Способ определения ротавирусных антигенов Советский патент 1991 года по МПК C12N7/00 G01N33/53 

Описание патента на изобретение SU1645298A1

Изобретение относится к вирусологии и может найти применение при диагностике острых вирусных инфекций.

Цель изобретения - упрощение мето- да, повыиение чувствительности.

Исследуемый материал наносят на мембранные фильтры отечественного производства, характеризующиеся равномерным распределением гидрофобных участков, обеспечивающие прочную фиксацию антигена за короткое время путем физической адсорбции и исключающие колебания в количестве связывающегося белка на разных участках носителя и потерю их на последующих этапах анализа Проводят инкубацию с

бычьим сывороточным альбумином и выполняют разведения всех реагентов на калий-калиевом фосфатном буферном растворе с бычьим сывороточным альбумином, промывают фильтры на всех этапах анализа этим же буферным раствором с включением детергента - твин 20, что позволяет уменьшить неспецифическое связывание о Используют антипероксидазные антитела в комплексе с пероксидазой на стадии сформировавшегося комплекса антиген-антитело-антивидовое антитело, приводящего к связыванию фермента через антитела к ферменту, что повышает чувствительность способа Осуществляют анализ по принципу погружения носителя в растворыо

Основанием для выбора твердого носителя, состава буферного раствора для разведения реагентов и отмывки носителя, условий проведения этапов анализа, длительности стадии инкубации служат экспериментальные исследования, результаты которых представлены в табл 1 „

Как видно из представленных в таблице данных, мембранные фильтры Дес- нянского производства не уступают по сорбционной способности фильтрам за- рубежногр производства

Введение ферментной метки типа антипероксидазных антител в комплексе с пероксидазой позволяет увеличить число положительных находок в исследуемом материале в 1,5 раза Ротавирусный антиген обнаруживают с одинаковой частотой при инкубации в течение 18 ч при 4°С и в условиях термостата - в течение 1-2 ч

Анализ приведенных данных свидетельствует такке о целесообразности использования при осуществлении анализа 0,15-0,2М калий-калиевого фосфатного буфера рН 7,5, так как применение этого буфера позволяет обнаружить наибольшее число положительных проб

Существенное значение оказывает и введение стадии инкубации твердого носителя в буферном растворе с 1,5- 2,0% бычьего сывороточного альбумина, повышая процент обнаружения рота- вирусных антигенов в сравнении с данными , когда эта стадия не вводится

В качестве исследуемого материала берут фекалии больных острыми кишечными инфекциями в виде фильтратов 10%

5

0

5

0

5

0

5

0

5

суспензии исходной пробы или нефильтрованных суспензий, собранных не позднее пятого дня от начала заболевания и приготовленных по общепринятой методике

Способ осуществляется следующим образом и состоит из двух этапов: подготовительного и основного о

Подготовительный этап включает: определение размера фильтра для проведения исследования, разметку и шифровку; размножение вирусов на культуре клеток с целью получения антигенов (положительный и отрицательный контроль) ; приготовление калий-калиевого фосфатного буферного раствора и трис- НС1; приготовление необходимых разведений реагентов, используемых в анализе

В работу берутся мембранный фильтр № 1 - № 2 с размерами пор 0,2-0,6/Мтп Деснянского производства диаметром 9,5 см при исследовании большого числа образцов одновременно (более 400) или часть его, либо число проб невелико „ На глянцевой стороне фильтра простым карандашом обозначают номер и ставят метку в виде точки (или черточки) , указывающей порядок нанесения исследуемых проб

На матовой поверхности фильтра шляпкой гвоздя 50 мм отмечают кружочки-метки на расстоянии 1 мм одна от другой, располагая метки по прямой линии „ В каждый,из них тонко оттянутой пастеровской пипеткой или пипеткой- дозатором в виде нерастекаюцейся капли вносят 1-2 мкл исследуемого материала Ноыер образца записывают в рабочем журнале в такой последовательности, как вносят на фильтр

На каждый фильтр наносят положительный и отрицательный контроля , Место нанесения определяет исследователь В качестве контролен используют вируссодержащую культуральную жидкость, освобожденную от. клеточного детрита центрифугированием при 2000 об/мин в течение 20 мин. Заражающая доза вируса, выбор культуры клеток, состав ростовой и поддерживающей среды, условия накопления вируса соответствуют общепринятым для культивируемого вируса. Для получения ротави- русного антигена (положительный контроль) ротавирусом SA-II инфицируют перевиваемые линии клеток почек зеле- ной мартышки, а для получения полиовирусного антигена (отрицательный контроль) вакцинным штампом вируса полиомиелита типа ГЦ заражают Нер-2

Положительный и отрицательный кон- троли в опыт берут в двух разведениях цельный и 1:10„

Калий-калиевый фосфатный буферным .раствор готовят 0,15-Q2M pH 7,5 с использованием 2М на его основе готовят раствор с 1,5-2,0% бычьим сывороточным альбумином для приготовления разведений реагентов и с 0,05% твин-20 для промывки фильтра после каждого этапа анализа.

Разведения иммуной сыворотки, диагностических антител против глобулинов кролика, антител антипер окси- дазы в комплексе с пероксидазой выполняют согласно наставлениям,

Для приготовления раствора субстрата готовят 0,5И трис-HCl рН 7,5а Трис-HCl доводят до кипения, вносят субстрат - диаминобензичин из расчета 0,4 мг/iui и после охлаждения добавляют 5 мкл/мл 3%-ной перекиси водорода

Способ определения ротавирусных антигенов осуществляют следующим образом

На мембранные фильтры №1 - №2 с размером пор 0, 2-G,6ium ДеснянсУого производства наносят по 1-2 мкл исслдуемого материала и два контроля (положительный и отрицательный)t Выдерживают при комнатной температуре до высушивания и погружают в буферный раствор с 1,5-2,0% бычьего сывороточного альбумина, Инкубируют при 37°С в течение 1 ч, сливают буфер и замораживают его для повторного использования„

Фильтр погружают в раствор кроличьей иммуной сыворотки в отношении ротавируса SA-II в рабочем разведении. Инкубируют при 37°С в течение 1 ч. Имунную сыворотку сливают и замораживают, а фильтр трижды отмывают в буферном растворе с 0,05% твин-20„

Затем фильтр погружают в раствор диагностических антител против глуби линов кролика в раОочем разведении. Выдерживают при 37°С в течение 1 ч, сыворотку сливают и замораживают, а фильтр трижды отмывают по 4 мин в буфере с 0,05% твин-20,

Фильтр погружают в раствор анти- пероксидазных антител в комплексе с пероксидазой в рабочем разведении.

45298

637°С

в течение 1 ч,

10

15

20

25

30

35

40

45

50

55

Инкубируют при сливают раствор комплекса и замораживают . Фильтр трижды отмывают в буферном растворе с 0,05% твин-20 и погружают в свежеприготовленный раствор диаминобензидина„

Через 3-5 мин после светло-коричневого окрашивания положительного контроля иммунохимическую реакцию останавливают, погружая фильтр в дистиллированную воду „

Учет проводят визуально после подсушивания на фильтровальной бумаге Предлагаемым способом обследуют 164 больных острыми кишечными инфекциями в период спорадической заболеваемости и 66 больных из очагов о

Сравнительные данные определения ротавирусных антигенов в инфекционном материале от больных предлагаемым и известным способом представлены в табло 2«,

Как видно из представленных данных, при исследовании инфекционного материала предлагаемым способом ротавирус- ный антиген определяют в 1,5 раза чаце при обследовании спорадических больных и в 1,1 раза в период групповых заболевании, сокращая время анализа в 4,4-6 раз (разница показателей статистически достоверна)„

-, Техника постановки анализа позволяет повторно (до 5 раз) использовать дорогостояще реагенты, что значительно снимает экономические затраты (табл„ 3) „

Уормула изобретения

Способ определения ротавирусных антигенов, включаюций взаимодействие антител с иммобилизованным на носителе антигеном с использованием ферментной метки и буферного раствора с последующей оценкой результатов, отличающийся тем, что, с целью упрощения метода и повышения чувствительности, взаимодействие осуществляют путем погружения носителя в растворы реагентов, при этом в качестве носителя используют мембранный фильтр, в качестве ферментной метки используют антипероксидазные анти- тела в комплексе с пероксидазой, в качестве буфера используют 0,15-О,2М калий-калиевый фосфатный буфер с 1,5- 2,0% бычьего сывороточного альбумина.

зm

ь

им

он47

47 47

47 47 47

8

5 10

17 17

47 47

12 17

8 8

6 6

5 5

О О

8 8

7 8

5 5

О О

1645298

10

Продолжение табл.1

JL

Похожие патенты SU1645298A1

название год авторы номер документа
Способ анализа антигенов 1986
  • Хаустов Владимир Иванович
  • Шекоян Лилита Арменаковна
  • Дроздов Сергей Григорьевич
  • Королев Михаил Борисович
SU1323960A1
ДИАГНОСТИЧЕСКАЯ ТЕСТ-СИСТЕМА ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ ВИРУСА ГЕПАТИТА А 1992
  • Василенко Н.Ф.
  • Ефременко В.И.
  • Гнутов И.Н.
RU2065164C1
МЕМБРАНА ДЛЯ РАЗДЕЛЕНИЯ КОМПОНЕНТОВ ИММУНОЛОГИЧЕСКОЙ РЕАКЦИИ 1992
  • Осипов А.П.
  • Горовиц Б.М.
  • Горовиц Е.Л.
  • Дзантиев Б.Б.
RU2038600C1
КОМПОЗИТНЫЙ ЧУМНОЙ АНТИГЕННЫЙ F1-ДИАГНОСТИКУМ ДЛЯ ИНДИКАЦИИ СПЕЦИФИЧЕСКИХ АНТИТЕЛ 2015
  • Бойко Андрей Виталиевич
  • Киреев Михаил Николаевич
  • Осина Наталья Александровна
  • Куклев Василий Евгеньевич
RU2582941C1
Способ определения теофиллина в сыворотке крови 1987
  • Василов Раиф Гаянович
  • Данилова Надежда Петровна
  • Бекман Наталья Игоревна
SU1573427A1
Способ иммуноанализа биологически активных веществ 1990
  • Осипов Александр Павлович
  • Горовиц Борис Маркович
  • Горовиц Елена Львовна
  • Духович Алексей Феликсович
  • Дзантиев Борис Борисович
  • Изумрудов Владимир Алексеевич
SU1801214A3
ТЕСТ-СИСТЕМА ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИТЕЛ К HBs-АНТИГЕНУ И БЛОКАТОР В ТЕСТ-СИСТЕМЕ 2001
  • Николаева А.М.
  • Казьянин А.В.
  • Вязникова Т.В.
  • Борисова В.Н.
  • Буданов М.В.
  • Яковлева И.М.
  • Мельников В.А.
RU2206095C1
ИММУНОФЕРМЕНТНАЯ ТЕСТ-СИСТЕМА ДЛЯ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ МИКОПОЛИСАХАРИДОВ И ИХ ПРОИЗВОДНЫХ В ПЫЛИ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ 2013
  • Ахапкина Ирина Гавриловна
  • Желтикова-Вострокнутова Татьяна Михайловна
  • Антропова Анна Борисовна
  • Егорова Ольга Валерьевна
  • Калинкина Марина Алексеевна
  • Яшунский Дмитрий Владимирович
  • Цветков Юрий Евгеньевич
  • Карелин Александр Александрович
  • Нифантьев Николай Эдуардович
  • Михайлова Наталья Александровна
RU2543323C2
СПОСОБ ПРИЖИЗНЕННОЙ ДИАГНОСТИКИ ЛАРВАЛЬНОГО ГИДАТИДОЗА (ЭХИНОКОККОЗА) ОВЕЦ 2006
  • Одоевская Ирина Михайловна
  • Плиева Айшет Магомедовна
  • Успенский Александр Витальевич
  • Бенедиктов Игорь Иванович
  • Асеев Виктор Васильевич
  • Курносова Ольга Петровна
RU2337647C2
Способ выявления заражения людей и животных SARS CoV2 и диагностический набор для осуществления способа 2021
  • Бобикова Анна Сергеевна
  • Афонюшкин Василий Николаевич
  • Филипенко Максим Леонидович
  • Миронова Татьяна Евгеньевна
  • Макаров Дмитрий Александрович
  • Сигарева Наталия Александровна
RU2776295C1

Реферат патента 1991 года Способ определения ротавирусных антигенов

Изобретение относится к вирусологии и мохет найти применение при диагностике острых вирусных инфекций, Целью изобретения является упрощение метода, повыпение чувствительности„ Для этого исследуемый материал наносят на мембранный фильтр с размером пор 0,2-0,6 мкм, инкубируют в буферном растворе с бычьим сывороточньм альбумином и на этом растворе выполняют разведения реагентов, этапы исследования осуцествляют путем погружения фильтров в соответствующие растворы, в качестве ферментной метки применяют антипероксидазные антитела в комплексе с пероксидазон, учет реакции производится визуально через 4-5 ч о Преимуществом предлагаемого способа является упрощение, повышение результативности в 1,1-1,5 раза, сокращение сроков исследования в 4,4-6 раз, снижение затрат на реагенты в 28 раз. 3 табл. g tiafr 1В 2 СЛ ьэ СЈ х

Формула изобретения SU 1 645 298 A1

Условия проведения анализа

инфекционного материала от больных

В ТоЧ С

положительнымрезультатом

2,0% 17 8 8 5 О

3,0% 17 8 8 5 О

Не вводили 47 10 8 6 5.0 Тип ферментной метки

Антитела диагностические против глобулинов кроликов, меченные пероксидазой47 11 8 4 5 О

Антитела антиперок- сидазные в комплексе с пероксидаэой 47 17 8 8 5 О

-Таблица2

Контингент обследованных Обнаружение ротавирусных антигенов в пробах

через, ч

( 4-5у 22-24

Предлагаемый способ Известный способ

Всего обсл„|В ТоЧ. с поло- Всего обсл. В т.ч. с I жительным рез.положите|льным рез.

Спорадические больные164 38,4 + 3,8162 2,7,2+3,5

Больные иэ очагов66 55+6 . 71 48+6

Таблица 3

Расчет-обоснование экономической эффективности предлагаемого способа определения ротавирусных антигенов

РеагентКоличество реагентовСнижение затнеобходимое ис-рат в (раз)

следования 100 об-при использоразцов, мя вании реагенспособт

..- т-Один I МногоПредлагве- Жзвест-раз I кратно мый | ный(5)

Иммуилая сыворотка 5 28 5,6 28 Диагностические антитела против глубудинов кролика 5 28 5,6 28 Субстрат5 28 5,6

Исследовано образцов

серий полиовирус- ного антигена (отрицательный контроль)

бс.ч.,

В Г„Чо С

положительнымрезультатом

абс.Чо

в т.ч. с положительным результатом

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 1991 года SU1645298A1

Печь для непрерывного получения сернистого натрия 1921
  • Настюков А.М.
  • Настюков К.И.
SU1A1
и др
Иммунофермен- тньш анализ в диагностике;ротавирус- ных гастроэнтеритов людей Вопросы вирусологии, 1986, К 6, с 743-746
Schumacher Bernd fiir diagnostik von liotavirus infektivtien: Vergleich von direktera und inderekten ELISA zuci Antigenriachneis, 1986, K 21, 1737- 1740
v Z
Klin
Med
Пневматический водоподъемный аппарат-двигатель 1917
  • Кочубей М.П.
SU1986A1

SU 1 645 298 A1

Авторы

Носатенко Алла Ивановна

Грунтовская Лариса Григорьевна

Киселев Ростислав Ильич

Панченко Людмила Александровна

Коробкова Ирина Валентиновна

Палант Татьяна Викторовна

Рыбалко Светлана Леонтьевна

Иванская Неля Валеевна

Шекоян Лилита Арменаковна

Казанцева Валентина Андреевна

Гиневская Вера Аркадьевна

Даты

1991-04-30Публикация

1989-03-07Подача