ВАКЦИНА ПРОТИВ САЛЬМОНЕЛЛЕЗА СВИНЕЙ Российский патент 2005 года по МПК A61K39/112 C12N1/20 A61P43/00 

Описание патента на изобретение RU2255763C2

Изобретение относится к ветеринарной биотехнологии, в частности к средствам специфической профилактики сальмонеллеза свиней.

Salmonella choleraesuis является широко распространенным возбудителем сальмонеллеза животных различных видов и в первую очередь свиней, а также одним из возбудителей пищевых токсикоинфекций человека.

Ущерб, наносимый Salmonella choleraesuis, обусловлен высокой смертностью поросят, широко распространенным носительством у взрослого поголовья, затратами на противоэпизоотические и лечебные мероприятия. Сложность борьбы с сальмонеллезом определяется быстрой адаптацией возбудителя как к антибиотикам, так и другим химиотерапевтическим препаратам. В этой связи на первое место в борьбе с сальмонеллезом выступает вакцинопрофилактика с применением вакцин из живых аттенуированных штаммов.

Известна вакцина против сальмонеллеза свиней из аттенуированного штамма Salmonella choleraesuis TS-177, который представляет собой "дикий" мутант, не имеющий генетических маркеров, кроме пониженной вирулентности [1].

Известна также вакцина против сальмонеллеза свиней из супрессорного ревертанта Salmonella choleraesuis ВГНКИ №9 [2]. Штамм Salmonella choleraesuis ВГНКИ №9 отличается от эпизоотических штаммов высокой частотой (до 50%) выделения стрептомицинзависимых мутантов, вырастающих на МПА с содержанием стрептомицина 300 мкг/см3, большая часть из которых остается вирулентной. Поэтому дифференцировать вакцинный штамм от эпизоотических весьма сложно из-за необходимости изучать большое количество мутантных клонов. Кроме того, штамм Salmonella choleraesuis ВГНКИ №9 получен в результате мутаций, которые замедлили скорость его размножения почти в два раза по сравнению с исходным штаммом. Это существенно увеличивает затраты при производстве вакцины на его основе.

Задача изобретения - создание вакцины против сальмонеллеза свиней на основе генетически маркированного аттенуированного штамма Salmonella choleraesuis, обладающего высокой скоростью роста, более выраженной иммуногенностью, низкой остаточной вирулентностью и стабильно сохраняющего эти свойства.

Поставленная задача решается получением вакцины, содержащей суспензию живых микробных клеток аттенуированного штамма Salmonella choleraesuis ВГНКИ SC 230-ДЕП, сахарозу, желатин и дистиллированную воду при следующем соотношении компонентов, об%:

Суспензия штамма Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП

с концентрацией 100-120 млрд. клеток в 1 см3 - 42,0-55,0

Сахароза - 5,0-7,5

Желатин - 1,5-2,0

Вода дистиллированная - остальное

Полученная вакцина в отличие от известных более эффективна в качестве средства специфической профилактики сальмонеллеза свиней, более экономична в производстве, имеет стабильные генетические маркеры.

Аттенуированный штамм Salmonella choleraesuis ВГНКИ SC 230-ДЕП получен методом инсерционного мутагенеза из вирулентного штамма Salmonella choleraesuis ВГНКИ №95.

Штамм Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП депонирован в коллекции микроорганизмов Всероссийского государственного научно-исследовательского института контроля, стандартизации и сертификации ветеринарных препаратов и имеет регистрационный номер SC 230-ДЕП.

Штамм Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП характеризуется следующими признаками.

Морфология. Бактериальные клетки представляют собой мелкие грамотрицательные палочки длиной 1,0-1,5 мкм и шириной 0,1-0,3 мкм, подвижные с перитрихиально расположенными жгутиками, спор и капсул не образуют.

Культуральные признаки. Клетки штамма хорошо растут на простых питательных средах. При росте на плотной питательной среде (МПА, среда Хоттингера, питательный агар “Дифко”) при температуре 37°С за 20-24 ч вырастают колонии диаметром 1,0-1,5 мм в S-форме: прозрачные, круглые, гладкие, выпуклые. При росте в жидких питательных средах наблюдается равномерное помутнение среды, характерное для бактерий “гладкого” типа.

По характеру роста на питательных средах штамм не отличается от эпизоотических штаммов Salmonella choleraesuis.

Ферментативные свойства. Сбраживает с образованием кислоты и газа глюкозу, мальтозу, галактозу, маннит, сорбит, ксилозу, рамнозу, дульцит, цитрат натрия, глицерин; не сбраживает сахарозу, лактозу, арабинозу, инозит, не образует индол, не свертывает и не пептонизирует молоко, образует сероводород.

Антигенная структура - типичная для сальмонелл серовара Salmonella choleraesuis. Агглютинируется сальмонеллезными монорецепторными "O"-сыворотками: 6, 7 и "Н"-сыворотками специфической фазы - "с" и неспецифической фазы - 1, 5.

Генетические маркеры. Штамм устойчив к рифампицину, стрептомицину и триметоприму. Маркеры устойчивости стабильно сохраняются в условиях периодического культивирования штамма в жидкой среде (10 последовательных пересевов) и после трех пассажей через белых мышей.

Вирулентность. 50%-ная летальная доза (LD50) для белых мышей массой 18-20 г составляет 10 млн микробных клеток (при внутрибрюшинном заражении).

Иммуногенность. Однократная подкожная иммунизация белых мышей массой 16-18 г живой культурой штамма Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП (103-106 микробных клеток) профилактирует развитие инфекционного процесса после внутрибрюшинного заражения (через 21 день после иммунизации) культурой вирулентного штамма серовара Salmonella choleraesuis ВГНКИ №95 в дозе 100 LD50. Выживает от 80 до 100% иммунизированных мышей при 100%-ной гибели неиммунизированных животных. ЕД50=1,4×103 микробных клеток.

Морфологические изменения в органах иммунизированных животных характеризуются диффузионной и очаговой пролиферацией лимфоидных элементов (увеличение региональных и мезентериальных лимфоузлов) без некробиотических процессов в паренхиматозных органах. Бактерии штамма Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП сохраняются в организме мышей в течение 15-22 дней.

Основные свойства штамма Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП и вакцины, полученной на его основе, иллюстрируются следующими примерами.

Пример 1. Для получения аттенуированного штамма Salmonella choleraesuis используют вирулентный штамм Salmonella choleraesuis ВГНКИ №95. Штамм предварительно маркируют мутацией rif, обеспечивающей устойчивость к рифампицину. Селекцию Rifr - мутантов проводят на плотной питательной среде, содержащей 100 мкг/см3 рифампицина, высевая 2×109 микробных клеток культуры штамма Salmonella choleraesuis ВГНКИ №95.

Для проведения инсерционного мутагенеза используют транспозон Тn7, входящий в состав векторной плазмады с температурочувствительной репликацией ДНК pVD3::Tn7 (Тc Ар Km Sm Tp). Передачу плазмиды в реципиентный штамм Salmonella choleraesuis ВГНКИ №95-Rif осуществляют в конъюгационном скрещивании: E.coli JC 1553 (pVD3::Tn7) x Salmonella choleraesuis 95-Rifr. Отбирают трансконъюганты Salmonella choleraesuis 95-Rif (pVD3::Tn7) с фенотипом Rifr (определяется rif-мутацией штамма) Tcr Apr Kmr (маркеры плазмиды pVD3) Tpr Smr (маркеры транспозона Tn7) [3].

Для отбора инсерционных мутантов бактерии Salmonella choleraesuis 95-Rif (pVD3::Tn7), выращенные при температуре 31°С в L-бульоне, высевают на плотную питательную среду, содержащую стрептомицин (40 мкг/мл) или триметоприм (50 мкг/мл), и инкубируют при температуре 43°С. У выросших клонов проверяют наличие неселектируемых маркеров векторной плазмиды (Тc Km Ар) и отбирают варианты, содержащие только маркеры Tn7 (Sm Tp), то есть клоны с инсерциями Tn7. Оценивают вирулентность инсерционных мутантов в опытах по внутрибрюшинному заражению белых мышей и отбирают штаммы с пониженной вирулентностью. Штамм Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП выявлен при анализе 60 инсерционных мутантов вирулентного штамма Salmonella choleraesuis ВГНКИ №95.

Пример 2. Изучение стабильности генетических маркеров аттенуированного штамма Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП.

Исследуют сохранение маркеров устойчивости к стрептомицину (Sm) и триметоприму (Tp) транспозона Tn7, инсерция которого привела к аттенуации штамма SC 230, в условиях периодического культивирования этого штамма в L-бульоне (LB) и в тех же условиях с последующим заражением белых мышей и анализом выделенной из инфицированного организма культуры. В обоих случаях культуру штамма после завершения эксперимента клонируют на плотной питательной среде и определяют наличие маркеров Smr и Трr не менее чем у 50 клонов. Результаты экспериментов представлены в таблице 1.

Пример 3. Определение остаточной вирулентности аттенуированного штамма.

Белых мышей массой 18-20 г заражают внутрибрюшинно суспензией агаровой культуры Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП; заражающие дозы 105, 106, 107, 108 микробных клеток. Контрольную группу животных заражают культурой вирулентного штамма Salmonella choleraesuis ВГНКИ №95. За животными наблюдают 21 сутки. В этих условиях эксперимента LD50 Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП, рассчитанная по методу Кербера, колеблется от 5×106 до 5×107 клеток, LD50 штамма Salmonella choleraesuis ВГНКИ №95 - 10-100 клеток. Таким образом, остаточная вирулентность штамма Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП для белых мышей в 100000 раз ниже по сравнению с вирулентностью исходного штамма.

Пример 4. Протективные свойства аттенуированного штамма Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП определяют в экспериментах на белых мышах. Белым мышам массой 16-18 г подкожно вводят суспензию аттенуированного штамма в дозе 1×104 микробных клеток. Через 20 дней иммунизированных и неиммунизированных животных заражают 100 LD50 вирулентного штамма Salmonella choleraesuis ВГНКИ №95.

Сравнительные результаты трех опытов по определению протективных свойств аттенуированного штамма Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП представлены в таблице 2.

Пример 5. Способность аттенуированного штамма Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП профилактировать сальмонеллез свиней определяют на поросятах. Поросятам 20-25-дневного возраста внутримышечно вводят суспензию аттенуированного штамма в дозе 5×108 микробных клеток. Через 21 сутки иммунизированных и неиммунизированных животных внутрибрюшинно заражают культурой вирулентного штамма Salmonella choleraesuis ВГНКИ №95 в дозе 4×1010 микробных клеток. Результаты двух опытов представлены в таблице 3. Иммунизация поросят аттенуированным штаммом Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП предохраняет от гибели после заражения вирулентным штаммом 90% животных при 100%-ной гибели животных в контрольной группе.

Пример 6. Изготовление вакцины против сальмонеллеза из штамма Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП.

В реактор с бульоном Хоттингера (300 л) вносят матровую расплодку микробных клеток штамма из расчета 35 млн/см3. Центрифугируют при 15 тыс. об/мин в течение 60 минут. Бактериальную массу смешивают с желатино-сахарозовым стабилизатором в соотношении 1:2.

Вакцину расфасовывают в ампулы по 4 см3 и лиофилизируют.

Вакцина серии 1 имеет следующий состав, об %:

Суспензия штамма Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП

с концентрацией 100-120 млрд. клеток в 1 см3 - 55,0

Сахароза - 7,5

Желатин - 2,0

Вода дистиллированная - остальное

Вакцина серии 2 имеет следующий состав, об%:

Суспензия штамма Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП

с концентрацией 100-120 млрд. клеток в 1 см3 - 42,0

Сахароза - 5,0

Желатин - 1,5

Вода дистиллированная - остальное

Пример 7. Безвредность предложенной вакцины по величине переносимой дозы изучена на белых мышах, морских свинках и поросятах. Данные опытов суммированы в таблице 4.

Из данных, представленных в таблице 4, видно, что переносимая доза вакцины, не вызывающая гибели мышей, в 5×105 и 1,0×105 раз ниже минимальной смертельной дозы вирулентного штамма Salmonella choleraesuis ВГНКИ №95 соответственно при подкожном и пероральном заражении.

Пример 8. Способ профилактики сальмонеллеза свиней включает двукратное введение вакцины поросятам в возрасте 10-12 и 18-20 дней в дозе 500 млн микробных клеток.

Проведено испытание вакцин из штамма Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП и Salmonella choleraesuis ВГНКИ №9 для профилактики сальмонеллеза свиней.

Из данных, представленных в таблице 5, следует, что заболеваемость поросят, иммунизированных предложенной вакциной из штамма Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП, в 2 раза ниже, а сохранность на 8,6% выше по сравнению с теми же показателями для группы поросят, иммунизированных вакциной из штамма Salmonella choleraesuis ВГНКИ №9.

Источники информации

1. Ветеринарное законодательство. T.1.- M.: Колос, 1973.- С.554.

2. А.с. СССР №1577116, 1988 г.

3. Воложанцев Н.В., Светоч Э.А., Борзилов А.И. и др. Получение вакцинных штаммов сальмонелл с помощью инсерционного мутагенеза //Ветеринария - 1997, №9, с.20-24.

Таблица 1
Стабильность наследования генетических маркеров в аттенуированном штамме Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП
Условия культивирования% клонов, содержащих маркерАгглютинация сывороткой O7Sm 10 последовательных пересевов в LB100100+10 пересевов в LB+3-кратный пассаж через белых мышей100100+



Таблица 2
Протективные свойства штамма Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП в экспериментах на мышах
Группа мышейОпыт №Количество мышей в опытеРезультаты зараженияпалиживыИммунизированные120119320416520020Итого 60555Контрольные220200420200620200Итого 60600

Таблица 3
Протективные свойства штамма Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП в экспериментах на поросятах
Группа поросятОпыт №Количество поросят в опытеРезультаты зараженияпалиживыИммунизированные15143505Итого 1019Контрольные25504550Итого 10100

Таблица 4
Безвредность вакцины для лабораторных животных и поросят
ЖивотныеСпособ введения вакциныПереносимая доза (к-во микр. кл. вакцинного штамма)Минимальная смертельная доза вирулентного штамма (к-во микр. кл.)Белые мыши (масса 16-18 г)Подкожно1,0×10720Перорально1,0×10101,5×105Морские свинки (масса 300-350г) Поросята (12-15 дневные)Подкожно2,0×10101,0×109Перорально1,0×10111,0×1010

Таблица 5
Эффективность живых вакцин против сальмонеллеза свиней при применении предложенного способа профилактики сальмонеллеза свиней
Вид вакциныВзято в опыт головЗаболело голов (%)Пало голов (%)Сохранность, %Вакцина против сальмонеллеза свиней из штамма Salmonella choleraesuis SC 230-ДЕП67031(4,6)19(2,8)92,5Сухая живая вакцина из штамма Salmonella choleraesuis №981077(9,5)53(6,5)83,9

Похожие патенты RU2255763C2

название год авторы номер документа
ВАКЦИНА ПРОТИВ САЛЬМОНЕЛЛЕЗА СВИНЕЙ, СПОСОБ ЕЕ ИЗГОТОВЛЕНИЯ И СПОСОБ ПРОФИЛАКТИКИ САЛЬМОНЕЛЛЕЗА СВИНЕЙ 1988
  • Шустер Б.Ю.
  • Малахов Ю.А.
  • Колесников А.Я.
  • Гараев И.М.
  • Седов В.А.
  • Самохвалов А.П.
  • Панов В.С.
  • Кириллова В.В.
RU1577116C
ВАКЦИНА ПРОТИВ САЛЬМОНЕЛЛЕЗА КУР И СПОСОБ ПРОФИЛАКТИКИ САЛЬМОНЕЛЛЕЗА КУР 1992
  • Малахов Ю.А.
  • Шустер Б.Ю.
  • Светоч Э.А.
  • Воложанцев Н.В.
  • Борзилов А.И.
  • Ленев С.В.
  • Косарева Л.Н.
  • Харламов В.Т.
  • Яковлев С.С.
RU2030916C1
ШТАММ БАКТЕРИЙ Salmonella enteritidis № 22, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ВАКЦИН И ДИАГНОСТИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ 2002
  • Воронин Е.С.
  • Девришов Д.А.
  • Бедоева З.М.
  • Пименов Е.В.
  • Кузнецов С.М.
  • Шведов В.В.
RU2218177C2
ИНАКТИВИРОВАННАЯ ЭМУЛЬСИН-ВАКЦИНА ПРОТИВ САЛЬМОНЕЛЛЕЗА ПОРОСЯТ 1997
  • Иренков И.П.
  • Котова Ю.П.
RU2163142C2
ШТАММ БАКТЕРИЙ SALMONELLA DUBLIN, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ВАКЦИНЫ ПРОТИВ САЛЬМОНЕЛЛЕЗА ТЕЛЯТ 1984
  • Шустер Б.Ю.
  • Малахов Ю.А.
SU1197186A1
ПРЕПАРАТ ПРОТИВ САЛЬМОНЕЛЛЕЗА КУР И СПОСОБ ЛЕЧЕНИЯ И ПРОФИЛАКТИКИ САЛЬМОНЕЛЛЕЗА КУР 1992
  • Ленев С.В.
  • Малахов Ю.А.
  • Светоч Э.А.
  • Шустер Б.Ю.
RU2026082C1
ВАКЦИНА ПРОТИВ ИНФЕКЦИОННОГО АТРОФИЧЕСКОГО РИНИТА И ПАСТЕРЕЛЛЕЗА СВИНЕЙ ИНАКТИВИРОВАННАЯ, СПОСОБ ЕЁ ПОЛУЧЕНИЯ 2021
  • Беляева Александра Сергеевна
  • Лаишевцев Алексей Иванович
  • Капустин Андрей Владимирович
  • Гулюкин Алексей Михайлович
  • Якимова Эльвира Алексеевна
RU2763991C1
ШТАММ БАКТЕРИЙ Salmonella dublin №19, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ВАКЦИН И ДИАГНОСТИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ 2002
  • Воронин Е.С.
  • Девришов Д.А.
  • Бедоева З.М.
  • Пименов Е.В.
  • Кузнецов С.М.
  • Шведов В.В.
RU2218176C2
Поливалентная инактивированная вакцина против стрептококкозов свиней, способ ее получения и применения 2021
  • Алипер Тарас Иванович
  • Капустин Андрей Владимирович
  • Лаишевцев Алексей Иванович
  • Терехов Павел Юрьевич
  • Шемельков Евгений Владимирович
RU2761379C1
СПОСОБ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ВАКЦИННОГО ПРЕПАРАТА ПРОТИВ ИНФЕКЦИОННЫХ БОЛЕЗНЕЙ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ЭТИОЛОГИИ ЖИВОТНЫХ И ПТИЦ 2000
  • Русалеев В.С.
  • Гневашев В.М.
  • Прунтова О.В.
  • Гусев А.А.
  • Селиверстов В.В.
RU2173560C1

Реферат патента 2005 года ВАКЦИНА ПРОТИВ САЛЬМОНЕЛЛЕЗА СВИНЕЙ

Изобретение относится к ветеринарии. Вакцина против сальмонеллеза свиней содержит суспензию клеток аттенуированного вакцинного штамма Salmonella choleraesuis ВГНКИ SC 230-ДЕП при следующем соотношении компонентов, об.%: Суспензия штамма Salmonella choleraesuis ВГНКИ SC 230-ДЕП с концентрацией 100-120 млрд. клеток в см3 42,0-55,0; сахароза 5,0-7,5; желатин 1,5-2,0; вода дистиллированная - остальное. Заболеваемость поросят, иммунизированных вакциной, в 2 раза ниже, а сохранность - на 8,6% выше по сравнению с теми же показателями для поросят, иммунизированных известной вакциной из штамма Salmonella choleraesuis ВГНКИ №9. Вакцина более экономична в производстве и имеет стабильные генетические маркеры. 5 табл.

Формула изобретения RU 2 255 763 C2

Вакцина против сальмонеллеза свиней, содержащая суспензию клеток вакцинного штамма, сахарозу, желатин и дистиллированную воду, отличающаяся тем, что в качестве вакцинного штамма она содержит аттенуированный штамм Salmonella choleraesuis ВГНКИ SC 230-ДЕП при следующем соотношении компонентов, об.%:

Суспензия штамма Salmonella choleraesuis ВГНКИ SC 230-ДЕП с концентрацией 100-120 млрд.клеток в 1 см3 42,0-55,0

Сахароза 5,0-7,5

Желатин 1,5-2,0

Вода дистиллированная Остальное

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 2005 года RU2255763C2

ВАКЦИНА ПРОТИВ САЛЬМОНЕЛЛЕЗА СВИНЕЙ, СПОСОБ ЕЕ ИЗГОТОВЛЕНИЯ И СПОСОБ ПРОФИЛАКТИКИ САЛЬМОНЕЛЛЕЗА СВИНЕЙ 1988
  • Шустер Б.Ю.
  • Малахов Ю.А.
  • Колесников А.Я.
  • Гараев И.М.
  • Седов В.А.
  • Самохвалов А.П.
  • Панов В.С.
  • Кириллова В.В.
RU1577116C
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АТТЕНУИРОВАННОГО ШТАММА БАКТЕРИЙ SALMONELLA И ВАКЦИНА 1992
  • Ян Джордж Чарльз
  • Стивен Невилле Чэтфилд
  • Нейл Фрэзер Фейрветер
RU2126447C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АТТЕНУИРОВАННОГО ШТАММА БАКТЕРИЙ SALMONELLA 1988
  • Гордон Доуган
  • Стивен Невил Чэтфилд
  • Карлос Хормече
RU2114172C1
СПОСОБ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ВАКЦИНЫ ПРОТИВ САЛЬМОНЕЛЛЕЗА СВИНЕЙ 2000
  • Гусев А.А.
  • Толокнов А.С.
  • Русалеев В.С.
  • Гневашев В.М.
  • Прунтова О.В.
  • Колотилова Т.Г.
RU2162340C1

RU 2 255 763 C2

Авторы

Светоч Э.А.

Воложанцев Н.В.

Панин А.Н.

Гусев В.В.

Малахов Ю.А.

Ленев С.В.

Заерко В.И.

Сурмило А.П.

Даты

2005-07-10Публикация

2003-06-04Подача