Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к исследованию биологических материалов, а именно к способам определения лектиновой активности и может найти применение при анализе биологических объектов и определения структуры и качественного состава лектинов.
Известен способ определения лектиновой активности при гемагглютинации. Принцип его заключается в том, что к серии последовательных разведений добавляют 2%-ную суспензию эритроцитов и после инкубации определяют агглютинацию эритроцитов визуально. Титр пектина выражают наибольшим разведением раствора, дающего агглютинацию.
Недостатками этого способа являются использование эритроцитов для тестирования гемагглютинирующей активности. Во-первых, не всегда имеется возможность взятия крови у животных из-за их отсутствия или болезни. Необходимы большие средства для поддержания вивария. Во-вторых, эритроциты могут храниться в хорошем состоянии очень ограниченное время (сутки или несколько суток), по истечении которого необходимо повторное взятие крови. Кроме
того, с помощью традиционного способа тестирования лектинов по агглютинации эритроцитов не могут быть выявлены лектины из всех объектов. Предложен способ определения лектиновой активности с помощью клеток микроводоросли Chlamydomonas reinhardtii CW-15, с помощью которого могут быть выявлены лектины, имеющие угле- водсвязывающие участки, характерные для растительных объектов и не взаимодействующие с эритроцитами или другими ранее предложенными объектами.
Целью изобретения является расширение сферы возможностей способа и уменьшение трудоемкости процесса.
Поставленная цель достигается новым способом определения лектиновой активности с использованием способности отдельных клеток к агглютинации и последующей визуальной оценкой ее, причем в качестве отдельных клеток используют микроводоросль Chlamydomonas reinhardtii CW-15, агглютинацию проводят методом последовательных четырехкратных разведений лектина в известной концентрации при рН 7.0-7,4 и концентрации клеток 1,5- 2,5%.
сл
с
4 Vj 00 О О 00
При проведении реакции агглютинации при рН больше или меньше названных пределов клетки водорослей лизируют. При концентрации клеток ниже 1,5% осадка не образуется, при концентрации выше 2,5% во всех лунках выпадает осадок,
П р и м е р 1. Для проведения реакции гемагглютинации берут нужный объем раствора крови в консерванте, трижды отмывают физиологическим раствором на холоде при центрифугировании 1,5тыс об/мин 10 мин и ресуспендируют в фосфатном буфере рН 7,2 до концентрации эритроцитов 2%. Эту суспензию используют для определения лектиновой активности на пластиковых планшетах c.U-образными лунками с объемом 200 мкл. Калиброванный пипеткой в каждую лунку вносят, по 150 мкл буфера, в neoavio лунку добавляют 50 мкл раствора коммерческого лектина конканавалина А(соп А; в фосфатном буфере 1 мг7мл и делают последовательное четырехкратное разведение этого лектина. Затем в каждую лунку вносят по 50 мкл суспензии эритроцитов и перемешивают содержимое лунок путем осторожного встряхивания планшета в горизонтальной плоскости. Оставляют на 2 ч при комнатной температуре, Результаты реакции учитывают невооруженным глазом. Определяют последнее разведение белка, при котором еще происходит гемагглютинация. В тех лунках, где белок вызывает агглютинацию, эритроциты покрывают дно ровным слоем. При отсутствии агглютинации они скапливаются в центре углубления лунки, образуя компактную пуговку с резко очерченными краями. Конканавалин А вызывает агглютинацию эритроцитов в первых шести зунках, следовательно активность этого препарата составляет 0,244 мкг/мл.
П р и м е р 2, Для проведения реакции альгоагглютинации берут нужный объем суспензии микроводоросли ChlamydOmonas relnhardtii CW-15, культивирование которой проводят в накопительном режиме в стерильных условиях при постоянном освещении 60 Вт/м2, температуре 26-28°С и непрерывном барботировании газовоздушной смесью, содержащей 1,7-2% СО в различного типа культуральных сосудах. Среда для культивирования содержит, г/л: МЩС 5,MgS04«7H202, CaCl2 2H20 1, К2НР04 14,4,
КНаРОз 7,2, раствор микроэлементов для сине-зеленых водорослей 1 мл. Отмывают физиологическим раствором на холоде при центрифугировании 2000 об/мин 10 мин и ресуспендируют в фосфатном буфере рН 7,2 до концентрации клеток 2%. Эту суспензию используют для опредеяения лектиновой активности на пластиковых пл&ншетах с Liобразными лунками с объемом 200 мкл. Калиброванной пипеткой в каждую лунку вносят по 150 мкл буфера, в первую лунку добавляют 50 мкл раствора con А в фосфатном буфере 1 мг/мл и делают последовательное четырехкратное разведение белка. Затем в каждую лунку вносят по 50 мкл суспензии водорослей и перемешивают содержимое лунок путем осторожного встряхивания планшета в горизонтальной плоскости. Оставляют на 1 ч при комнатной температуре. Результаты реакции учитывают невооруженным глазом. Определяют последнее разведение белка, при котором еще
произошла альгоагглютинация. В тех лунках, где белок вызывает агглютинацию, клетки водорослей покрывают дно ровным слоем. При отсутствии агглютинации они скапливаются в центре углубления лунки.
Con А вызывает агглютинацию клеток хламидомонады в первых пяти лунках, следовательно активность этого лектина составляет 0,98 мкг/мл.
ПримерЗ. Для проведения реакции
альгоагглютинации берут нужный объем суспензии микроводоросли хламидомонады, отмывают физиологическим раствором при центрифугировании 2000 об/мин 10 мин на холоде и ресуспендируют в фосфатном
буфере рН 7,0 до концентрации клеток водорослей 1,5%. Далее реакцию альгоагглютинации проводят аналогично примеру 2. Активность Con А по агглютинации клеток хламидомонады составляет 0,98 мкг/мл.
П р и м е р 4. Реакцию альгоагглютинации проводят аналогично примеру 2. После центрифугирования клетки хламидомонады ресуспендируют в фосфатном буфере рН 7,4 до концентрации 2,5%. Активность Соп А по
агглютинации клеток хламидомонады составляет 0,98 мкг/мл.
Результаты примеров 2-4 показывают, что предлагаемый способ дает возможность определить лектиновую активность при помощи клеток хламидомонады, уменьшить его трудоемкость в связи с заменой животных клеток на клетки микроводорослей.
50
Формула изобретения
Способ определения лектиновой активности, включающий приготовление серии последовательных разведений исследуемо- го образца, содержащего лектины, добавление к исследуемому образцу суспензии клеток тест-объекта, инкубацию смеси и визуальную оценку реакции агглютинации, о т- личающийся тем, что, с целью ускорения процесса, в качестве тест-объекта испольэу517786986
ют клетки микроводоросли Chlamydomonas инкубацию проводят в течение 1 ч при рН relnhardii CW 15 в концентрации 0,3 05%реакционной смеси 7,0-7,4
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Способы латекс-агглютинации и торможения латекс-агглютинации, применимые для всех подтипов вирусов гриппа А и В, и тест-система для их осуществления | 2022 |
|
RU2817258C2 |
Способ получения бруцеллезного полистирольного латексного диагностикума | 2022 |
|
RU2798124C1 |
Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS-продуцент моноклональных антител к гемагглютинину вируса гриппа А/Ленинград/385/80 (H3N2) | 1987 |
|
SU1479510A1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЭРИТРОЦИТАРНОГО ДИАГНОСТИКУМА ДЛЯ РЕАКЦИИ НЕПРЯМОЙ ГЕМАГГЛЮТИНАЦИИ (РНГА) ПРИ КЛОСТРИДИОЗАХ ЖИВОТНЫХ | 2020 |
|
RU2754465C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АНТИГЕНА ВИРУСА ЧУМЫ ПЛОТОЯДНЫХ ДЛЯ ПРИГОТОВЛЕНИЯ ЭРИТРОЦИТАРНОГО ДИАГНОСТИКУМА | 2022 |
|
RU2787396C1 |
СРЕДСТВО ДЛЯ ЛЕЧЕНИЯ ХЛАМИДИОЗА | 2016 |
|
RU2629592C1 |
Стандартный образец содержания анти-D антител в препаратах иммуноглобулинов человека | 2017 |
|
RU2682714C1 |
Штамм гибридных культивируемых клеток MUS мUSсULUS L., используемый для получения моноклональных антител к мембраносвязанной и растворимой формам Н-антигена человека | 1991 |
|
SU1791453A1 |
СПОСОБ ПОСТАНОВКИ РЕАКЦИИ ЛАТЕКСНОЙ АГГЛЮТИНАЦИИ | 2001 |
|
RU2198407C2 |
ШТАММ ГИБРИДНЫХ КЛЕТОК ЖИВОТНЫХ MUS MUSCULUS 10G4 - ПРОДУЦЕНТ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ, СПЕЦИФИЧНЫХ К КАПСУЛЬНОМУ FL АНТИГЕНУ YERSINIA PESTIS | 2011 |
|
RU2460787C1 |
Использование: физиология растений, биотехнология, иммунология. Сущность изобретения: для определения лектиновой активности готовят ряд последовательных разведений исследуемого образца, добавляют к нему клетки микроводоросли Chlamydomonas reinhardli CW 15 и проводят реакцию агглютинации в течение 1 ч при рН реакционной смеси 7,0-7,4.
Луцик и др | |||
Методы поиска лектинов и определения их иммунохимической специфичности | |||
Методические рекомендации | |||
Львов, 1980, |
Авторы
Даты
1992-11-30—Публикация
1991-03-01—Подача