Штамм бактерий RноDососсUS RноDоснRоUS - продуцент нитрилгидратазы Советский патент 1992 года по МПК C12N9/78 C12P13/02 

Описание патента на изобретение SU1731814A1

Изобретение относится к микробиологической промышленности и касается получения нового штамма, обладающего высокой нитрилгидратазной активностью.

Нитрилгидратаза - фермент, катализирующий процесс гидролиза нитрилов кар- боновых кислот в амиды.

Известны микроорганизмы, продуцирующие фермент нитрилгидратазу, относящиеся к родам Corynebacterium, Nocardia, Brevibacterium, Bacillus, Bacteridium,

Micrococcus, Pseudumonas Rhodococcus.

Одним из примеров использования этого фермента является получение акриламида из акрилонитрила.,

Известны штаммы, способные к трансформации акрилонитрила в акриламид: Corynebacterium N 771, Corynebacterium N 774, Nocardia N 775, Pseudomonas chlororophis B23, Rhodococcus rhodochrous 1-1.

Недостатком данных штаммов является низкая ферментативная активность нитрилгидратазы. В случае штамма Corynebacterium N 774 удельная активность нитрилгидратазы не превышала 38,5 ед.

Х|

iCJ

5

4

Известен штамм Pseudomonas chlororaphis B23, который при выращивании на среде, содержащей аминокислоту L-цистеин (2 г/л), проявлял ферментативную активность 105,7 ед,

Недостатком данного штамма является использование в культуральной среде дорогостоящей аминокислоты.

Наиболее близким к изобретению по технической сущности является штамм Ат-324, мутант Pseudomonas chlororaphis В23, который обладает удельной нитрилгид- ратазной активностью 141 ед.

Недостатками данного штамма являются использование в среде культивирования дорогостоящих аминокислот L-пролина и L- цистеина, дробное введение индуктора - метакриламида.

Целью изобретения является получение штамма с более высокой нитрилгидратаз- ной активностью, не требующего использования аминокислот при выращивании, культивирование на простой синтетической среде,

Заявляемый штамм Rhodococcus rhodochrous M8 депонирован под номером S-226 и характеризуется следующими мор- фолого-культуральными и физиолого-биохи- мическими признаками.

Морфологические признаки: штамм грамположительный, неподвижный, спор и капсул не образует, некислотоустойчив, аэроб. Клетки в возрасте 18-20 ч образуют длинные по 20 мкм, слабо ветвящиеся нити, которые через 48-72 ч распадаются на па- лочковидные и кокковидные элементы.

Палочковидные клетки имеют размеры 0,9-1,2 х 2,0-20,0 мкм. Деление клеток происходит как по раскалывающемуся, так и по сгибающемуся типу. В протоплазме клеток видны внутриклеточные включения в виде зерен (гранулярность протоплазмы).

Культуральные свойства: при росте на мясопептонном агаре штамм образует круглые гладкие колонии диаметром 1 мм (48-72 ч), поверхность сухая, матовая, розового цвета. При росте на мясопептонном бульоне образует пленку и осадок. Лакмусовое молоко не изменяет.

Физиологические свойства: штамм редуцирует нитраты. Тест с метиловым красным, реакция Фогес-Проскауэра отрицательные. Образует сероводород. Штамм оксида за отрицательный, каталаза- и фос- фатазаположительный. Растет при рН 6-9, оптимальное значение рН 7,0, при температуре 5-45°С, оптимальное значение температуры 30°С. В качестве источников азота использует соединения аммония и нитраты,

Штамм дает кислую реакцию при росте на глюкозе, фруктозе, сорбите, манните и глицерине. Газообразование ни на одном сахаре не обнаружено. В качестве единственного источника углерода использует инозит, маннит, мальтозу, сорбит, глюкозу, глицерин, лактат, пируват, не использует рамнозу, галактозу. Крахмал и целлюлозу не гидролизует, твин 60 и твин 80 гидролизует. Аденин не утилизирует.

Химический состав клеток: в клеточной стенке содержится meso-диаминопимели- новая кислота, арабиноза и галактоза. Содержится липид A (LCN), характерный для родококков.

Чувствительность к антибактериальным препаратам: штамм чувствителен к канами- цину, хлорамфениколу, ампициллину, пенициллину, мономициину, тетрациклину, рифампицину.

Патогенность: штамм непатогенный. Ферментативную активность определяли с использованием в качестве субстратов нитрилов карбоновых кислот. За единицу удельной нитрилгидратазной активности принимали количество фермента, катализирующего образование 1 мкмоль амида в одну минуту, содержащегося в 1 мг сухого веса клеток.

Штамм Rhodococcus rhodochrous M8, ВКПМ S-926 обладает более высокой активностью нитрилгидратазы (150 ед.) по сравнению со штаммом прототипом Ат-324 (141 ед.) и не требует использования в культуральной среде дорогостоящих аминокислот. П р и м е р 1. Выделение штамма Rhodococcus rhodochrous M8, ВКПМ S-926. Заявляемый штамм был выделен из почвы с производства акрилонитрила. Навеску почвы 1,0 г ресуспендировали в 10 мл физиологического раствора и отстаивали в течение 1 ч. Надосадочную жидкость в количестве 2 мл вносили в среду следующего состава, г:

К2НР040,5

КН2Р040,5

MgS04 7H200,5

FeSCV7H200,01

Глюкоза1,0

Изобутиро нитрил1,0

Вода водопроводная, мл1000 рН 7,2 ±0,2 50 мл суспензии инкубировали в 300 мл колбе Эрленмейера при 28-30°С, при круговом перемешивании (число качаний 180-200 ). Через двое суток отбирали 1 мл культуральной жидкости, серийно разводили в физиологическом растворе и высевали на чашки Петри с агаризованной средой (1,5% агар-агара) вышеуказанного состава. Посевы инкубировали 48-72 ч при 28-30°С, после чего отбирали наиболее крупные колонии, которые использовали в дальнейших исследованиях. Колонии пересевали на чашки Петри с мясопептонным агаром. Выделенные культуры изучали на способность к трансформации акрилонит- рила в акриламид.

Микроорганизмы выращивали в течение двух суток на среде выделения, отбирали 5 мл клеточной суспензии, центрифугировали, клетки отмывали 0,01 М фосфатным буфером, рН 7,6, ресуспендировали в 2 мл буфера того же состава, содержащего акрилонитрил в концентрации 1 г/л. Реакцию останавливали добавлением 0,1 мл 1 н. HCI. Количественное определение акрила- мида осуществляли методом газожидкост- ной хроматографии на хроматографе ЛХМ-80 с пламенно-ионизационным детектором. В качестве неподвижной фазы использовали Reoplex 400.

В результате была выделена культура Rhodococcus rhodochrous М8 с высокой нит- рилгидратазной активностью.

П р и м е р 2. Использование штамма Rhodococcus rhodochrous M8, ВКПМ S-926 для трансформации изобутиронитрила в изобутирамид.

Полученный штамм Rhodococcus rhodochrous M8, ВКПМ S-926 предкультиви- ровали в колбах Эрленмейера, заполненных на 1/10 часть бульоном Хоттингера в течение суток, на качалке (число качаний 120 ) при 30°С. Культуральную жидкость в объеме 10 мл инокулировали в 1,5 л ферментер. Состав среды, г:

КаНРСМ0,5

КНаРСМ0,5

MgS04 7H200,5

CoCi2 7H200,02

Глюкоза10,0

Изобутирамид2,5

Дистиллированная вода, мл1000

рН7,2±0,2

Условия культивирования: Объем культуральной

среды, мл1000

Скорость перемешивания, об/мин600 Аэрация, мин 11:2 Температура, °С30 рН 7,2 Ферментацию вели при контролируемом значении рН. Подтитровку осуществляли 1 н. 1 н. КОН.

0

5 0

5

0

5

0

5

0

5

Из реакционной среды периодически отбирали пробы для определения концентрации клеток и их нитрилгидратазной активности. Концентрацию клеток определяли фотокалориметрически при длине волны 540 нм, толщине слоя 5,07 мм.

Активность нитрилгидратазы оценивали следующим образом.

1 мл культуральной жидкости центрифугировали, клетки отмывали 0,01 М фосфатным буфером, рН 7,6. Буферную емкость и значение рН подбирали экспериментально. Клетки ресуспендировали в буфере указанного состава до значения оптической плотности 0,2-0,5 (А 540 нм). К 2 мл клеточной взвеси в фосфатном буфере добавляли изобу- тиронитрил в количестве 25 мкл. Реакцию проводили при 20°С в течение 10 мин, а затем останавливали добавлением 0,1 мл 1 н. HCI. Бактериальные клетки отделяли центрифугированием. Концентрацию изобутирамида в надосадочной жидкости анализировали методом газожидкостной хроматографии.

Удельная активность нитрилгидратазы в отношении изобутиронитрила достигала 140ед.

П р и м е р 3. Использование штамма Rhodococcus rhodochrous M8, ВКПМ S-926 для трансформации ацетонитрила в ацета- мид.

Штамм Rhodococcus rhodochrous M8, ВКПМ S-926 подготавливали к процессу трансформации по примеру 2. Активность нитрилгидратазы оценивали аналогично примеру 2. В качестве субстрата добавляли ацетонитрил в количестве 25 мкл.

Активность нитрилгидратазы в отношении ацетонитрила достигала 220 ед.

П р и м е р 4. Использование штамма Rhodococcus rhodochrous M8, ВКПМ S-926 для трансформации акрилонитрила в акриламид.

Штамм Rhodococcus rhodochrous M8, ВКПМ S-926 подготавливали к процессу трансформации как в примере 2. Активность нитрилгидратазы оценивали аналогично примеру 2. В качестве субстрата добавляли акрилонитрил в количестве 25 мкл.

Изменение ферментативной активности в зависимости от стадии роста клеток представлена в табл.1.

Активность нитрилгидратазы в отношении акрилонитрила достигала 150 ед.

П р и м е р 5. Влияние температуры на активность нитрилгидратазы штамма Rhodococcus rhodochrous M8, ВКПМ S-926.

Бактерии Rhodococcus rhodochrous M8, ВКПМ S-926 выращивали в течение 70 ч и подготавливали к трансформации по примеру 2. Образцы с реакционной смесью, содержащие 25 мкл акрилонитрила и 0,04 мг клеток по сухому весу в 2 мл 0,025 М фосфатного буфера, рН 7,6, инкубировали в течение 5 мин при различных температурах. Концентрацию образовавшегося в реакционной смеси акриламида определяли с помощью газожидкостной хроматографии. Изменение активности нитрилгидратазы в зависимости от температуры проведения реакции трансформации представлено в табл. 2.

Таким образом нитрилгидратаза из штамма Rhodococcus rhodochrous M8, ВКПМ S-926 обладает более высокой термо- стабильностью, чем аналогичный фермент из Pseudomonas chlororaphis B23 (температурный оптимум 20°С) и Rhodococcus sp. N 774 (температурный оптимум 35°С).

П р и м е р 6. Индукция нитрилгидратазы при росте штамма Rhodococcus rhodochrous М8, ВКПМ S-926 на мочевине.

Штамм Rhodococcus rhodochrous M8, ВКПМ S-926 предкультивировали в колбах Эрленмейера, содержащих бульон Хоттин- гера в течение суток на качалке при 30°С. 10 мл культуральной жидкости инокулиро- вали в колбы Эрленмейера, содержащие 200 мл синтетической среды с различным количеством мочевины. Состав синтетиче

ской среды, г:

К2НР04

NaH2P04 MgS04 7H20 CoCl2 6HiO FeS04- 7H20 Глюкоза

Дистиллированная вода, мл

Клетки растили в течение Активность нитрилгидратазы примеру 2. Изменение активгидратазы в зависимости от мочевины в среде представле

5 10

15

0

5

0

5

0

5

Результаты табл. 3 показывают, что уровень индукции нитрилгидратазы возрастает с ростом концентрации мочевины в среде и удельная активность достигает максимального значения при концентрации мочевины 16 г/л.

Заявляемый бактериальный штамм М8, ВКПМ S-926 на основании таксономического изучения отнесен к виду Rhodococcus rhodochrous. Штамм обладает индуцибель- ной нитрилгидратазой, осуществляющей гидролиз алифатических нитрилов в амиды. Индукция нитрилгидратазы достигается при выращивании клеток Rhodococcus rhodochrous M8 на минеральной среде с ионами кобальта, содержащей в качестве источника азота и индуктора нитрилы и амиды органических кислот, например изобути- ронитрил или изобутирамид, а в качестве источника углерода - глюкозу. Максимальная активность нитрилгидратазы (удельная активность 300 и общая активность 2400) наблюдается при использовании в качестве источника азота и индуктора мочевины ко- мерчески доступного соединения, что особенно важно в случае промышленного использования штамма. Еще одним важным технологическим преимуществом использования штамма Rhodococcus rhodochrous M8 в качестве катализатора при гидролизе нитрилов является высокая термостабильность нитрилгидратазы. Максимальная активность фермента (1000 ед.) наблюдается при 53°С.

Штамм Rhodococcus rhodochrous M8, ВКПМ S-926 может быть рекомендован как продуцент фермента нитрилгидратазы и использован в биотехнологическом процессе получения акриламида и других амидов кар- боновых кислот.

Формула изобретения

Штамм бактерий Rhodococcus rhodochrous ВКПМ S-926-продуцент нитрилгидратазы.

Таблица 1

Похожие патенты SU1731814A1

название год авторы номер документа
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АКРИЛОВЫХ МОНОМЕРОВ И ШТАММ БАКТЕРИЙ RHODOCOCCUS RHODOCHROUS ДЛЯ ЕГО ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ 2006
  • Яненко Александр Степанович
  • Ларикова Галина Андреевна
  • Герасимова Татьяна Васильевна
  • Леонова Татьяна Евгеньевна
  • Полякова Инга Николаевна
  • Дебабов Владимир Георгиевич
RU2304165C1
ШТАММ БАКТЕРИЙ RHODOCOCCUS RHODOCHROUS - ПРОДУЦЕНТ НИТРИЛГИДРАТАЗЫ 1993
  • Яненко А.С.
  • Астаурова О.Б.
  • Воронин С.П.
  • Герасимова Т.В.
  • Кирсанов Н.Б.
  • Пауков В.Н.
  • Полякова И.Н.
  • Дебабов В.Г.
RU2053300C1
ШТАММ БАКТЕРИЙ RHODOCOCCUS ERYTHROPOLIS - ПРОДУЦЕНТ НИТРИЛГИДРАТАЗЫ 2001
  • Демаков В.А.
  • Максимов А.Ю.
  • Кузнецова М.В.
  • Овечкина Г.В.
  • Козлов С.В.
  • Ремезовская Н.Б.
  • Максимова Ю.Г.
RU2196822C1
ШТАММ БАКТЕРИЙ RHODOCOCCUS AETHERIVORANS BKM AC-2610D - ПРОДУЦЕНТ НИТРИЛГИДРАТАЗЫ, СПОСОБ ЕГО КУЛЬТИВИРОВАНИЯ И СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АКРИЛАМИДА 2012
  • Козулин Сергей Владимирович
  • Козулина Татьяна Николаевна
  • Козулин Алексей Сергеевич
RU2520870C1
ШТАММ БАКТЕРИЙ rhodococcus ruber - ПРОДУЦЕНТ НИТРИЛГИДРАТАЗЫ 2001
  • Демаков В.А.
  • Максимов А.Ю.
  • Аликин В.Н.
  • Кузнецова М.В.
  • Овечкина Г.В.
  • Будников В.И.
  • Федченко В.Н.
  • Федченко Н.Н.
  • Кузьмицкий Г.Э.
  • Черешнев В.А.
RU2223316C2
ШТАММ БАКТЕРИЙ ALCALIGENES SPECIES - ПРОДУЦЕНТ НИТРИЛАЗЫ 1995
  • Забазная Е.В.
  • Козулин С.В.
  • Куликова Л.К.
  • Воронин С.П.
RU2081169C1
ШТАММ БАКТЕРИЙ BACILLUS СEREUS-ПРОДУЦЕНТ НИТРИЛГИДРАТАЗЫ 1999
  • Демаков В.А.(Ru)
  • Максимов А.Ю.(Ru)
  • Аликин В.Н.(Ru)
  • Кузьмицкий Г.Э.(Ru)
  • Федченко Н.Н.(Ru)
  • Черешнев В.А.(Ru)
  • Хартан Ханс Георг
RU2160778C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АКРИЛАМИДА 1996
  • Дебабов В.Г.
  • Воронин С.П.
  • Козулин С.В.
  • Синолицкий М.К.
  • Козулина Т.Н.
  • Полянский А.Б.
  • Синтин А.А.
  • Яненко А.С.
  • Байбурдов Т.А.
  • Хоркин А.А.
  • Луйксаар И.В.
  • Решетникова Л.В.
  • Федченко Н.Н.
RU2077588C1
РЕКОМБИНАНТНЫЙ ШТАММ БАКТЕРИЙ Rhodococcus rhodochrous, ОБЛАДАЮЩИЙ КОНСТИТУТИВНОЙ АЦИЛИРУЮЩЕЙ АКТИВНОСТЬЮ, И СПОСОБ СИНТЕЗА N-ЗАМЕЩЕННЫХ АКРИЛАМИДОВ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ЭТОГО ШТАММА В КАЧЕСТВЕ БИОКАТАЛИЗАТОРА 2013
  • Лавров Константин Валерьевич
  • Новиков Андрей Дмитриевич
  • Рябченко Людмила Евгеньевна
  • Герасимова Татьяна Васильевна
  • Яненко Александр Степанович
RU2539033C1
СПОСОБ СИНТЕЗА N-ЗАМЕЩЕННЫХ АКРИЛАМИДОВ И РЕКОМБИНАНТНЫЙ ШТАММ Rhodococcus erythropolis ДЛЯ ЕГО ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ (ВАРИАНТЫ) 2012
  • Лавров Константин Валерьевич
  • Ларикова Галина Андреевна
  • Яненко Александр Степанович
RU2522804C2

Реферат патента 1992 года Штамм бактерий RноDососсUS RноDоснRоUS - продуцент нитрилгидратазы

Использование: биотехнология. Сущность изобретения: получение нового штамма бактерий - продуцента фермента нит- рилгидратазы, выделенного из почвы производства акрилонитрила, с использованием в качестве селектирующего агента изобутиронитрила. Штамм Rhodococcus rhodochrous ВКПМЗ-926 обладает следующими признаками: грампо- зитивный, неподвижный, спор не образует, некислотоустойчив, аэроб. Клетки в возрасте 18-20 ч образуют длинные слабоветвящиеся нити, которые через 48-72 ч распадаются на палочковидные и кокковид- ные элементы. Штамм Rhodococcus rhodochrous 926 обладает высокой активностью нитрилгидратазы, достигающей 140 ммоль мг/мин в отношении изобутиронитрила, 220 ммоль/мг/мин в отношении аце- тонитрила, 150 ммоль/мг/мин в отношении акрилонитрила. Штамм Rhodococcus rhodochrous ВКПМЗ-926 может быть использован в биотехнологическом процессе получения акриламида и других амидов кар- боновых кислот. 3 табл.

Формула изобретения SU 1 731 814 A1

Указанные величины оптической плотности промеряли после соответствующих разведений.

Таблица 2

Таблица 3

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 1992 года SU1731814A1

УСТРОЙСТВО для ПООПЕРАЦИОННОЙ ТРАНСПОРТИРОВКИ ПОЛЫХ РЕЗИНОВЫХ ИЗДЕЛИЙ 0
SU204555A1
Способ гальванического снятия позолоты с серебряных изделий без заметного изменения их формы 1923
  • Бердников М.И.
SU12A1
Пневматический водоподъемный аппарат-двигатель 1917
  • Кочубей М.П.
SU1986A1
Agric.Biolog.Chem., 1988, v
Устройство для устранения мешающего действия зажигательной электрической системы двигателей внутреннего сгорания на радиоприем 1922
  • Кулебакин В.С.
SU52A1
Зрительная с переменным увеличением труба для самолетов 1924
  • Ильтонов А.Е.
  • Титов Л.Г.
SU1813A1

SU 1 731 814 A1

Авторы

Яненко Александр Степанович

Полякова Инга Николаевна

Астаурова Ольга Борисовна

Пауков Владимир Николаевич

Козулин Сергей Владимирович

Синолицкий Максим Константинович

Моисеева Татьяна Николаевна

Воронин Сергей Петрович

Дебабов Владимир Георгиевич

Даты

1992-05-07Публикация

1990-05-17Подача