Изобретение относится к биотехнологии, а именно генетическим исследованиям зерновых культур, и может быть использовано для оценки сорто- образцов, различающихся по качеству зерна.
В процессе биосинтеза белки могут быть модифицированы сопутствующими небелковыми веществами (углеводы, липиды, гликолипиды). Процесс модифи- кационных изменений затрагивает основной компонент белкового комплекса - проламин, который является маркером генома и выполняет запасную функцию в зерне. Вместе с тем и небелковые вещества играют важную роль в формировании белковых структур, например, гликолипиды в формировании
уникальной структуры клейковины, определяющей технологические свойства пшеницы. Использование добавок в пшеничную муку улучшает качество хлебопродуктов. Имеющиеся данные свидетельствуют о генетической специфичности модификации в процессе биосинтеза проламинов, что приводит к изменениям показателей, определяющих качество зерна. В связи с этим разработаны различные способы определения кодификационных изменений белкового комплекса зерновых культур.
Известные способы включают экстракцию проламинов и определение содержания углеводов, суммарных липидов, гликолипидов или качественного состава липидной компоненты. Для опреде 1
оэ со ю
00
4
дения генетической специфичности зерновых культур к модификационным изменениям используют способ, согласно которому проводят SDS-электрофорез или изоэлектрофокусирование комплекса проламиновых белков в полиакрил- амидном геле. Электрофореграмму обрабатывают конкавалином А, меченым радиоактивным изотопом иода-125. По специфичности связывания отдельных полипептидов с конкавалином А определяют зависимость процесса гликози- лирования от исходного генотипа, К основным недостаткам указанных способов следует отнести трудоемкость и длительность операций по подготовке образца и проведение анализа с использованием набора дефицитных реагентов, которые специфичны для каждого определяемого компонента.
Наиболее близким по технической сущности и достигаемому эффекту к предлагаемому является способ, включающий экстракцию проламиновых белков из зерна с различным генотипом, проведение электрофореза в полиакрил- амидном геле, окрашивание гелей цве- тореагентом и определение модифика- ционных изменений белков по данным денситометрии.
Согласно известному способу экстрагируют проламин из селекционных образцов зерна раствором 70%-ного этанола с 2М мочевиной. -Затем проводят электрофоретическое разделение выделенных белковых препаратов в плоском полиакриламидном геле с 8 i мочевиной в уксуснокислой системе, а также в 12,5%-ном полиакриламидном геле с 0,1% додецилсуль- фата натрия в щелочных буферных растворах. После электрофореза гели окрашивают с помощью Шифф-иодной кислоты для выявления углеводов, используя 12 операций в такой последовательности: обработка 100 мл 10% раствора трихлоруксусной кислоты в течение 30 мин; промывка дистиллированной водой по 200 мл (2 раза по 30 мин); обработка 100 мл 1,1%-ного раствора медной кислоты, приготовленной на 0%-ном этаноле, в течение 30 мин; промывка дистиллированной водой (2 раза по 200 мл в течение 5 -мин; выдержка в течение k мин в 100 мл восстанавливающего раствора (АО мл 5%-ного раствора йодистого калия,
растворенного в 5%-ном растворе гипо0
0
сульфита натрия и 60 мл 3,5 мМ раствора соляной кислоты); повторная обработка в 100 мл свежеприготовленно- го восстанавливающего раствора в течение мин; обработка дистиллированной водой 3 раза; инкубирование в 100 мл реактива Шиффа g течение 90 мин; обработка 200 мл обесцвечивающего раствора (0,2% метабисульфи- та натрия, kQ% этанола и 5% уксусной кислоты) в течение 90 мин при 55РС; промывка (2 раза по 100 мл) раствором, содержащим №%, этанола и 5% ук- j сусной кислоты, в течение 30 мин; обработка 200 мл 0,8%-ного раствора ме- табисульфита натрия, приготовленного на 0,12 М соляной кислоте, до полного обеспечивания фона; фиксирование в 5%-ном растворе уксусной кислоты.
Оптическую плотность окрашенных зон получают путем сканирования гелей на денситометре и по полученным значениям определяют модификационные изменения белкового комплекса зерна.
Указанный способ сложен в техническом исполнении, отличается длительными и трудоемкими методиками, требует большого расхода дефицитных реагентов (более 10) и предусматривает подготовку сложных растворов (более 10). К недостаткам способа следует также отнести и необходимость проведения электрофоретического разделения комплекса проламиновых белков на группы полипептидов перед определением оптических параметров. Указанные недостатки ограничивают использование способа в селекционной практике для экспресс-диагностики.
Цель изобретения - упрощение и : ускорение анализа.
Способ осуществляют следующим образом.
5
0
5
0
1
Экстрагируют белки проламинового комплекса из размолотого зерна стандартного и исследуемого сортообраз- ца злаковых культур. Проводят подготовку препарата проламина к анализу путем отливки пленки из раствора на оптическое стекло. Измеряют инфракрасный спектр проламина на спектрофотометре в области 1550-1850 определяют значения оптической плотности в максимумах поглощения при 17Ю-1730 и 1650-1660 рассчитывают соотношение оптических плотностей при указанных максимумах в качестве сравнительного показателя. Повышение степени модификации белкового комплекса выявляют по возрастанию величины сравнительного показателя исследуемого сортообразца в сравнении со стандартным. Интервал значений волновых чисел максимумов поглощения при 1710-1730 и 1650-1660 обоснован экспериментально.
На чертеже приведены спектры поглщения зерна стандартного (линия кукурузы +/+ - кривая 1) и исследуемого (мутантная линия кукурузы 02/02 - кривая 2) сортообразцов
Отличительными особенностями способа являются анализ по спектру поглощения проламина и определение степени модификационных изменений белкового комплекса зерна по величине отношения оптических плотностей в максимумах поглощения проламина исследумого сортообразца в сравнении со стандартным.
Пример 1. Исследуют ИК-спект ры глиадинов, выделенных экстракцией 70%-ным этанолом после отделения во- до- и солерастворимых белков из размолотого зерна сортов пшеницы, контрастных по технологическим свойствам - Коралл Одесский (твердая) и Днепропетровская (мягкая), Для подготоки тонкой пленки образца к анализу раствор 3 мг препарата в 0,5 мл 70%-ного водного диоксана наносят на оптическое стекло из флюорита и высушивают под вакуумом. ИК-спектры глиадинов получают на приборе Спекорд М-80 в области 1550-1850 . Оптические плотности 0,и DZ. в максимумах поглощения при , и )2 рассчитывают по методу базисной линии.
Значения сравнительного показателя глиадинов приведены в табл. 1 (данные статистически достоверны, ошибка измерения не более 5%)
Значения сравнительного показателя свидетельствуют о возрастании модификационных изменений белков проламинового комплекса зерна пшени-
цы мягких сортов в сравнении с сор- тосбразцом твердых пшениц.
П р и м е р 2. Исследуют ИК-спектры проламинов, выделенных из зерна злаковых культур, аналогично примеру 1.
Результаты определения сравнительного показателя D«/Da. проламинов приведены табл. 2 (данные стати
)
стически достоверны, ошибка измерения не более 5%)
Вариабельность сравнительного показателя свидетельствует о зависимости степени модификационной изменчивости проламинового комплекса от природы зерновых культур.
П р и м е р 3. Исследуют аналогич- .но примеру 1 ИК-спектры белков зеи- нового комплекса, выделенных из зерна кукурузы с различным генотипом путем экстракции раствором 70%-ного этанола с В-меркаптоэтанолом. 8 качестве стандарта используют исходное линии кукурузы (W6AA +/+, А 619 +/+), а в качестве исследуемых образцов - линии кукурузы с эндоспермовыми мутациями типа о2, su2, o2/o2, ди2/ /su2.
Результаты определения сравнительного показателя D,/D зеинов приведены в табл. 3 (данные статистически достоверны, ошибка измерения не более 5%).
5
Полученные результаты подтверждают, что сравнительный критерий позволяет определить степень модификационных изменений белкового комплекса в зависимости от типа эндоспермовой мутации.
Так, мутация типа о2/о2 вызывает существенные изменения в процессах модификации белков в отличие от мутации типа su2/su2. В двойных мутациях типа о2/о2 su2/su2 наблюдается снижение модификационных изменений в сравнении с мутацией типа о2/о2.
Использование предполагаемого способа в сравнении с известным позволит ускорить и упростить определение модификационных изменений белкового комплекса зерна путем исключения длительных и трудоемких операций, исключить расход многочисленных реагентов. Предлагаемый способ позволяет выявить сортовую и генотипи- ческую специфичность злаковых куль- тур к модификационным изменениям белкового комплекса при оценке качества зерна по хозяйственно ценным призна
55
кам. Формул
изобретения
Способ определения модификационных изменений белкового комплекса зерна, включающий экстракцию прола 1
мина исследуемых и стандартных сор- тообразцов злаковых культур и опреде ление модификационных изменений белка по оптическому параметру, о т- личающийся тем, что, с целью упрощения и ускорения анализа, в- качестве оптического параметра исследуют инфракрасный спектр прола- мина в области 1550-1850 опреде ляют значения оптических плотностей
92848
в,максимумах, находят отношение значения оптической плотности в максимуме при 1710-1730 значению , оптической плотности в максимуме при 1650-1660 см и по возрастанию данного отношения у исследуемых сортооб- разцов по сравнению со стандартными выявляют повышение степени модификаto ционных изменений.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Способ отбора эндоспермовых мутантов кукурузы | 1989 |
|
SU1701194A1 |
Способ выявления эндоспермовых мутаций кукурузы | 1990 |
|
SU1731105A1 |
СПОСОБ ОТБОРА МУТАНТНЫХ ФОРМ КУКУРУЗЫ С УЛУЧШЕННЫМ КАЧЕСТВОМ БЕЛКА | 1991 |
|
RU2010501C1 |
СПОСОБ ОТБОРА ЭНДОСПЕРМОВЫХ МУТАНТОВ КУКУРУЗЫ С УЛУЧШЕННЫМ КАЧЕСТВОМ ЗЕРНА | 1991 |
|
RU2005351C1 |
Способ контроля чистоты проламина | 1990 |
|
SU1778639A1 |
Способ отбора высокотриптофановых генотипов кукурузы | 1990 |
|
SU1741676A1 |
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ СПЕЦИФИЧНОСТИ ЭНДОСПЕРМОВЫХ МУТАНТОВ КУКУРУЗЫ К НАКОПЛЕНИЮ КАРОТИНОИДОВ | 1991 |
|
RU2005352C1 |
СПОСОБ ОТБОРА МУТАНТНЫХ ФОРМ КУКУРУЗЫ С ПОВЫШЕННЫМ СОДЕРЖАНИЕМ КАРОТИНОИДОВ | 1991 |
|
RU2005350C1 |
Способ идентификации генотипов многолетних злаков трибы пшеницевые (ТRIтIсеае) | 1987 |
|
SU1546022A1 |
ЯЧМЕНЬ С НИЗКИМ СОДЕРЖАНИЕМ ГОРДЕИНОВ | 2008 |
|
RU2518241C2 |
Использование: сельское хозяйство, биотехнология, селекция и семеноводство. Сущность изобретения: изучают инфракрасный спектр пролами- на исследуемого и стандартного сор- тообразцов, определяют оптическую плотность в максимумах, рассчитывают отношение значения оптической плотности в максимуме при 1710-1730 см к значению оптической плотности в максимуме при 1650-1660 см и по возрастанию его у исследуемых образцов по сравнению со стандартными определяют степень модиЛикационных изменений . 1 ил. , 3 табл. Ј (Л
Т а б л и ц а 1
-----------j--„----- --р----
Сорт пшеницы I 3,, N2,
Коралл Одее-1
ский1730 1656 0,10
Днепровская- .8461730 1656 0,21
Таблица Характеристика проламинов I (,см |D«/D
СекаЛин (Рожь Харьковская 55)172016600,23 Проламин тритикале (Амфидиплоид 3/5)171016600,34
Авенин (Овес Скакун)17301&500,39
Кафирин (Сорго Судзерн 62)171216560,51
Таблица Генотип кукурузы j (, см |v2, CM f|Df/D
W64A +/+172516560,21
W64A о2/о2172416560,40
W64A su2/su2172516560,12
W64A о2/о2 su2/su2Т72516560,ТЗ
А 619 +/+172016560,22
А 619 о2/о2172016560,30
А 619 su2/su2172016560,19
А 619 о2/о2 su2/su2173016560,16
%
Патент США № , кл | |||
Выбрасывающий ячеистый аппарат для рядовых сеялок | 1922 |
|
SU21A1 |
Smith J.A., Rottman W.L., Ruben- stein J | |||
Plant Science, 1985, v | |||
Способ сужения чугунных изделий | 1922 |
|
SU38A1 |
Домовый номерной фонарь, служащий одновременно для указания названия улицы и номера дома и для освещения прилежащего участка улицы | 1917 |
|
SU93A1 |
Перуанский Ю.В., Савич И.Н | |||
Изв | |||
АН КазССР, Сер | |||
биол., 1988, № 2, с | |||
Прибор для промывания газов | 1922 |
|
SU20A1 |
( СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ МОДИОИКАЦИОН- НЫХ ИЗМЕНЕНИЙ БЕЛКОВОГО КОМПЛЕКСА ЗЕРНА |
Авторы
Даты
1992-06-07—Публикация
1990-09-03—Подача