Изобретение относится к медицине, а именно к методам определения метаболитов с помощью ферментных электродов.
Целью изобретения является повышение чувствительности способа.
Способ осуществляют следующим образом.
Культуру Aerococcus vlrldans (коллекция ВНИИА, 1988, 167 VR) выращивают на твердой питательной среде, содержащей 50 - 100-мкг DL-лактата лития, 30 - 50 мкг грамурина и 2 - 5 мкг этония на 1 мл среды при 32 - в течение 36 - 48 ч. Выросший
налет смывают 0,01 М фосфатным буфером (рН 7,2 - 7,4), отмывают дважды 0,01 М фосфатным буфером (рН 7,2 - 7.4) с центрифугированием при 3000 об/мин.
На мембрану перевернутого сенсорной частью вверх электрода Кларка наносят 50 мкл смеси, состоящей из 2,7мл 0,1 М фосфатного буфера (рН 6,6 - 6,8), 1,5 мл 17,5%-ного бычьего сывороточного альбумина и 100 мг влажного веса отлитой био- аассы клеток. Смесь равномерно распределяют по поверхности мембраны.
ON
СП
ел о
00 00
Добавляют 10 мкл 10%-ного глутарово- го альдегида с быстрым распределением его по поверхности мембраны стеклянной палочкой.
Электрод инкубируют в перевернутом состоянии при +4°С в течение 8 ч, после чего ферментный слой накрывают диализной мембраной. Электрод помещают сенсорной частью в 0,01 М фосфатный буфер (рН 7,2 - 7,4).
Для определения концентрации молочной кислоты в биологическом образце в микроячейку вносят 20 мкл смеси, состоящей из 10 мкл биологического образца и 10 мкл 0,1 М раствора DL- а-аланина.
Сенсорную часть электрода вводят в Микроячейку и производят регистрацию скорости поглощения Оа, выражаемой в нМ Поглощенного Оа в 1 мин. Производят рас- ет концентрации молочной кислоты в об- разце согласно калибровочной кривой Зависимости скорости поглощения 62 при Ькислении DL-лактата лития в определенных концентрациях.
В табл. 1 приведены данные по скорости окисления D и L-стереоизомеров молочной Кислоты в присутствии 0,1 М DL-a-аланина и без него.
На чертеже приведен пример калибровочного графика. Интервал линейности составляет 0,5 -5,0 мкМ лактата.
В табл.2 показано стимулирующее действие предельных и оптимальных концентраций DL- а -аланина на окисление L-лактата.
П р и м е р 1. Культуру Aerococcus ylridans 167 VR (коллекция ВНИИА, Nfc 1688) выращивают на твердой питательной среде, содержащей 50 мкг/мл DL-лактата лития, 30 мкг/мл грамурина и 2 мкг/м этония, при 32°С в течение 36 ч. Выросший налет смы- $ают 0,01 М фосфатным буфером (рН 7,2 - 7,4), отмывают дважды 0,01 М фосфатным буфером (рН 7,2 - 7,4) центрифугированием при 3000 об/мин в течение 15 мин.
На мембрану перевернутого сенсорной Частью вверх электрода наносят 50 мкл смеси, состоящей из 2,7 мл 0,1 М фосфатного буфера (рН 6,8) и 1,5мл 17,5%-ного бычьего сывороточного альбумина и 100 мг влажного веса отмытой биомассы клеток.
Смесь равномерно распределяют по поверхности мембраны стеклянной палочкой.
Добавляют 10 мкл 10%-ного глутарово- го альдегида с быстрым распределением его по поверхности мембраны стеклянной палочкой.
Электрод инкубируют в перевернутом состоянии при +4°С в течение 8 ч, после чего
ферментный слой накрывают диализной мембраной. Электрод помещают сенсорной частью в 0,01 М фосфатный буфер (рН 7,2 - 7,4).
Для определения концентрации молочной кислоты в биологическом образце в микроячейку вносят 20 мкл смеси, состоящей из 10 мкл биологического образца и 10 мкл 0,05 М раствора DL- «-аланина.
Сенсорную часть электрода Кларка вводят в микроячейку и производят регистрацию скорости поглощенияЮа, выраженной в нМ поглощенного 02 в 1 мин. Производят расчет концентрации молочной кислоты в
образце согласно калибровочной кривой зависимости поглощения 02 при окислении DL-лактата.
П р и м е р 2. Культуру Aerococcus
virfdans 167 VR (коллекция ВНИИА, № 1688) выращивают на твердой питательной среде, содержащей 50 мкг/мл DL-лактата лития, 30 мкг/мл грамурина и 2 мкг/мл этония , при 32°С течение 36 ч. Выросший налет
смывают 0,01 М фосфатным буфером (рН 7,2 - 7,4), отмывают дважды 0,01 М фосфатным буфером (рН 7,2 - 7,4) с центрифугированием при 3000 об/мин в течение 15 мин.
На мембрану перевернутого сенсорной
частью вверх электрода наносят 5 мкл смеси, состоящей из 2,7 мл 0,1 М фосфатного буфера (рН 6,8) и 1,5 мл 17,5%-ного бычьего сывороточного альбумина и 160 мл влажного веса отмытой биомассы клеток
Aerococcus vlridans 167 VR (коллекция ВНИИА, Ns 1688). Смесь равномерно распределяют по поверхности мембраны стеклянной палочкой.
Добавляют 1 мкл 10%-ного глутарового
альдегида с быстрым распределением его по поверхности .мембраны стеклянной палочкой.
Электрод инкубируют в перевернутом состоянии при +4°С в течение 8 ч, после чего
ферментный слой накрывают диализной мембраной. Электрод помещают сенсорной частью в 0,01 М фосфатный буфер (рН 7,2 - 7,4).
Для определения концентрации молочной кислоты в биологическом образце в микроячейку вносят 20 мкл смеси, состоящей из 1,0 мкл биологического образца и 10 мкл 0,1 М раствора DL- а-аланина. Сенсорную часть электрода Кларка вводят в микроячейку и производят регистрацию скорости поглощения 02, выражаемой в нМ поглощенного 02 в 1 мин. Производят расчет концентрации молочной кислоты в образце согласно калибровочной кривой
зависимости скорости поглощения 02 при окислении DL-лактата.
П р и м е р 3. Культуру Aerococcus vlridans 167 VR (коллекция ВНИИА, № 1688) выращивают на твердой питательной среде, содержащей 50 мкг/мл DL-лактата лития, 30 мкг/мл грамурина и 2 мкг/мл этония при 32°С в течение 36 ч. Выросший налет смывают 0,01 М фосфатным буфером (рН 7,2 - 7,4), отмывают дважды 0,01 М фосфатным буфером (рН - 7,4) с центрифугированием при 3000 рб/мин в течение 15 мин.
На мембрану перевернутого сенсорной частью вверх электрода наносят 5 мкя смеси, состоящей из 2,7 мл 0,1 М фосфатного буфера (рН 6,8) и 17%-ного бычьего сывороточного альбумина и 100 мл влажного веса отлитой биомассы клеток Aerococcus vlrtdans 167VR. Смесь равномерно распределяют по поверхности мембраны стеклян- ной палочкой.
Добавляют 10 мкл 10%-ного глутарово- го альдегида с быстрым распределением его на поверхности мембраны стеклянной палочкой.
Электрод инкубируют в перевернутом состоянии при +4°С в течение 8 ч, после чего ферментный слой накрывают диализной мембраной. Электрод помещают сенсорной частью в 0,01 М фосфатный буфер (рН 7,2 - 7,4).
Для определения концентрации молочной кислоты в биологическом образце в
микроячейку вносят 20 мкл смеси, состоящей из 10 мкл биологического образца и 10 мкл 0,15 М раствора DL- «-аланина
Сенсорную часть электрода Кларка вводят в микроячейку и производят регистрацию скорости поглощения Ог, выражаемой в нМ поглощенного Ог в 1 мин. Производят расчет концентрации молочной кислоты в образце согласно калибровочной кривой зависимости скорости поглощения Оз при окислении L-лактата.
Время формирования сигнала составляет 2,9 - 4,1 с , время возвращения сигнала на базовый уровень при отмывке электрода от метаболитов 3 - 5 с. Электрод может храниться до 2 мес при +4°С.
Формула изобретения Способ определения молочной кислоты, заключающийся в регистрации поглоще- ния кислорода при окислении анализируемой смеси, содержащей молочную кислоту, иммобилизованным ферментным реагентом, отличающийся тем, что, с целью повышения чувствительности, в качестве ферментного реагента используют клетки Aerococcus vlridans ВНИИА, 1688, окисляющие О- и L-изомеры молочной кислоты, а в анализируемую смесь добавляют равный объем 0,05 - 0,15 М раствора DL- а-аланина.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Индикаторная среда для определения оксидазной активности AeRococcUS VIRIDaNS | 1986 |
|
SU1359301A1 |
Способ выделения рестриктаз II класса | 1989 |
|
SU1698289A1 |
Штамм бактерий AeRococcUS VIRIDaNS для получения клонов с оксидазной и редуктазной активностью | 1986 |
|
SU1406156A1 |
ДИАГНОСТИЧЕСКАЯ ТЕСТ-СИСТЕМА ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ ВИРУСА ГЕПАТИТА А | 1992 |
|
RU2065164C1 |
Способ получения протеолитического препарата для медицинского применения | 2015 |
|
RU2610669C1 |
Способ определения активности холинэстеразы | 1990 |
|
SU1728770A1 |
Способ электрохимического определения глюкозы и электрод для его осуществления | 1984 |
|
SU1180771A1 |
СПОСОБ ОБНАРУЖЕНИЯ АНТИГЕНОВ ЧУМНОГО МИКРОБА | 2009 |
|
RU2408021C2 |
Способ получения цитотоксических к раковым клеткам лимфоцитов и способ получения гликосвязанного антигена | 1982 |
|
SU1412596A3 |
СРЕДСТВО ВНУТРИКЛЕТОЧНОЙ ДОСТАВКИ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНОГО ВЫСОКОМОЛЕКУЛЯРНОГО СОЕДИНЕНИЯ НА ОСНОВЕ НАНОЧАСТИЦ И СПОСОБ ЕГО ПОЛУЧЕНИЯ | 2014 |
|
RU2541121C1 |
Изобретение относится к медицине, а именно к методам определения метаболитов с помощью ферментных электродов Цель изобретения - повышение чувствительности. Способ заключается в том, что в качестве ферментного сенсора используют кислородный электрод с иммобилизованными клетками аэрококков Aerococcus virldans ВНИИА 1688(167 VR)c повышенной способностью окисления молочной кислоты Скоростьпоглощениякислорода дополнительно усиливается с помощью введения в реакционную смесь 0,1 М D-L-tt-ала- нина. Объем анализируемой пробы 20 мкл, чувствительность способа 0,1 мкМ. время формирования сигнала 2,9 - 4.1 с, время возвращения сигнала на базовый уровень при отмывке электрода от метаболитов 3-5 с, интервал линейности калибровочного графика 0,5 - 5 мкм. Электрод стабилен в течение 2 мес при хранении при 4°С. 2 табл. 1 ил. Ё
95,,2 155.7,2 529,143,2
622,3125
Таблица 1
502,,2 59Г.18,8
.
1дпП02
Таблиц
/1актот,м/1
т- 7
т 9
-г- 10
Masclnl M., Fortunati S., D., Palleshl G., Massl-Benedetti M., Fablettl P | |||
An L-factate sensor with Immobilized enzyme for use In vivo studies with endocrine artificial pancreas | |||
- Clinical Chemistry, 1985 | |||
Способ очистки нефти и нефтяных продуктов и уничтожения их флюоресценции | 1921 |
|
SU31A1 |
Переносная печь для варки пищи и отопления в окопах, походных помещениях и т.п. | 1921 |
|
SU3A1 |
ИГРУШКА С ПЛАВАЮЩЕЙ ФИГУРОЙ | 1922 |
|
SU451A1 |
Adamovicz E., Bursteln C | |||
L-lactate enzyme electrode, obtained with Immobilized respiratory chain from Escherlchla coll and oxygen probe for specific determination of L-lactate In yogurt, wine and blood | |||
- Biosensors, 1987 - 88, v.3, №1 | |||
Прибор с двумя призмами | 1917 |
|
SU27A1 |
Авторы
Даты
1991-06-15—Публикация
1989-01-17—Подача