Способ определения производных катехоламинов в моче Российский патент 2019 года по МПК G01N33/48 G01N33/50 

Описание патента на изобретение RU2688184C1

Изобретение относится к способу определения производных катехоламинов в биологической жидкости (моче), который может найти применение в клинической диагностике.

Известен способ определения катехоламинов в моче методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с флуориметрическим детектированием (Nohta, H. High-performance liquid chromatographic determination of urinary catecholamines by direct pre-column fluorescence derivatization with 1,2-diphenylethylenediamine / H. Nohta, A. Mitsuiand, Y. Ohkura // J. Chromatogr. 1986. V. 380. P. 229-231), предусматривающий предварительную дериватизацию катехоламинов. Подготовку проб осуществляли путем добавления к 100 мкл мочи 1 мл 2.0 М фосфатного буфера (pH 6.2). Смесь пропускали через патрон CM-Sephadex С25. Элюирование осуществляли 800 мкл 2.0 М хлоридом натрия. Далее добавляли 1.2 мл этанола и 100 мкл 0.1 М раствора дериватизирующего агента (1,2-дифенилэтилендиамин). Смесь инкубировали при 37°C в течение 40 минут. Супернатант вводили в систему ВЭЖХ.

В качестве аппаратурного оформления использовали систему высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ), состоящую из насоса, автоматического дозатора проб, термостата и флуориметрического детектора. Для хроматографического разделения использовали колонку TSK-gel ODS-120T (250 mm × 4.6 mm, 5 μm). В качестве подвижной фазы использовали систему - диоксан : трис(гидроксиметил)аминометан гидрохлорид. Анализ вели при скорости потока подвижной фазы 1.0 мл/мин.

Недостатком указанного способа является продолжительность получения производных катехоламинов из-за необходимости инкубирования реакционной смеси.

Известен также способ определения в моче катехоламинов методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с флуориметрическим детектированием (van der Hoorn, F.A.J. Improved measurement of urinary catecholamines by liquid-liquid extraction, derivatization and high-performance liquid chromatography with fluorometric detection // F.A.J, van der Hoorn, F. Boomsma, A.J. M.A.D.H. Schalekamp // J. Chromatogr. 1991. V. 563. P. 348-355). Дериватизацию катехоламинов проводили с использованием 1,2-дифенилэтилендиамина. Подготовку проб осуществляли путем проведения жидкость-жидкостной экстракции мочи. После упаривания органического слоя, пробу перерастворяли в 200 мкл ацетонитрила. Далее добавляли 50 мкл N,N-бис(2-гидроксиметил)глицина и 100 мкл дериватизирующего агента. Смесь инкубировали при 37°C в течение 60 минут. Супернатант вводили в систему ВЭЖХ. В качестве аппаратурного оформления использовали систему высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ), состоящую из насоса, автоматического дозатора проб, термостата и флуориметрического детектора. Для хроматографического разделения использовали колонку MicroSpher С18 (100 mm × 4.6 mm, 3 μm). В качестве подвижной фазы использовали систему - ацетат натрия : ацетонитрил : метанол. Анализ вели при скорости потока подвижной фазы 1.0 мл/мин.

Недостатком указанного способа является также продолжительность получения производных катехоламинов из-за длительного инкубирования реакционной смеси при повышенных температурах и наличия стадии предварительной подготовки проб мочи путем проведения жидкость-жидкостной экстракции.

Известен способ определение колистина в плазме человека методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с флуориметрическим детектированием (Li, J.A simple method for the assay of colistin in human plasma, using pre-column derivatization with 9-fluorenylmethyl chloroformatein solid-phase extraction cartridges and reversed-phase high-performance liquid chromatography / J. Li, R.W. Milne, R.L. Nation, J.D. Turnidge, K. Coulthard, D.W. Johnson // J. Chromatogr. B. 2001. V. 761. P. 167-175) с предварительной его дериватизацией на патроне для твердофазной экстракции. Подготовку проб осуществляли путем нанесения на патрон для твердофазной экстракции подготовленного образца плазмы, промывали патрон 1 мл карбонатного буфера (pH 10) и пропускали 30 мкл дериватизирующего агента (100 Мм 9-флуоренил-метоксикарбонил хлорида в ацетонитриле). Патрон выдерживали при комнатной температуре 10 минут. Элюирование осуществляли 900 мкл ацетона, после чего к элюату добавляли 600 мкл раствора борной кислоты (0.2 М), смесь перемешивали в течение 2 минут. Супернатант вводили в систему ВЭЖХ.

Для этого используют систему высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ), состоящую из насоса, автоматического дозатора проб, термостата и флуориметрического детектора. Для хроматографического разделения использовали колонку Ultrasphere С18 (250 mm × 4.6 mm, 5 μm). В качестве подвижной фазы использовали систему - ацетонитрил : тетрагидрофуран : вода. Анализ вели при скорости потока подвижной фазы 1.0 мл/мин.

Особенностью проведения анализа является отбор крови для получения плазмы, что представляет собой инвазивную процедуру, сопряженную со стрессом и требует привлечения квалифицированного медицинского персонала, в то время как отбор мочи является неинвазивной процедурой.

Наиболее близким аналогом к заявляемому способу является способ определения катехоламинов в моче методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с флуориметрическим детектированием (Chan, E.C.Y. High-performance liquid chromatographic assay for catecholamines and metanephrines using fluorimetric detection with pre-column 9-fiuorenylmethyloxycarbonyl chloride derivatization / E.C.Y. Chan, P.Y. Wee, P.Y. Ho, P.C. Ho // J. Chromatogr. B. 2000. V. 749. P. 179-189), включающий дериватизацию катехоламинов. Подготовку проб осуществляли путем добавления к 100 мкл мочи 100 мкл 1.0 М боратного буфера (pH 8.0) и 200 мкл дериватизирующего агента (9-флуоренил-метоксикарбонил хлорид). Смесь выдерживали при комнатной температуре 15 минут. Затем к смеси добавляли 800 мкл хлороформа, встряхивали на горизонтальном шейкере при 200 об/мин в течение 5 мин, затем центрифугировали при 500 об/мин в течение 2 мин. Удаляли верхний водный слой и дополнительно экстрагировали 800 мкл хлороформа. Объединенные экстракты (1600 мкл) упаривали в токе азота. Перерастворяли в 400 мкл реакционной смеси (100 мкл воды, 100 мкл буфера, 200 мкл ацетонитрила). Супернатант вводили в систему ВЭЖХ.

В качестве аппаратурного оформления использовали систему высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ), состоящую из насоса, автоматического дозатора проб, термостата и флуориметрического детектора. Для хроматографического разделения использовали колонку Spherisorb С8 (150 mm × 4.6 mm, 5 μm). В качестве подвижной фазы использовали систему - раствор уксусной кислоты : ацетонитрил. Анализ вели при скорости потока подвижной фазы 1.0 мл/мин. Способ определения потребует не менее 80 мин и подразумевает неселективную дериватизацию пробы с дальнейшей экстракцией всех слабополярных и неполярных компонентов, присутствующих в пробе.

Структуры полученных дериватизированных производных подтверждали использованием масс-спектрометра LCQ MS (Thermo Fisher Scientific, Германия).

Недостатками указанного способа являются продолжительность подготовки и анализа проб, его трудоемкость, что обусловлено проведением процедуры жидкость-жидкостной экстракции производных катехоламинов.

Техническим результатом предлагаемого изобретения является упрощение способа, сокращение времени анализа, снижение трудоемкости.

Заявляемый технический результат достигается тем, что в способе определения производных катехоламинов в моче используют систему ультра высокоэффективной жидкостной хроматографии (УВЭЖХ) с тандемным масс-спектрометрическим детектированием, состоящую из тройного квадрупольного масс-спектрометра с нагреваемым источником электрораспылительной ионизации и жидкостного хроматографа, включающего бинарный градиентный насос, автоматический дозатор проб и термостат. Для хроматографического разделения используют аналитическую колонку, позволяющую работать с соединениями в широком диапазоне pH и при низких давлениях. В качестве подвижной фазы используют двухкомпонентную систему, а именно, ацетонитрил: 0,1% муравьиную кислоту, обеспечивающих эффективное разделение и симметричность пиков определяемых компонентов благодаря высокой элюирующей силе ацетонитрила. Скорость потока подвижной фазы поддерживают постоянной равной 0.45 мл/мин, что обеспечивает возможность реализации быстрого хроматографического разделения без потери в эффективности и селективности, наблюдаемые при увеличении скорости потока подвижной фазы с использованием колонок подобного типа. Детектирование определяемых веществ проводят в режиме мониторинга заданных реакций. Пробоподготовку осуществляют, пропуская образец исследуемой мочи через патрон для твердофазной экстракции, добавляя боратный буфер, имеющий pH 9.5, и дериватизурующий агент - 9-флуоренил-метоксикарбонил хлорид, в результате чего происходит образование следующих веществ:

Реакция протекает на патроне при комнатной температуре в течение 20 минут, после чего элюируют 5% раствором ацетата аммония в метаноле, обеспечивающим наибольшую элюирующую силу, и обеспечивающим полноту извлечения определяемых веществ с патрона для твердофазной экстракции. Ионизацию осуществляют при атмосферном давлении, при напряжении на капилляре 4000 В; температуре капилляра 320°C электрораспылением в режиме регистрации положительных ионов.

Отличительными признаками заявляемого способа от наиболее близкого аналога, взятого за прототип, являются:

- проведение процедуры дериватизации на патроне для твердофазной экстракции;

- применение масс-спектрометрического детектирования.

Заявляемые отличительные признаки позволяют сократить время пробоподготовки и получать менее полярные производные катехоламинов непосредственно на патроне для твердофазной экстракции, что особенно важно для их количественного анализа в режиме обращенно-фазовой высокоэффективной жидкостной хроматографии, поскольку обеспечивает их лучшее удерживание на сорбенте.

На рисунке 1 представлены зависимости полноты протекания реакции от времени дериватизации: (а) - для 9-флуоренил-метоксикарбонил адреналина; (б) - для 9-флуоренил-метоксикарбонил октопамина; (в) - 9-флуоренил-метоксикарбонил дофамина. На рисунке 2 - хроматограммы результатов анализов проб мочи, полученных от добровольцев: (а) - 9-флуоренил-метоксикарбонил октопамина, (б) - 9-флуоренил-метоксикарбонил дофамина, (в) - 9-флуоренил-метоксикарбонил адреналина.

Изобретение может быть осуществлено следующим образом.

Готовят стандартные растворы катехоламинов 1 мг/мл путем растворения точной навески вещества в 0.1% муравьиной кислоте, из которых затем готовят рабочие растворы путем последовательного разбавления ацетонитрилом. Готовят раствор дериватизирующего агента (9-флуоренил-метоксикарбонил хлорида) 1 мг/мл путем растворения точной навески вещества в ацетонитриле. Для элюирования готовят 5% раствор ацетата аммония в метаноле.

Проводят оптимизацию масс-спектрометрического детектирования путем напуска определяемых веществ в камеру источника с использованием шприцевого ввода, что возможно только для источников с атмосферным типом ионизации, проводят оптимизацию по следующим параметрам: энергия соударений, давление газа-мишени в ячейке соударений, напряжение на экстрагирующей линзе.

При определении наилучших условий осуществления действий, позволяющих получить технический результат, изучали зависимость полноты протекания реакции от времени дериватизации (рис. 1). Установлено, что реакция дериватизации полностью завершается через 20 минут при комнатной температуре.

После оптимизации условий масс-спектрометрического детектирования проводят подготовку проб.

Образец исследуемой мочи пропускают через патрон для твердофазной экстракции, наносят на патрон боратный буфер и 9-флуоренил-метоксикарбонил хлорид. Патрон оставляют при комнатной температуре в течение 20 минут. Проводят элюирование 5% раствором ацетата аммония. Элюат переносят в виалы и анализируют с использованием УВЭЖХ-МС/МС.

Пример конкретного выполнения.

Образец исследуемой мочи, объемом 1 мл пропускают через патрон для твердофазной экстракции ISOLUTE SCX 100 mg 1 ml (Biotage UK, Великобритания), промывают патрон 1 мл раствором 1% муравьиной кислоты в воде и 1 мл метанола, далее пропускают 500 мкл боратного буфера (pH 9.5) и 500 мкл дериватизирующего агента (раствор 9-флуоренил-метоксикарбонил хлорида 1 мг/мл), после чего патрон выдерживают при комнатной температуре в течение 20 минут. Элюирование производных катехоламинов осуществляют 5% раствором ацетата аммония в метаноле. Элюат переносят в виалы.

Анализ ведут при скорости потока подвижной фазы 0.45 мл/мин. Для разделения применяют градиентное элюирование при следующих условиях: 0 мин 5% А; 1.7 мин 40% А; 6.5 мин 10% А, 10.5 мин 5% А, общее время анализа с учетом стабилизации системы перед вводом следующего образца составляет 10.5 мин. Ионизацию при атмосферном давлении осуществляют электрораспылением в режиме регистрации положительных ионов. Детектирование определяемых веществ проводят в режиме мониторинга заданных реакций (табл. 1). Далее проводят обработку полученных данных с применением программного обеспечения Xcalibur версии 2.2 (Thermo Scientific, США).

В качестве вспомогательного оборудования могут быть использованы: одноканальные механические дозаторы с объемом дозирования 100 мкл, 250 мкл, 500 мкл (Biohit, Финляндия), одноканальный механический дозатор с варьируемым объемом дозирования 100-1000 мкл (Eppendorf, Германия).

Предлагаемый способ позволяет определять производные катехоламинов в моче человека, полученные в процессе твердофазной экстракции методом УВЭЖХ-МС/МС (рис. 2).

Полный цикл подготовки и анализа проб с использованием предложенного способа занимает не более 40 мин и позволяет провести предварительную очистку пробы от матричных компонентов благодаря применению твердофазной экстракции, в то время как способ, описанный в прототипе, потребует не менее 80 мин и подразумевает неселективную дериватизацию пробы с дальнейшей экстракцией всех слабополярных и неполярных компонентов, присутствующих в пробе. Помимо этого, описанные процедуры позволяют повысить чувствительность определения.

Предлагаемый способ является новым, обладает изобретательским уровнем и может широко применяться в практике клинической диагностики при установлении и лечении различных заболеваний.

Похожие патенты RU2688184C1

название год авторы номер документа
Способ подготовки проб мочи на принципах мицеллярной экстракции для определения содержания адреналина 2022
  • Булатов Андрей Васильевич
  • Вах Кристина Степановна
  • Каспер Светлана Васильевна
RU2800474C1
Способ определения массовых концентраций фенола и пирокатехина в крови методом высокоэффективной жидкостной хроматографии 2022
  • Зайцева Нина Владимировна
  • Уланова Татьяна Сергеевна
  • Карнажицкая Татьяна Дмитриевна
  • Старчикова Мария Олеговна
  • Зверева Лада Александровна
RU2786509C1
СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ ДИМЕТИЛТЕРЕФТАЛАТА В МОЧЕ МЕТОДОМ ЖИДКОСТНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ 2010
  • Зайцева Нина Владимировна
  • Уланова Татьяна Сергеевна
  • Карнажицкая Татьяна Дмитриевна
  • Кислицина Анастасия Витальевна
RU2425380C1
Способ определения мельдония в моче человека 2017
  • Азарян Алиса Андреевна
  • Темердашев Азамат Зауалевич
  • Киселева Наталья Владимировна
RU2639475C1
СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ БЕНЗ(А)ПИРЕНА В МОЧЕ МЕТОДОМ ЖИДКОСТНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ 2011
  • Зайцева Нина Владимировна
  • Уланова Татьяна Сергеевна
  • Карнажицкая Татьяна Дмитриевна
  • Кислицина Анастасия Витальевна
  • Пшеничникова Екатерина Олеговна
  • Пермякова Татьяна Сергеевна
RU2466406C1
Способ определения гидроксилированных полициклических ароматических углеводородов в моче 2023
  • Алексеенко Антон Николаевич
  • Журба Ольга Михайловна
  • Шаяхметов Салим Файзыевич
  • Меринов Алексей Владимирович
RU2814310C1
ТЕСТ-СИСТЕМА ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ НИЗКОМОЛЕКУЛЯРНЫХ МАРКЕРОВ НЕЙРОМЕДИАТОРНОГО ОБМЕНА В ОБРАЗЦАХ БИОЛОГИЧЕСКИХ ЖИДКОСТЕЙ, СПОСОБ ЕЕ ПОЛУЧЕНИЯ И СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ КАТЕХОЛАМИНОВ И ИХ МЕТАБОЛИТОВ С ЕЕ ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ 2017
  • Македонская Мария Игоревна
  • Еремина Ольга Евгеньевна
  • Веселова Ирина Анатольевна
  • Шеховцова Татьяна Николаевна
RU2708917C2
Способ количественного определения антигипертензивных лекарственных веществ в плазме крови 2022
  • Мыльников Павел Юрьевич
  • Щулькин Алексей Владимирович
  • Селезнёв Сергей Владимирович
  • Попова Наталья Михайловна
  • Якушин Сергей Степанович
  • Якушева Елена Николаевна
RU2803887C1
Способ количественного определения глицина в биологических лекарственных препаратах методом гидрофильной высокоэффективной жидкостной хроматографии 2019
  • Рунова Ольга Борисовна
  • Коротков Михаил Геннадиевич
  • Устинникова Ольга Борисовна
RU2700831C1
Способ количественного определения салицилатов в плазме крови 2016
  • Абаимов Денис Александрович
  • Сариев Абрек Куангалиевич
  • Танашян Маринэ Мовсесовна
  • Шабалина Алла Анатольевна
  • Теленкова Надежда Григорьевна
  • Спавронская Лариса Рафаиловна
RU2622996C1

Иллюстрации к изобретению RU 2 688 184 C1

Реферат патента 2019 года Способ определения производных катехоламинов в моче

Изобретение относится к способу определения производных катехоламинов в биологической жидкости (моче), который может найти применение в клинической диагностике. Способ определения производных катехоламинов в моче методом высокоэффективной жидкостной хроматографии отличается тем, что пробоподготовку образца осуществляют, пропуская образец исследуемой мочи через патрон для твердофазной экстракции ISOLUTE SCX, добавляют раствор 9-флуоренил-метоксикарбонил хлорида и выдерживают 20 минут при комнатной температуре, а затем смывают 5% раствором ацетата аммония в метаноле, далее полученный раствор анализируют УВЭЖХ, в качестве элюента используют двухкомпонентную систему, ацетонитрил: 0,1% муравьиная кислота, при скорости потока 0.45 мл/мин. Детектирование производных катехоламинов проводят с использованием тройного квадрупольного масс-спектрометра с нагреваемым источником электрораспылительной ионизации. Изобретение обеспечивает упрощение способа, сокращение времени анализа и снижение трудоемкости без потери в эффективности и селективности. 1 з.п. ф-лы, 2 ил., 1 табл., 1 пр.

Формула изобретения RU 2 688 184 C1

1. Способ определения производных катехоламинов в моче методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с использованием системы ультра высокоэффективной жидкостной хроматографии (УВЭЖХ) с тандемным масс-спектрометрическим детектированием, состоящей из тройного квадрупольного масс-спектрометра с нагреваемым источником электрораспылительной ионизации и жидкостного хроматографа, включающего бинарный градиентный насос, автоматический дозатор проб и термостат, для хроматографического разделения использовали колонку, позволяющую работать с соединениями в широком диапазоне рН и при низких давлениях, в качестве дериватизирующего агента используют 9-флуоренил-метоксикарбонил хлорид, отличающийся тем, что пробоподготовку образца осуществляют, пропуская образец исследуемой мочи через патрон для твердофазной экстракции ISOLUTE SCX, добавляют раствор 9-флуоренил-метоксикарбонил хлорида и выдерживают 20 минут при комнатной температуре, а затем смывают 5% раствором ацетата аммония в метаноле, далее полученный раствор анализируют УВЭЖХ, в качестве элюента используют двухкомпонентную систему, ацетонитрил: 0,1% муравьиная кислота, при скорости потока 0.45 мл/мин, детектирование производных катехоламинов проводят с использованием тройного квадрупольного масс-спектрометра с нагреваемым источником электрораспылительной ионизации.

2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что ионизацию осуществляют при атмосферном давлении, при напряжении на капилляре 4000 В, температуре капилляра 320°С электрораспылением в режиме регистрации положительных ионов.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 2019 года RU2688184C1

СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ КАТЕХОЛАМИНОВ В МОЧЕ 2000
  • Ивановская Е.А.
  • Гусакова А.М.
  • Карпов Р.С.
RU2194987C2
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ КОНЦЕНТРАЦИИ АДРЕНАЛИНА, НОРАДРЕНАЛИНА, ДОФАМИНА И ДИОКСИФЕНИЛАЛАНИНА В ОДНОЙ ПОРЦИИ БИОЛОГИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА 2000
  • Подковкин В.Г.
  • Панина М.И.
RU2174231C1
УСТРОЙСТВО ДЛЯ ЗАЩИТЫ ОТ НАПУСКА ТЯГОВЫХ КАНАТОВ ШАХТНОЙ ПОДЪЕМНОЙ УСТАНОВКИ 1999
  • Чудогашев Е.В.
  • Дмитриев Е.А.
  • Желтовский Е.Ю.
  • Корняков М.В.
RU2161118C1
СИДОРОВА А.А
и др., Хроматографическое и электрофоретическое определение катехоламинов, метанефринов и 3,4- дигидроксифенилаланина в моче и плазме крови, Сорбционные и хроматографические процессы, 2009, 9, 6, стр
Фонический нумератор и коммутатор с отпадающими клапанами 1922
  • Коваленков В.И.
SU774A1
ДУТОВ А.А
и др., Одновременный анализ свободных катехоламинов и метанефринов в моче методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с флюориметрическим детектированием и твердофазной экстракцией на полимерном сорбенте (Purosep-200), Клиническая и лабораторная диагностика, 2015, стр
Печь для непрерывного получения сернистого натрия 1921
  • Настюков А.М.
  • Настюков К.И.
SU1A1

RU 2 688 184 C1

Авторы

Азарян Алиса Андреевна

Темердашев Азамат Зауалевич

Дмитриева Екатерина Владимировна

Гашимова Элина Мансуровна

Даты

2019-05-21Публикация

2018-04-03Подача