Изобретение относится к биотехнологии, конкретно - к производству рекомбинантного гранулоцитарно-макрофагального колониестимулирующего фактора (ГМ-КСФ) в промышленном масштабе.
ГМ-КСФ стимулирует рост миелоидных клеток-предшественниц, а также усиливает эффекторную функцию зрелых моноцитов и нейрофилов. Его источниками являются T-лимфоциты, эндотелиальные клетки и фибробласты.
ГМ-КСФ стимулирует in vitro пролиферацию и дифференциацию стволовых клеток с образованием колоний нейрофильных и эозионофильных лейкоцитов и макрофагов. Он также вовлечен во многие биологические и иммунологические функции, такие как изменение морфологии эффекторных клеток, их подвижности, цитотоксической активности и фагоцитоза. Способность ГМ-КСФ стимулировать рост гранулоцитов и макрофагов делает возможным его клиническое использование для снижения побочных эффектов луче- и химиотерапии, усиления устойчивости к действию инфекций, терапии побочных эффектов при трансплантации костного мозга. Использование рекомбинантного ГМ-КСФ перспективно для ускорения восстановления кроветворения после проведения химиотерапии, оказывающей выраженное повреждающее действие на костный мозг. Также показано, что введение рекомбинантного ГМ-КСФ онкологическим больным приводит к активации эндогенных моноцитов и макрофагов.
Известен способ получения другого полипептида - гранулоцит-колониестимулирующего фактора с использованием штамма E. coli [1]. Способ предусматривает ферментацию прототрофного хозяина в присутствии >1 аминокислоты в количестве, усиливающем накопление полипетида. Возможно добавление в питательную среду треонина и/или лейцина в концентрации 1,25 - 5 г/л. Треонин и/или лейцин в указанных количествах ингибирует рост E. coli, что усиливает накопление полипетида. Возможно введение в питательную среду веществ, стимулирующих рост хозяина - гидролизата козеина или изолейцина. Накопление полипептида составляет 20 - 40 г/л.
Известен способ получения ГМ-КСФ с использованием штамма E. coli SG963 [2, прототип]. Трансформированные клетки E. coli SG963 одностадийно выращивают в объемах приблизительно 3 - 5 л при температуре 28oC на LB-среде с антибиотиками. Содержание ампициллина в среде 50 мг/мл, канамицина (10%) 200 мг/мл. Клетки выращивают до оптической плотности 30 ед., при длине волны 650 нм. После температурного шока при 42oC и введения дополнительной среды клетки растут еще три часа.
Анализ на продуктивность по ГМ-КСФ проводится в следующие промежутки времени: в момент засева, 4 ч спустя, через час после индуцирования высокой температурой (42oC) и через 3 ч после индуцирования. Анализы показывают, что накопление целевого гликополисахарида по данному способу составляет 8-9% от общего белка.
В данной работе не указан объем питательной среды, тип ферментера. Из условий процесса указана только температура, не указан объем среды, подаваемой после термошока.
Недостатками известного способа являются
- наличие стадии индуцирования;
- наличие дополнительной операции в виде внесения питательной среды после термошока (объем дополнительной среды не указан);
- невысокий выход целевого белка: 8-9% против 15% от суммарного белка по предлагаемому способу.
Задачей изобретения является разработка и поиск оптимальных условий промышленного культивирования, позволяющих обеспечить максимальное накопление гликопротеина ГМ-КСФ в клетках бактерий.
Поставленная задача решается тем, что в способе промышленного получения ГМ-КСФ путем глубинного культивирования рекомбинантного штамма-продуцента E. coli на стандартной LB-среде при температуре 25 - 37oC, согласно изобретению в качестве штамма-продуцента используют рекомбинантный штамм Escherichia coli SG 200500/p280 GM. Культивирование ведут глубинным методом в присутствии ампициллина и тетрациклина на питательной среде, содержащей гидролизат казеина, экстракт пекарских дрожжей и хлористый натрий при исходном значении pH 7,0 - 7,2. Оптимальной температурой культивирования является 29 ± 1oC и концентрации растворенного кислорода не менее 5,0% и не более 50% от насыщения. Культивирование проводят в три стадии с последовательным увеличением объема питательной среды от 50 мл до 100 л и достижением оптической плотности биомассы на каждой стадии не менее 1 OE при длине волны 540 нм и длине киветы 1 см. Трехстадийное культивирование проводят для получения оптимальной посевной концентрации и выделения максимального количества целевого продукта.
Штамм обуславливает синтез гликопротеина ГМ-КСФ около 15% от суммарного клеточного белка.
При использовании штамма E. coli SG 20050/p280 GM отсутствует необходимость применения термошока для индуцирования гликопротеина ГМ-КСФ.
Штамм разработан Всесоюзным научно-исследовательским институтом молекулярной биологии НПО "Вектор" (ГНЦ ВБ "Вектор") и задепонирован во Всесоюзной коллекции промышленных микроорганизмов института "ВНИИгенетика" под номером B-6613.
Способ осуществляют следующим образом.
Готовят питательную среду с антибиотиками на водопроводной воде, очищенной от механических и органических примесей методом ультрафильтрации на аппаратах разделительных с диаметром пор 5 микрон (например, ультрафильтрационный аппарат НПО "Химволокно").
Стерилизуют питательную среду известным методом стерилизующей фильтрации (например, используя патронные фильтры фирмы "Millipor" или "Владисарт").
Лабораторный ферментер объемом 5 л со стерильной питательной средой с антибиотиками засевают клетками E.coli SG 20050/p280 GM. Объем питательной среды 3,0 литра. Для засева ферментера используют колонии, выращенные на агаризованной питательной среде, суспендированные в 50 мл питательной среды. Культивирование ведут в течение 16-24 ч при постоянном перемешивании и аэрации, обеспечивающими концентрацию растворенного кислорода не менее 10 и не более 30% от насыщения. Начальное значение pH среды 7,0 - 7,2. В процессе культивирования значение pH не регулируют. Культивирование заканчивают при достижении оптической плотности не менее 1 OE при длине волны 540 нм и длине кюветы 1 см.
Выращенным инокулятом (оптическая плотность которого, измеренная на спектрофотометре, на менее 1 OE при длине волны 540 нм и длине кюветы 1 см) засевают промышленный ферментер вместимостью 250 л и культивируют при следующих условиях: объем питательной среды 100 л; температура 25 - 37oC; начальное значение pH 7,0 - 7,2; постоянном перемешивании и аэрации, обеспечивающих концентрацию растворенного кислорода не менее 10 и не более 30% от насыщения.
Сразу после засева и далее каждые 4 часа отбирают пробу культуральной жидкости и анализируют по следующим параметрам: величина оптической плотности, стерильность суспензии, pH.
Процесс заканчивают при достижении величины оптической плотности не менее 1 OE, при длине волны 540 нм.
Накопление гликопротеина ГМ-КСФ составляет при этом 20-70 мг на 1 литр питательной среды.
Существенными признаками изобретения являются:
- использование концентрации растворенного кислорода в пределах 10 - 40% от насыщения.
Данный промышленный способ получения ГМ-СКФ неизвестен из литературных источников, что свидетельствует о соответствии заявляемого изобретения критерию "новизна" и "изобретательский уровень".
Способ иллюстрируется следующими примерами конкретного выполнения.
Пример 1. Поиск оптимальной концентрации растворенного кислорода.
Культивирование в ферментере вместимостью 250 л проводят при постоянной температуре и разных значениях концентрации растворенного кислорода.
Объем питательной среды 100 л, температура культивирования 29±1oC, начальное значение pH 7,0 - 7,2. Результаты экспериментов приведены в таблице 1.
Из таблицы 1 видно, что максимальное накопление целевого гликопротеина идет при концентрации растворенного кислорода от 10 до 30% от насыщения.
Выход за рамки указанного диапазона ведет к значительному снижению выхода целевого продукта.
Пример 2. Выбор оптимальной температуры культивирования.
Культивирование в ферментере вместимостью 250 л проводят при различных значениях температуры и при неизменном значении концентрации растворенного кислорода.
Объем питательной среды 100 л, концентрация растворенного кислорода 10 - 40% от насыщения, начальное значение pH 7,0 - 7,2.
Результаты экспериментов указаны в таблице 2.
Из таблицы 2 видно, что максимальное накопление целевого гликопротеина идет при температуре 29 ± 3oC, снижение температуры культивирования до 25 ± 1oC ведет к значительному увеличению времени культивирования и к снижению продуктивности, повышение температуры до 37 ± 1oC ведет к резкому снижению продуктивности культуры по целевому белку.
Из таблицы 3 видно, что промышленный способ получения ГМ-КСФ человека с использованием штамма Escherichia coli SG 20050/p280 GM позволяет получить более высокий выход целевого белка при меньших материальных и энергетических затратах, чем при культивировании рекомбинантных бактерий E.coli SG963.
Список литературы
1. Заявка Великобритании N 2241505 "Ферментационный способ получения полипептидов", C 12 P 21/00, опубликовано РЖ ИСМ N 3, 93.
2. Международная заявка N 87/02060 "Human granulocyte-macrophage colony stimulating factor-like polypeptides and process for producing them in high yields in microbial cells", C 12 N 15/00, опубликовано РЖ ИСМ N 1, 88.2
Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано при производстве рекомбинантного гранулоцитарно-макрофагального колониестимулирующего фактора (ГМ-КСФ) в промышленном масштабе. Рекомбинантный штамм Escherichia coli SG 20050/р280 GМ выращивают на стандартной LB-среде при температуре 25-37°С. Выращивание ведут в присутствии ампициллина и тетрациклина. Концентрация растворенного кислорода 10-40% от насыщения. Культивирование может быть осуществлено при температуре 29+1°С. Культивирование может быть осуществлено в три стадии с последовательным увеличением объема питательной среды от 50 мл до 100 л. Изобретение позволяет обеспечить максимальное накопление гликопротеина ГМ-КСФ в клетках бактерий. 2 з.п. ф-лы, 3 табл.
РЕКОМБИНАТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК Р 280 GM, КОДИРУЮЩАЯ ПОЛИПЕПТИД СО СВОЙСТВАМИ ГРАНУЛОЦИТАРНО-МАКРОФАГАЛЬНОГО КОЛОНИЕСТИМУЛИРУЮЩЕГО ФАКТОРА ЧЕЛОВЕКА. ШТАММ ESCHERICHIA COLI SG20050/Р 280 GM - ПРОДУЦЕНТ ПОЛИПЕПТИДА СО СВОЙСТВАМИ ГРАНУЛОЦИТАРНО-МАКРОФАГАЛЬНОГО КОЛОНИЕСТИМУЛИРУЮЩЕГО ФАКТОРА ЧЕЛОВЕКА | 1994 |
|
RU2091488C1 |
WO 8702060 A1, 09.04.87 | |||
СПОСОБ ЛЕЧЕНИЯ СКОЛИОТИЧЕСКОЙ БОЛЕЗНИ У ДЕТЕЙ | 2002 |
|
RU2241505C2 |
ПРЕОБРАЗОВАТЕЛЬ ПОСТОЯННОГО НАПРЯЖЕНИЯ | 0 |
|
SU291294A1 |
СЫРОКОПЧЕНАЯ КОЛБАСА "СЕРВЕЛАТ ЗАВОЛЖСКИЙ" И СПОСОБ ЕЁ ПРОИЗВОДСТВА | 2002 |
|
RU2212159C1 |
DE 3545568 A1, 16.07.87 | |||
ПРИСПОСОБЛЕНИЕ К САМОЛЕТАМ ДЛЯ РАССЕВА ОТРАВЛЕННЫХ ПРИМАНОК | 0 |
|
SU281069A1 |
Авторы
Даты
2000-01-10—Публикация
1998-03-13—Подача