Изобретение относится к химии по лимеров, а именно к способу получения полимерных гидрофильных носителей для хроматографии, и может быть использовано в высокоэффективной жидкостной хроматографии для разделения природных и синтетических, .полимеров по молекулярным массам (М.М).
Цель изобретения - повьппение разрешающей способности носителей,
снижение их неспецифической сорбции и упрощение процесса.
П р и м р 1 . В трехгорлый термостатируемый реактор, снабженный механической мешалкой, помещают раствор 15 мае.ч, поливинилпирроли- дона (М.М, «350000) в 400 мае.ч. дистиллированной воды, при перемешивании вводят раствор, состоящий из 15 мае.ч, пентаэритритолдиметакри- лата (ПЭДМ).
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
ГИДРОФИЛЬНЫЙ ПОЛИМЕРНЫЙ СОРБЕНТ | 1992 |
|
RU2057763C1 |
Способ выделения ингибитора ангиотензин-1-превращающего фермента из яда животного происхождения | 1990 |
|
SU1730088A1 |
СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ БЕЛКА 39 кДа НАРУЖНОЙ МЕМБРАНЫ ВОЗБУДИТЕЛЯ МЕЛИОИДОЗА | 2002 |
|
RU2208445C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ КАПСУЛЬНОГО ВЕЩЕСТВА ВОЗБУДИТЕЛЯ МЕЛИОИДОЗА | 2001 |
|
RU2231364C2 |
СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ CU, ZN-СУПЕРОКСИДДИСМУТАЗЫ ЧЕЛОВЕКА | 1994 |
|
RU2111754C1 |
Способ получения ферритинспецифичных антител | 1987 |
|
SU1505195A1 |
Способ получения ферритина | 1987 |
|
SU1588758A1 |
Способ получения ферритин-специфических антител | 1987 |
|
SU1503508A1 |
СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ СУПЕРОКСИДДИСМУТАЗЫ | 2001 |
|
RU2186848C1 |
Способ очистки микробной эстеразы | 1991 |
|
SU1839190A1 |
Изобретение относится к области. химии полимеров и может быть использовано для разделения высокомолекулярных соединений с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии. Изобретение позволяет получать полимерные гидрофильные носители для хроматографии, обладающие прочностью до давления 30 Мра, низкой неспецифической сорбцией (% элюции с носителя 97-100%) и высокой разрещающей способностью простым и быстрым способом (отсутст- стадия обработки щелочью, а время синтеза сокращено до 5 ч), что достигается использованием для суспензионной сополимеризации f- глицидилме- такрилата и пентаэритритолдимет акриг. лата в качестве органического растворителя для сомономеров смеси изаами- лового спирта,н-бутанола и додекано- , ла,взятых в массовом соотношении
О
п
СНгОН
CHj-C-C-O-GHa-CM
.1 f
сня он
0 -- i
CHi-0-CHa-C CHa 0-CHj CK-CHi-0-C C CHt
I
ШгОН
1 он
СНз
15 мае.4.глицидилметакрилата (ГМА)
О
СНо С-С-О-СНг-СН-Ша I rt/
СНг
и 1 мае.ч. динитрила азоизомаеляной кислоты (ДАК) в смеси органических растворителей, состоящей из 70 мае.ч изоамилового спирта, 3 мае.ч. н-бута нола и 2 мае.ч. додеканола (маесовое соотношение 35:l,5:l). Полимеризацию проводят в токе аргона при 7Q°C в течение 16ч. Гранулы носителя отфильт ровьшают на етеклянном фильтре, промывают 5 раз горячей водой и этанолом и фракционируют на еитах, выделяя фракции 5-10, 20-50 и 50г70 мкм Носитель еодержит 167„ океирановых циклов, представляет еобой белые еферические гранулы. 100 мае.ч. носителя помещают в термоетатируемый реактор, снабженный механической мешалкой, выливают 200 мае.ч, водного раствора, содержащего 50 ч.эпокси- эфира сорбита, поднимают температуру до 80 С и рН до 13 введением концентрированного раствора ..щелочи и перемешивают, в течение 5 ч. Далее ре- . акционную смесь охлаждают до комнатной температуры, отфильтровывают гранулы носителя и отмывают водой до нейтрального значения рН. Гранулы носителя хранят в 60%-ном этаноле в закрытых флаконах или с включением, антисептика (азида натрия) в количе- етве О,02%. Гидрофилированный носитель (Солоза ) имеет облаеть
СНгОН
0 --
CHa 0-CHj CK-CHi-0-C C CH
гОН
1 он
СНз
Фракционирования декетранов 100- 10000 дальтон (д.).
Ноеитель вьвдерживает давление до 30 Мра.
П р и м е р 2. Все операции проводят по примеру 1, используя дня гид- рофилизации носителя 200 мае.ч. водного раствора, содержащего 50 мае.ч. гомополисахарида с М.М. 1QOOO,
П р и м е р 3. Все операции проводят по примеру 1, но в качестве растворителя для мономеров, .используют систему: 50 мае.ч. изоамилового спирта, 3 мае.ч. н-бутанола и 12 мае.ч. додеканола (маееовое соотношение
30:1,5:6) . Область фракционирования
декетранов для ноеителя (Солоза HJ-50) составляет 100-20000д.
Пример4. Все операции проводят по примеру 1, но в качестве
поверхноетно-активного вещеетва ие- пользуют поливиниловый епирт (М.М. 15000),содержащий 10-12% неомьшен- ных ацетатных групп, а раетворение мономеров и инициатора проводят в
;емееи 60 мае.ч. циклогекеанола, 10 мае.ч. изоамилового спирта и 5 мае.ч. монохлорбенэола (маееовое соохношение 5:2,5:3,0). Область фракционирования декетранов для ноеителя
(Солоза ) составляет 1000- 200000 д.
Пример5. Все операции проводят по примеру 3, но в качестве растворителя для мономеров используют
еиетему из 40 мае.ч. До1клогекеанола, 20 мае.ч. изоамилового епирта и 15 мае.ч. монохлорбензола (маееовое соотношение (10:7,5:20). Облаеть фракционирования декетранов для ноеисоставляет
теля (Солоза ) 1000-300000 д.
П р и м е р 6. Все операции проводят по примеру 3, но в качестве рас верителя для мономеров и инициатора используют смесь 30 мае.ч. циклогек- санола, 10 мае.ч. изоамилового спирта и 35 мае.ч. моноклорбензола (массовое соотношение 5:17,5 slSj. Область фракционирования декстранов для носителя (Солоза НУ-65) составляет 10000-1000000 д.
Пример. Все операции проводят по примеру 3, но в качестве растворителя : для мономеров и инициатора используют систему: 2,5 мае.ч. циклогексанола, 3 мае.ч. изоамиловог спирта, 70 мае.ч. монохлорбензола (массовое соотношение 1,5:35;1). Область фракционирования декстранов для носителя (Солрза HJ-75 ) составляет 100000-40x10.
В табл.1-3 приводятся данные по элюции носителями белков, структуре носителей и их физико-химические свойства.
Условия проведения экспериментов по декстрановой порометрии одинаковы для всех носителей: колонка 10,Ох хО,9 см; элюент - дистиллированная вода; скорость подвижной фазы 0,3- 0,4 мл/мин; количество вводимой проб 50-100 мкл; концентрация декстранов в пробе 0,1% или 1 мл/г; детектор - проточньй рефрактометр; температура диаметр гранул носителя 50- 70 мкм.
На фиг.1-4 приводятся зависимости характеризующие работу носителей, калибровочные кривые элюции белков носителями и хроматограммы разделения белков на носителях.
График кривых на фиг.1 показывает зависимость коэффициента распределения (Kj) от логарифма молекулярной массы (Ig My,) декстранов для носителей Солоза HJ и TSK-HW, где
(кривые 1-5) - Солоза Hj-40; 50;
55; 60; 65 соответственно; (--кривые 3-5) - TSK HW-55; 60; 65 соответственно; (кривая 6) - носитель
полученный при использовании циклогексанола для растворения мономеров и инициатора.
На фиг,2 и 3 показаны калибровочные кривые элюции белков с носителей Солоза Hj-60 и TSK-HW-50 соответствей- но.
Условия Элюции: колонка 0,9 х X 27,7 см; злюент - фосфатный буфер, рН 6,6, 0,1 KCt; скорость подвижной- фазы 23,3 мл/чfСМ ;7;етектор-UV 250;; 206 нм; зернение геля 30-60 мкм.
На фиг.4 показаны хроматограммы разделения смесей белков на носителе Солоза ну-60: а. 1 - голубой декстран,2-ферритин,3 -у-глобулин; -р -лактоглобулин,5 - цитохром С; 6.1 - ферритин (примесь),2 -.ферритин,
3- В -лактоглобулин, 4 - рйбонукле- аза; в. 1 - голубой декстран, 2 У-глобулин, 3 - р -.лактоглобулин,.
4- цитохром С, 4 - фрагмент цито- хрома С.
Условия разделения: колонка 1,5 з X 37см; элюент - 1/30 М фосфатный 25 буфер, рН 7,0 + 0,2 М КСf; скорость
0,6 мл/мин; температура .тор - UV 280 нм.
20 Cj детек
Формула изобретения
Способ получения полимерных гидрофильных носителей для хроматографии путем радикальной водно-суспензионной сополимеризации раствора соли глицидилметакрилата, пентаэрит- ритолдиметакрилата и инициатора в органическом растворителе в присутствии водорастворимого стабилизатора суспензии и последующей обработки суспензии сополимера гидроксилсодержащим соединением, отличающийся тем, что, с целью повышения разрешающей способности носителей, снижения их неспецифической сорбции и упрощенид
процесса, в качестве органического . растворителя используют смесь изoaми лового спирта, н-бутанола и додекано- ла в массовом соотношении (30-35): :1,5:(1-6) или смесь изоамилового
спирта, монохлорбензола и циклогек- санола в массовом соотношении ( 10):(2,5-35,0):(1-30), а в качестве гидроксилсодержащего соединения - мо- ноэпоксиэфир сорбита или гомополисахарида.
513989026
Таблица 1
Элюция белков с носителя Солоза Hf-55 и прототипа
Данные, по параметрам структуры носителей Солоза HJ и TSK-HW
1
Прототип
3
Прототип
Прототип
5
Прототип
Прототип
Прототип
Солоза HJ-40 TSK-HW Солоза Ну-50
TSK-HW-50 Солоза HJ-55
TSK-HW-55 Солоза Иу-бО tSK-HW-60 Солоза
TSK-HW-65 Солоза
TSK-HW-75
100 - 210
100 - 1,5-10
100 - 6-10
5 «10 - 810
1 Ю - 6-10
I lo - 710
2-10- 9-10
100 - 10 -10 50
100 - 810
200 - 2«10 60
500 - 210
1-10 - 2-10 130
З Ю 300
1-10
5«10 - 5 io МО 290 940 1 -10 А-10
5 510 I 10 - ЫО
Т а б л и ц а 2
100 - 10 -10 50 1,1
100 - 810
200 - 2«10 60 1,1
500 - 210
1-10 - 2-10 130 1,6
,85
Физико-химические свойства предлагаемых и известных носителей
Солоза Hj-60
TSK-HW-60
Солоза Hj-65
TSK-HW-65
1,46
1,46 1,46
1,47
ТаблицаЗ
86,2
80,7 58,5
32,1
2,0 1,4
1,4
ч
iifi
1398902
Декстран 2,
Фврритин 1(50 000 д
Г 8/toSyAUH 1600009
AMdyftUH бьчий $70009 fi/ibdyMuff яичный tiSOOO 9
uffompuncuHoseH 250009 Muos/ioduH 17000 У
Фбрритин kSOQOQi
ЛпьОвпаза ISO 0000
ЯаьЬунин бьний 67. Ш 9 Ааьбинин яичный 50009 хинЪтрипсинвем 2SQ09i fiuoMOouH f7 900 9
а
/б
Vt
.
Способ получения сорбента для очистки белков | 1982 |
|
SU1061828A1 |
Печь для непрерывного получения сернистого натрия | 1921 |
|
SU1A1 |
Hatono Н | |||
Recent progress in gel-packing materials and detections for modern liqnid chromatography in Japan | |||
- I.Chromatogr, 1985, v.322, p.227-236 | |||
Патент CIIIA № 4256843, КЛ | |||
Топка с несколькими решетками для твердого топлива | 1918 |
|
SU8A1 |
Дверной замок, автоматически запирающийся на ригель, удерживаемый в крайних своих положениях помощью серии парных, симметрично расположенных цугальт | 1914 |
|
SU1979A1 |
Видоизменение прибора для получения стереоскопических впечатлений от двух изображений различного масштаба | 1919 |
|
SU54A1 |
Авторы
Даты
1988-05-30—Публикация
1986-12-29—Подача