноспособные участки молекулы белка или моделирующих ком- партиентализацию фермента в дрожжевой клетке, показана в табл. 2. Как видно из табл. 2, среди агентов, защищающих реакционноспособные участки молекулы пируватдекарбоксилазы (дитиотреитол, пируват, MgS04) наибольшим стабилизирующим эффектом обладают ионы Mg . В среде 2,7 М сульфата аммония с 0,02 М сульфатом магния в 0,05 М Na-фосфатном буфере, рН 6,8 белок остается активным в течение месяца. Лиофилизированный с вышеуказанными компонентами препа
рат стабилен при -15°С в течение года.
Формула изобретения Способ получения пируватдекарбоксилазы из пивных дрожжей, включающий гомогенизацию клеток, фракционирование гомогената ацетоном и сульфатом аммония с последующей очисткой на катионообменнике в 20 мМ ацетате натрия и 80 мМ фосфате натрия с рН 5,06, отличающийся тем, что, с целью повышения стабиль
ности препарата при хранении, гомогенизацию клеток проводят обработкой ультразвуком с частотой 20-22 кГц в течение 18-25 мин, фракционирование ацетоном - в интервале концентраций 37,5-43,2 об „/ Фракционирование сульфатом аммония - в интервале 44-53% насыщения, перед очисткой на катионообменнике осуществляют очистку на оксиапатите в 0,005 М натрийфосфат- ном буфере с рН 6,8, ионообменную хроматографию проводят на КМ-целлю- лозе и полученный раствор фермента лиофилизуют из раствора, содержащего 0,02-0,1 М натрийфосфатный бу- - фер с рН 6,8, 2-3 М сульфата аммония и 0,03-0,05 М сульфата магния.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Способ получения ферментного препарата для количественного определения тиаминдифосфата в биологических объектах | 1988 |
|
SU1620483A1 |
Способ получения @ - @ -галактозидазы | 1982 |
|
SU1082812A1 |
Способ получения конъюгированного энтеротоксина ЕSснеRIснIа coLI | 1989 |
|
SU1750690A1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АЛКОГОЛЬОКСИДАЗЫ ВЫСШИХ СПИРТОВ | 1991 |
|
RU2016898C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ РЕКОМБИНАНТНОГО ФАКТОРА НЕКРОЗА ОПУХОЛЕЙ АЛЬФА ЧЕЛОВЕКА | 1997 |
|
RU2144958C1 |
СПОСОБ ПРИГОТОВЛЕНИЯ ОЧИЩЕННОГО ПРЕПАРАТА БОТУЛИНИЧЕСКОГО ТОКСИНА ТИПА А | 2002 |
|
RU2230325C2 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ДРОЖЖЕВОЙ АЛКОГОЛЬОКСИДАЗЫ | 1990 |
|
RU2032743C1 |
Способ получения гидрогеназы | 1987 |
|
SU1477741A1 |
Способ получения комплексного ферментного препарата ацетокиназы и аденилаткиназы из биомассы Е.coLI | 1979 |
|
SU837066A1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ХОЛЕСТЕРОЛЭСТЕРАЗЫ, ТРИПСИНА, ДЕЗОКСИРИБОНУКЛЕАЗЫ И РИБОНУКЛЕАЗЫ ИЗ ПОДЖЕЛУДОЧНОЙ ЖЕЛЕЗЫ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА | 2005 |
|
RU2311455C2 |
Изобретение относится к способам получения ферментных препаратов, а именно пируватдекарбоксилазы, и может быть использовано в микробиологической промышленности для выделения пируватдекарбоксилазы, используемой в медицинской и сельскохозяйственной практике при ферментативном определении уровня тиаминдифосфата в крови или другой биологической жидкости. Цель изобретения - повышение стабильности препарата при хранении. Из отмытой биомассы готовят суспензию для экстрагирования белкового препарата, которую обрабатывают ультразвуком с частотой 20 - 22 кГц в течение 18 - 25 мин с последующим фракционированием ацетоном и сульфатом аммония. Заключительную очистку выполняют адсорбционной хроматографией на оксиапатите и ионообменной хроматографией на КМ-целлюлозе. Стабилизацию белкового препарата осуществляют внесением к гомогенной пируватдекарбоксилазе 2 - 3 М сульфата аммония и 0,01 -0,05 М сульфата магния в @ 0,02 - 0,1 М NA-фосфатном буфере, PH 6, 8 с лиофилизацией суспензии при -35°С. Лиофилизированный порошок хранят в плотно закрытых тюбиках при -15°С. Выход высокоочищенной пируватдекарбоксилазы составляет 31% с удельной активностью 64,8 Е на 1 мг белка. 2 табл.
32500 12025 3170 9820
9547920
223 69
5300 3820
Таблица 1
0,37 3,1
8,3
23,8 64,8
1,0 8,4
22,5
64,3 175,1
100 82
65
44 31
з против М Na-цитратный буфер, рН 6,0 М Na-фосфатный буфер, рН 6,8 + 25%-ная сахароза + 25%-ный глидерин + 5 мМ дитяотреитол + 4 мМ пируват натрия + 0,02 М сульфат магния 2,7 М сульфат аммония
+ 2,7 М сульфат аммония с 0,02 М сульфатом магния
+ 2,7 М сульфат аммония с
0,02 М сульфатом магния (лиофилизированный препарат )
М Na-фосфатный буфер, рН 6,8 + 2,0 М сульфат аммония с 0,01 М сульфатом магния
Na-фосфатный буфер, рН 6,8 + 3,0 М сульфат аммония с 0,05 М сульфатом магния
40
3,7
23,2 6., 1
Ui
-еN5 U1 1л
100
100
100
100
97,0 61,9 27,6 10,9 3,4
100
100
100
100
10098,9 100100
100
10010094,885,4 56,7 25,3 8,8
10098,791,9 58,6 27,0 10,1
97,1
2,6
3,2
Allrich J | |||
Способ гальванического снятия позолоты с серебряных изделий без заметного изменения их формы | 1923 |
|
SU12A1 |
Способ использования делительного аппарата ровничных (чесальных) машин, предназначенных для мериносовой шерсти, с целью переработки на них грубых шерстей | 1921 |
|
SU18A1 |
Шкив для канатной передачи | 1920 |
|
SU109A1 |
, Konig St., Hubner G.V Schillenberger A | |||
Способ восстановления хромовой кислоты, в частности для получения хромовых квасцов | 1921 |
|
SU7A1 |
Устройство для усиления микрофонного тока с применением самоиндукции | 1920 |
|
SU42A1 |
Питательное приспособление к трепальной машине для лубовых растений | 1923 |
|
SU343A1 |
Авторы
Даты
1990-02-07—Публикация
1988-01-12—Подача