Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к получению эмбриоидов и регенерантов в культуре растительной ткани.
Объектами исследования служили культуры тканей табака (Nicotiana tabacunO и мака прицветникового (Pa- paver bractearum Lindl).
Культура тканей табака широко используется как модельный объект в различных направлениях селекционно- генетической работы in vitro, а также как продуцент ряда ценных веществ, в частности убихинона. Культура тканей мака прицветникового представляет собой перспективный источник мор- финовых алкалоидов. В последнее время все большее внимание уделяется разработке способов выращивания культур
тканей - продуцентов ценных вторичных метаболитов, сохраняющих способность к морфогенезу. Так, в существующих ныне штаммах мака прицветникового спектр синтезируемых алкалоидов изменен в сторону бензофенантридиновых алкалоидов, а морфиновые, в частности тебаин, появляются лишь в эмбриоидах и регенерантах. Поэтому надежный и эффективный способ получения регенерантов важен для обоих видов.
Цель изобретения - ускорение эмбриогенеза и увеличение количества эмбриогенных зон в культивируемой ткани.
Способ состоит в том, что на культивируемые ткани растений воздействуют парафторфенилаланином, добавляя его в питательную среду в концентсл
4 4ъ
СО
00
315
рации 10-100 мг/л. Это соединение является известным. Парафторфенилаланнн используется как селективный фактор для поддержания пролиферации гаплоидных клеток в культурах тканей растений. Как стимулятор эмбриогенеза ранее он не применялся. Ткани предварительно выращивают в течение нескольких ростовых циклов на обычной пита- тельной среде с добавлением парафтор- фенилаланина до их перевода на эмб- риогенную среду, либо сразу переводят на эмбриогенную среду, содержащую парафторфенилаланин. В течение 1-3 ростовых циклов отбирают эмбриднды и регенеранты, укореняют их и высаживают в грунт или культивируют далее in vitro.
Пример 1. Культуру тканей табака получают и выращивают на модифицированной питательной среде Мура- сиге-Скуга, которой присвоен индекс МС-2. Среду готовят так, чтобы в 1 л ее содержалось, мг:
Среду разливают в сахарные пробирки по 6 мл в каждую, автоклавируют 15 мин при 1 атм. После застывания среды ткань табака рассаживают по 0,3-0,4 г на пробирку. Через 30 сут ткань пересаживают на свежую среду. После культивирования в течение 7 мес. ткань обоих вариантов переводят на эмбриогенную среду Т-3 и выставляют на свет (12-часовой световой день, лампы дневного освещения, освещенность 1800-2000 лк, температура 26 ±1°С).
Среду Т-3 готовят так, чтобы в 1 л ее содержалось, мг:
c
п 5
0
5
0
KNO,
CaClt MgSO«- КНгР04
нэвоэ
MnS04 4H20 СоС12-6Н40 CuS04 SH-,0 ZnSO.
2H,0
7HaO
t -. 2Н„0 KJ
FeS04-7H20 Na2EDTA Тиамин Мезоинозит Са-Пантотенат Гидролизат казеина Индолилуксусная кислота Кинетин Сахароза Агар-агар Дистиллированная вода
550 633,3 146,6 123,3 56,6 6,2 22,3 0,025 0,025 8,6 0,25 0,83 27,8 . 37,3 0,4 80 5 1000
0,2
1,5
50000
8000
До 1 л
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Способ получения микрорастений лекарственного растения Stephania glabra (Roxb.) Miers | 2021 |
|
RU2757318C1 |
Способ получения растений-регенерантов Brassica oleracea L. in vitro | 2021 |
|
RU2759735C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ТАКСОЛА И ТАКСАНОВ ИЗ ЭМБРИОНАЛЬНЫХ КУЛЬТУР РАСТЕНИЙ РОДА TAXUS | 1994 |
|
RU2120740C1 |
Способ регенерации растений клевера IN VIтRо | 1980 |
|
SU888861A1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ СОЛЕУСТОЙЧИВЫХ РАСТЕНИЙ-РЕГЕНЕРАНТОВ ЛЮЦЕРНЫ | 1991 |
|
RU2019960C1 |
Способ регенерации растений люцерны IN VIтRо | 1990 |
|
SU1706479A1 |
СПОСОБ РЕГЕНЕРАЦИИ РАСТЕНИЙ СОРГО В КУЛЬТУРЕ IN VITRO | 1999 |
|
RU2175189C2 |
СПОСОБ РЕГЕНЕРАЦИИ ХЛОПЧАТНИКА ИЗ СОМАТИЧЕСКИХ КЛЕТОК (ВАРИАНТЫ) | 1988 |
|
RU2128428C1 |
Способ получения растений - регенерантов пшеницы из пыльцы в культуре пыльников | 1988 |
|
SU1650051A1 |
Способ микроклонального размножения ели обыкновенной ин витро | 1990 |
|
SU1761057A1 |
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к методам культивирования растительной ткани и может быть использовано для нужд клеточной и генетической инженерии. Целью изобретения является ускорение эмбриогенеза и увеличение количества эмбриогенных морфогенетических зон в культивируемой ткани. Способ состоит в том, что на культивируемые ткани растений воздействуют парафторфениланином, добавляя его в питательную среду в концентрации 10-100 мг/л, применяя тем самым данное соединение в качестве стимулятора эмбриогенеза. Способ позволяет увеличить выход эмбриогенных морфогенетических зон на культивируемой ткани, а также получать большое количество эмбриондов и регенерантов уже в первом пассаже. 2 табл.
Гидролизат казеина оШафтилуксус- ная кислота Индолилук сусна кислота Кинетин Сахароза Агар-агар Дистиллированная вода
В среду добавляют Дополнительно 60-100 мл/л парафторфенилаланина. В качестве контроля выращивают ткань на питательной среде приведенного состава без добавления парафторфенил- рланина.
5
0
5
Результаты анализа трех последовательных ростовых циклов на эмбрио- генной среде представлены в табл. 1. После выращивания тканей на среде, содержащей 100 мг/л парафторфенилаланина, предлагаемый способ превосходит известный по частоте регенерации (отношение субкультур с эмбриоидами к общему числу субкультур) в 1-м, 2-м и 3-м пассажах соответственно в 3,5; 3,3 и 2,7 раза. В среднем за три пассажа предлагаемый способ повышает частоту регенерации более чем в 3 раза по сравнению с контролем. Количество эмбриоидов и регенерантов на отдельную субкультуру опытного варианта намного превышало контрольное.
При более низких концентрациях (80 и 60 мг/л) парафторфенилаланин подобного эффекта не обнаружил.
Пример 2. Для выращивания культуры тканей мака прицветникового готовят модифицированную питательную среду Мурасиге-Скуга (индекс среды - PW так, чтобы в 1 л ее содержалось, мг/л:
NH4NO,1650
KN031900
СаС17440
MgS04-7H,0370
КНаР04170
Н3В056,2
Мп504-4Н2022,3
СоС17 6Н200,025
CuS04 ,025
ZnSO« ,6
Na-гМоО, 2Н700,25
KJ0,83
FeS04-7H2027,8
Na-jEDTA - ,3
ТиаминО, 1
Мезоинозит100
Пиридоксин0,5
Никотиновая кислота0,5
Гидролизат казеина500
Глицин2 2,4-Дихлорфеноксиуксусная кислота1
Кинетин1
Сахароза30000
Анар-агар8000 Дистиллированная
водаДо 1 л
Среду разливают в пробирки по 5 мл каждую. Стерилизуют 15 мин при атм. После застывания среды ткань ака рассаживают по 0,3-0,5 г на проирку и культивируют, пересаживая кажые 15 сут на свежую среду.
Затем готовят эмбриогенную питаельную среду как описано, исключая з ее состава 2,4-дихлорфеноксиуксус- ую кислоту и кинетин и добавляя пара0
0
фторфенилаланин в концентрации 10 - 60 мг/л. Ткань мака со средним темпом роста в возрасте 15 сут переносят на эмбриогенную среду и выставляют на свет (12-часовой световой день, лампы дневного освешения, освещенность 1800-2000 лк, температура 26±1°С). В качестве контроля выращивают ткань на указанной эмбриогенной среде без добавления парафторфенилаланина. Результаты анализа двух последующих ростовых циклов представлены в табл.2. Как видно из приведенных данных,
5 частота регенерации в опыте (при концентрации парафторфенилаланина 10 мг/л) в 1-м и 2-м пассажах была соответственно в 4,6 и 1,5 раза выше, чем в контроле. Предлагаемым способом удалось получить в 1-м пассаже в 4,9 раза больше, а во 2-м - в 2,4 раза больше эмбриоидов в расчете на каждую субкультуру по сравнению с контролем. В среднем за два пассажа культивирования предлагаемый способ позволяет увеличить выход эмбриоидов на каждую субкультуру более чем в 3 раза по сравнению с контролем. При концентрации парафторфенилаланина 30 мг/л незначительный эффект стимуляции регенерации отмечен в первом пассаже. При более высокой концентрации (60 мг/л) парафторфенилаланин подобного эффек- 1 та не обнаружил.
Таким образом, предлагаемый способ
5 позволяет интенсифицировать процессы регенерации в культуре тканей табака и мака более чем в 3-4 раза. Оптимальными концентрациями парафторфенилаланина в указанных способах стимуляции регенерации являются: в культуре тканей табака 100 мг/л, в культуре тканей мака прицветникового 10 мг/л.
5
0
0
Формула изобретения
Применение парафторфенилаланина в качестве стимулятора эмбриогенеза в культуре растительных тканей.
Коэффициент эмбриогенеза рассчитывали как отношение учтенных эмбрио- идов к общему числу субкультур данного варианта.
Составитель В.Демкин Редактор Н.Яцола Техред М.Дидык Корректор А.Обручар
Заказ 470
Тираж 487
ВНИИПИ Государственного комитета по изобретениям и открытиям при ГКНТ СССР 113035, Москва, Ж-35, Раушская наб., д. 4/5
Производственно-издательский комбинат Патент, г.Ужгород, ул. Гагарина,101
Таблица 1
Подписное
Сидоров В.А., Пивень Н.М., Глеба Ю.Ю., Сытник К.М | |||
Соматическая гибридизация пасленовых | |||
- Киев: Наукова думка, 1985, с | |||
Способ получения нерастворимых лаков основных красителей в субстанции и на волокнах | 1923 |
|
SU132A1 |
Авторы
Даты
1990-02-23—Публикация
1988-04-12—Подача