СПОСОБ ОБРАБОТКИ ГИДРОЛИЗАТА ПЕРОКСИДАЗЫ ДЛЯ АНАЛИЗА ФЕНОЛОВ Российский патент 1995 года по МПК C12N9/08 

Описание патента на изобретение RU2037521C1

Изобретение относится к биохимии, а именно к способам гидролитического расщепления нативного комплекса фермент пероксидаза+фенолы (хиноны), которые могут найти применение при изучении различных метаболических процессов, связанных с действием пероксидазы процессы лигнификации тканей, защитные реакции организмов, иммунологические исследования, при которых используется пероксидаза.

Известен способ гидролиза пероксидазы гриба Inonotus radiatus, при котором выделенную фракцию фермента гидролизуют 6 н. соляной кислотой (HCl) в течение 12 ч при температуре 105оС (Lobarzewski J. Homoprotein peroxidase from Inonotus radiatus. Acta Microbiologica Polonica, 1977, Vol. 26, N 2, р. 179-184). Затем проводят обработку гидролизата. Для этого упаривают в вакууме в среде аргона и восстанавливают образовавшиеся хиноны до фенолов в присутствии амальгамы натрия. Раствор охлаждают льдом, нейтрализуют серной кислотой (H2SO4) до рН 1. Полученные фенолы экстрагируют серным эфиром [1]
Недостатками указанного способа являются следующие
жесткие условия, а именно 6 н.HCl и кипячение в течение 12 ч, что приводит к разрушению фермента и частичному разрушению конечных продуктов фенолов, вследствие чего становится невозможным достаточно объективно судить о наборе фенолов и активности пероксидазы после их отщепления;
при упаривании гидролизата под вакуумом могут происходить разрушение и потери летучих хинонов, а также их повторное присоединение к остаткам полипептидов и аминокислот, что приведет к нивелированию данных при определении фенольных соединений. Длительное использование вакуума не предотвращает окисления хинонов из-за высокой реакционной способности;
применение серной кислоты вызывает разогрев гидролизата, а именно этого необходимо избегать, так как микроразогрев взаимодействующих молекул серной кислоты и воды приводит к необратимым изменениям оставшегося в гидролизате белка, полипептидов и фенолов. Серная кислота, как очень сильная, взаимодействующая с органическими соединениями гидролизата, может активно их изменять, нарушая общую картину результатов гидролиза.

Другие способы гидролиза комплекса пероксидаза+фенолы (хиноны) не известны.

Сущность изобретения состоит в способе гидролиза комплекса пероксидаза+фенолы (хиноны) и обработки гидролизата для исследования фенолов, включающем кислотный гидролиз, обработку гидролизата, восстановление хинонов с последующим анализом, а гидролиз проводят в 1 н. HCl в течение 0,5-6 ч, без упаривания под вакуумом и нейтрализацию ведут 1 н. HCl.

При осуществлении способа гидролиз ведется не более 6 ч. в 1 н. HCl. Затем гидролизат сразу нейтрализуют 1 н. щелочью до рН 10; добавляют 2,5%-ную амальгаму натрия и восстанавливают хиноны до фенолов при комнатной температуре, что обеспечивает сохранение легкоразрушимых и летучих фенольных соединений. Полученный раствор подкисляют 1 н. соляной кислотой до рН 1-2. Подкисление обеспечивает переход возможных фенолятов (солей натрия с фенолами) в свободные фенолы, которые экстрагируют органическими растворителями. Замена серной кислоты на соляную исключает негативное воздействие ионов SO42- на органические соединения гидролизата.

Гидролиз комплекса пероксидаза+фенолы (хиноны) показан в примерах.

П р и м е р 1. 100 мг пероксидазы хрена помещают в стеклянную ампулу, добавляют 5 мл 1 н. HCl марки химически чистая, ампулу запаивают и нагревают при 105оС в течение 5 мин. Затем ампулу вскрывают, гидролизат сразу подщелачивают 1 н. раствором щелочи натрия до рН 10. К раствору добавляют 20 г 2,5% -ной амальгамы натрия и в течение 2-3 ч перемешивают на магнитной мешалке для восстановления хинонов до фенолов. Затем раствор нейтрализуют той же кислотой до рН 1-2. Восстановленную ртуть отфильтровывают и фенолы извлекают органическими растворителями. Экстракты концентрируют и в них определяют фенольные соединения методом Арноу и методом хроматографии. В этих условиях гидролиза фенолы выявляются в виде следов.

П р и м е р 2. В отличие от примера 1 пример 2 заключается в том, что нагрев гидролизата ведется в течение 30 мин, при этом резко возрастает количество фенолов в гидролизате.

П р и м е р 3. В отличие от примера 1 пример 3 заключается в том, что нагрев раствора ведут в течение 3 ч. При этом количество фенолов в гидролизате также увеличивается, что видно из таблицы.

П р и м е р 4. В отличие от примера 1 пример 4 заключается в том, что нагрев раствора ведут в течение 6 ч. Шестичасовой гидролиз для пероксидазы хрена можно считать максимальным, так как при этом наблюдается максимальное содержание фенолов в гидролизате, что свидетельствует о равновесии реакционной системы.

П р и м е р 5. В отличие от примера 1 пример 5 заключается в том, что нагрев раствора ведут в течение 12 ч. При этом резко падает активность фермента и происходит снижение содержания фенольных соединений в гидролизате.

Результаты представлены в таблице.

Таким образом, предложенный способ позволяет расщеплять нативный комплекс фермент пероксидаза+фенолы (хиноны), при этом сокращается время проведения гидролиза, упрощается способ перевода хинонов в свободные фенолы, исключается применение серной кислоты.

Похожие патенты RU2037521C1

название год авторы номер документа
ШТАММ КУЛЬТИВИРУЕМЫХ КЛЕТОК РАСТЕНИЙ CNIDIUM MONNIERI (L.) CUSS, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ ПРЕПАРАТА, ОБЛАДАЮЩЕГО РИБОНУКЛЕАЗНОЙ АКТИВНОСТЬЮ 1992
  • Журавлев Ю.Н.
  • Козыренко М.М.
  • Булгаков В.П.
  • Холина А.Б.
  • Федореева Л.И.
RU2031940C1
ШТАММ КУЛЬТИВИРУЕМЫХ КЛЕТОК РАСТЕНИЙ ERITRICHIUM INCANUM (TURCZ.) A.DC.SSP. SICHOTENSE (M.POP.) STARCHENKO, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ ПРЕПАРАТА, ОБЛАДАЮЩЕГО ХИТИНАЗНОЙ И ХИТОЗАНАЗНОЙ АКТИВНОСТЬЮ 1993
  • Музарок Т.И.
  • Журавлев Ю.Н.
  • Федореева Л.И.
  • Горбач В.И.
  • Селецкая Л.Д.
  • Ожигова И.Т.
  • Лауве Л.С.
RU2044052C1
КОНСОРЦИУМ ШТАММОВ МИКРООРГАНИЗМОВ-ДЕСТРУКТОРОВ: AEROMONAS SPECIES, ALCALIGENES DENITRIFICANS, ARTHROBACTER SPECIES, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ОЧИСТКИ ПОЧВ, ПОЧВОГРУНТОВ, ВОД ОТ НЕФТИ, НЕФТЕПРОДУКТОВ И ОСТАТОЧНОЙ ЗАМАЗУЧЕННОСТИ 1996
  • Голодяев Г.П.
RU2127310C1
КОНСОРЦИУМ ШТАММОВ МИКРООРГАНИЗМОВ-ДЕСТРУКТОРОВ: ALCALIGENES DENITRIFICANS, ALCALIGENES EUTROPHUS, PSEUDOMONAS MALTOPHILA, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ОЧИСТКИ ПОЧВ, ПОЧВОГРУНТОВ, ВОД ОТ НЕФТИ, НЕФТЕПРОДУКТОВ И ОСТАТОЧНОЙ ЗАМАЗУЧЕННОСТИ 1999
  • Голодяев Г.П.
RU2160719C1
КОНСОРЦИУМ ШТАММОВ МИКРООРГАНИЗМОВ-ДЕСТРУКТОРОВ: ALCALIGENES DENITRIFICANS, PSEUDOMONAS MALTOPHILA, PSEUDOMONAS PUTIDA, PSEUDOMONAS SPECIES, BACILLUS SPECIES ДЛЯ ОЧИСТКИ ПОЧВ, ПОЧВОГРУНТОВ, ВОД ОТ НЕФТИ, НЕФТЕПРОДУКТОВ И ОСТАТОЧНОЙ ЗАМАЗУЧЕННОСТИ 1995
  • Голодяев Г.П.
RU2083667C1
ШТАММ PANAX GINSENG C.A.MEY - ПРОДУЦЕНТ ГИНЗЕНОЗИДОВ И СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ГИНЗЕНОЗИДОВ 1993
  • Булгаков В.П.
  • Журавлев Ю.Н.
  • Козыренко М.М.
  • Рысева И.Н.
RU2067819C1
КОНСОРЦИУМ ШТАММОВ МИКРООРГАНИЗМОВ-ДЕКСТРУКТОРОВ: ALCALIGENES DENITRICANS, BACILLUS SPECIES, PSEUDOMONAS PUTIDA, AEROMONAS SPECIES ДЛЯ ОЧИСТКИ ПОЧВ, ПОЧВОГРУНТОВ, ВОД ОТ НЕФТИ, НЕФТЕПРОДУКТОВ И ОСТАТОЧНОЙ ЗАМАЗУЧЕННОСТИ 1996
  • Голодяев Г.П.
  • Старовойт Т.А.
RU2115629C1
СПОСОБ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ КАЛЛУСНОЙ ТКАНИ ЖЕНЬШЕНЯ 1991
  • Альшевская Е.К.
  • Булгаков В.П.
  • Журавлев Ю.Н.
  • Артюков А.А.
RU2010857C1
СПОСОБ ПОДБОРА ОПТИМАЛЬНЫХ ДОЗ ЭЛЕМЕНТОВ МИНЕРАЛЬНОГО ПИТАНИЯ РАСТЕНИЙ 1999
  • Прокопова Т.К.
  • Трубицын А.Г.
RU2169453C2
ШТАММ КУЛЬТИВИРУЕМЫХ КЛЕТОК РАСТЕНИЙ PANAX GINSENG C.A. MEY - ПРОДУЦЕНТ ГИНЗЕНОЗИДОВ 1992
  • Журавлев Ю.Н.
  • Булгаков В.П.
  • Козыренко М.М.
  • Ожигова И.Т.
  • Еляков Г.Б.
  • Артюков А.А.
  • Уварова Н.И.
  • Маханьков В.В.
RU2038378C1

Иллюстрации к изобретению RU 2 037 521 C1

Реферат патента 1995 года СПОСОБ ОБРАБОТКИ ГИДРОЛИЗАТА ПЕРОКСИДАЗЫ ДЛЯ АНАЛИЗА ФЕНОЛОВ

Использование: изобретение относится к биохимии, может найти применение при излучении различных метаболических процессов, связанных с действием пероксидазы. Сущность изобретения: способ обработки гидролизата пероксидазы хрена, а гидролиз проводят в 1 н. HCl в течении 0,5 - 6 ч, без упаривания под вакуумом, гидролизат подщелачивают до pH 10,0 и нейтрализуют 1 н. HCl. Таким образом, предложенный способ позволяет расщеплять нативный комплекс фермент пероксидаза + фенолы (хиноны), при этом сокращается время проведения гидролиза, упрощается способ перевода хинонов в свободные фенолы. 1 табл.

Формула изобретения RU 2 037 521 C1

СПОСОБ ОБРАБОТКИ ГИДРОЛИЗАТА ПЕРОКСИДАЗЫ ДЛЯ АНАЛИЗА ФЕНОЛОВ, предусматривающий приготовление гидролизата, восстановление образовавшихся хинонов до фенолов в присутствии амальгамы натрия, нейтрализацию неорганической кислотой и экстракцию, отличающийся тем, что для приготовления гидролизата пероксидазу хрена помещают в 1 н. соляную кислоту, нагревают при 105oC в течение 0,5 6,0 ч, полученный гидролизат подщелачивают до рН 10, а нейтрализацию проводят 1 н. соляной кислотой.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 1995 года RU2037521C1

Martin I.P., Richards S.I., Haider K
Properties and decomposition and binding action in soil of Humic acid" synthesized by epicoccum nigrum
Soil Sci Soc.Amer.Proceedings
Запальная свеча для двигателей 1924
  • Кузнецов И.В.
SU1967A1

RU 2 037 521 C1

Авторы

Андреева В.А.

Корень О.Г.

Даты

1995-06-19Публикация

1992-05-13Подача