Рекомбинантная плазмидная ДНК @ 24, кодирующая синтез рестриктазы и метилазы S @ 11 и штамм бактерий ЕSснеRIснIа coLI - продуцент рестриктазы и метилазы S @ 11 Советский патент 1990 года по МПК C12N15/00 

Описание патента на изобретение SU1539205A1

Изобретение относится к биотехнологии, в частности к генетической инженерии, и представляет собой реком- бинатную плазмидную ДНК, обуславливающую синтез рестриктазы и метила- зы SsoII и штамм, содержащий эту ре- комбинантную ДНК - продуцент рестриктазы и метилазы SsoII.

Рестриктаза и метилаза SsoII узнает 5-членную вырожденную последовательность CCNGG, гидролизует ДНК с. образованием 5-членньтх липких концов, обеспечивая высокую эффективность при лигировании, и метилирует центральный цитозин в последовательности узнавания CCNGG, образуя модифицированное основание 5-метилцитозин.

Целью изобретения является увеличение синтеза рестриктазы и метилазы SsoII.

Поставленная цель достигается плазмидой d 24 и штаммом E.coli В834, содержащим эту плазмиду.

Плазмида d 24, кодирующая рестриктазу и метилазу SsoII. состоит из следующих элементов:

плазмидная ДНК вектора pUC19 размером 2,69 тпо;

плазмидная ДНК Р4 из S.sormei47-, кодирующая рестриктазу и метилазу SsoII, размер которой 4,4 тпо.

Штамм - продуцент рестриктазы и метилазы SsoII получен трансформацией клеток E.coli B834 плазмидой d24.

ел

00

со

ю

Ln

Содержание рестриктазы SsoII в сконструированном штамме равно 350000 ед./ биомассы клеток, метилазы 400000 ед.

Пример 1. Плазмидную ДНК из штамма Е. coli XS13, содержащего две плазмиды; Р4 и Р9, выделяют щелочным методом. Отделение ДНК плазмиды Р4 от высокомолекулярной ДНК Р9 проводят методом колоночной хроматографии на ДЕАЕ-целлюлозе.

Полученный препарат плазмиды Р4 и препарат вектора pUC19 используют для конструирования плазмидыd24, которое проводят следующим образом.

0,5 мкг ДНК вектора pUC19 инкубируют с эндонуклеазой рестрикции SalGl (5 ед.) в буфере, А (100 мМ NaCl, 50 мМ трис-HCl, рН 7,5; 10 мМ MgCl2, 1 мМ дитиотрейтол). 5 мкг плазмиды Р4 инкубируют с рестрикта- зой SalGl (10 ед.) в буфере А.Реакции проводят при 37°С 1 ч. После инкубации пробы прогревают при 65°С 15 мин. Анализ полноты гидролиза про- водят с помощью электрофореза.

Соединение ДНК плазмиды и вектора проводят в буфере: 0,05 М трис-HCl, рН 7,4, 0,01 М 1 мМ дитиотрейтол, О,1 мМ АТФ с добавлением ДНК- лигазы Фага Т4 (1000 ед/мл) из расчета 0,5 мкл фермента на 5 мкг ДНК в течение 12 ч при 10°С.

. Полученную смесь соединенных фрагI ментов используют при трансформации клеток E.coli PS200. Трансформацию проводят следующим образом. 50 мкл суспензии клеток E.coli PS200 вносят в 20 мкл жидкой питательной среды LB и выращивают при 37°С до титра кл/мл. Клетки охлаждают во льду 10 мин и центрифугируют при 5000g в течение 10-15 мин при 4°С, затем тща- тельно сливают супернатант. осадок суспендируют в 0,5 мл 0,1 М СаС1. Клетки выдерживают во льду 10-12 ч, после чего используют для трансформации.

На 200 мкл суспендированных клеток E.coli PS200 берут менее 20 мкл соединенных фрагментов ДНК и инкуби - руют 40 мин во льду, затем в течение 90 с при 42°С и опять 2 мин во льду, добавляют 1,8 мл бульона LB и инкубируют 1 ч при 37°С. Затем 2 мл суспензии трансформированных клеток центрифугируют в течение Зев цент

5

о

0

5

рифуге Эппендорф при комнатной температуре и ресуспендируют в 100 мкл LB с 0,01 М MgS04. В пробу добавляют 100 мкл суспензии фага b 221 с титром 2, и инкубируют в течение 20 мин при 37°С. Затем клетки высевают на чашки с ампициллином в концентрации 50 мкг /мл .

Из клеток клонов, выросших на чашках с ампициллином, выделяют плаз- мидную ДНК, обозначенную d 24 и содержащую в своем составе вектор pUCl 9, несущий ген ВГа, определяющий устойчивость к ампициллину, и плазмидную ДНК Р4, несущую гены рестриктазы и метилазы SsoII. Выделенную плазмидную ДНК d 24 подвергают рестрикцион- ному анализу.

Пример 2. Определение присутствия рестриктазы и метилазы SsoII в штамме E.coli PS200, содержащем плазмиду d 24.

0,1 г биомассы E.coli PS200, содержащей плазмиду d 24, суспендируют в 170 мкл 0,01 мМ MJNCli, инкубируют при покачивании 2 ч при 4°С, центрифугируют при 10000 g 15 мин, затем 10 мкл супернатанта добавляют в пробу, содержащую 1 мкг бактериофага Л в 30 мкл буфера А. Пробу инкубируют 1 ч при 37°С, после чего анализируют электрофорезом в 1,2%- ном агарозном геле. Картина рестрикции в случае штамма-Е. coli PS200, несущего плазмиду d 24, характерна цля рестриктазы SsoII.

1 мкг плазмидной ДНК d 24, выделенной из штамма E.coli PS200, обрабатывают 10 ед. реетриктирующей эн- донуклеазы SSoII в буфере А в течение 2 ч при 37°С. Электрофорез показывает, что ДНК плазмидыd 24 при такой обработке не фрагментируется, в то время как плазмида pUC19 дает картину гидролиза, типичную для плазмиды pUC19, обработанной рестрикта- зой SsoII. Эти данные свидетельствуют о защите мест узнавания рестриктазы SsoII в d 24 метилированием.

Определение эффективности посева бактериофага Л b 221 на клетках штаммов , синтезирующих рестриктазу и метилазу SsoII, проводят следующим образом.,

Штамм E.coli PS200, несущий плазмиду d24, определяющую синтез рестриктазы и метилазы SsoII, снижает эффективность посева бактериофага

на 5 порядков по сравнению с эффективностью посева на нетрансформированном штамме E.coli PS200. После пассажа на клетках штамма E.coli PS200, трансформированных плазмидой d 24, фаг b 221 высевали на клетках штамма E.coli PS200, несущие плазмиду d 24 и штамма E.coli XS13, синтезирующих рестриктазу и метилазу SsoII. Снижения эффективности посева при этом не происходило, что свидетельствует о модификации ДНК фага ЛЬ 221, происходящей в клетках E.coli PS200, трансформированных плазмидой d24.

Пример 3. Плазмиду d 24 т трансформируют в штамме E.coli B834 по методу, описанному в примере 1, и

Активность рестриктазы SsoII определяют в серийных десятикратных разведениях супернатанта, 1 мкг ДНК фа- ,га А в 30 мкл буфера А (см.пример 1) инкубируют с 2 мкл каждого разведения. Уровень активности рестриктазы SsoII составляет 350000 ед.на 1 г биомассы.

Ю Активность метилаэы определяют в реакционной смеси с общим объемом 100 мкл, содержащей 1 мкг акцепторной ДНК, 0,5 МкКи 3H-S-аденозилме- тионина и 5 мкл каждого из десятикрат15 ных разведений сулернатанта. Инкубацию проводят в течение различных временных промежутков от J до 24 ч при 37°С. Пробы наносят на фильтры

GF/C, осаждают 5%-ной трихлоруксус- получают штамм - продуцент рестриктазы20 ной кислотой, отмывают 70%-ным эта- и метилазы SsoII.нолом, высушивают и просчитывают раШтамм Escherichiai. coli B834, не- диоактивность в толуоловом сцинтил- сущий плазмиду d 24 - продуцент реет- ляторе. За единицу ферментативной риктазы и метилазы SsoII, характери- активности принимают количество фер- зуется следующими признаками. 25 мента, обеспечивающего полную модиКультурально-морфологические. Клет- фикацию 1 мкг акцепторной ДНК за ки прямые, палочковидные, неподвижные, 24 ч.

грамотрицательные, лактозопозитивные. Уровень активности метилазы, опре- При рассеве на чашки с 1,3%-ным МПА деленный в штамме E.coli B834, несу- рост в виде отдельных колоний, иног- 30 щим плазмиду d24, соответствует

400000 ед. на 1 г биомассы.

В таблице приведены значения уров- ней синтеза рестриктазы и метилазы SsoII в штаммах E.coli, полученных 35 трансформацией плазмиды d 24.

Изобретение позволяет получить урода в R-форме с неровными краями. Хо- jpomo растет на плотных и жидких питательных средах (МПА, МПБ, LB-буль- он и LB-arap).

Физиолого-биохимические. Клетки растут в пределах 4-45 С при оптимуме рН 6,8-7,5. Штамм разлагает глюкозу, лактозу, маннит с образованием кислоты, не разлагает сахарозу, сбраживает мальтозу, ксилозу, сорбит, дульцит, рамнозу, образует индол и сероводород, проявляет устойчивость к ампициллину (до 100 мкг/мл), обусловленную наличием плазмиды d 24.

Пример 4. Культуру клеток E.coli B834, несущих ппазмидуd 2Ь, выращивают в 1 л среды LB с 50 мкг/мл ампициллина при 37°С до титра 4 10 кл/мл. Клетки осаждают центрифугированием (5000 g, 15 мин).

1 г сырой биомассы суспендируют в 5 мл буфера, содержащего 50 мМ трис- НС1, рН 7,6; 0,1 М NaCl-, 7 мМ 2-мер- каптоэтанола, 100 мкг/мл лизоцима и выдерживают при 0°С 10 мин. Клетки разрушают ультразвуком. Экстракт получают центрифугированием при 2 С (48000) в течение 1 ч.

вень синтеза рестриктазы и метилазы SsoII в штамме, содержащем плазмиду d24, не менее 350000 и 400000 ед. на 4Q 1 г биомассы соответственно.

Формула изобретения

1. Рекомбинантная плазмидная ДНК 45 d24, кодирующая синтез рестриктазы и метилазы SsoII мол.м. 4,5 ЭДД и размером 7,1 тпо, содержащая:

плазмидная ДНК вектора pUC19 размером 2,7 тпо;

до плазмидная ДНК Р4 с геном рестриктазы и метилазы SsoII размером 4,4тпо$

по одному участку расщепления эн- донуклеазами Bglll, Clal, EcoRV, SacII, PstI, SphI, Findlll, SaGI, Kpnl, Smal, 55 BamHI, Xbalj

по два участка узнавания эндонук- леазами - CfrlOl, Said;

четыре участка расщепления EcoRI;

bla ген, кодирующий /г -лактамазу;

Активность рестриктазы SsoII определяют в серийных десятикратных разведениях супернатанта, 1 мкг ДНК фа- ,га А в 30 мкл буфера А (см.пример 1) инкубируют с 2 мкл каждого разведения. Уровень активности рестриктазы SsoII составляет 350000 ед.на 1 г биомассы.

Активность метилаэы определяют в реакционной смеси с общим объемом 100 мкл, содержащей 1 мкг акцепторной ДНК, 0,5 МкКи 3H-S-аденозилме- тионина и 5 мкл каждого из десятикрат5 ных разведений сулернатанта. Инкубацию проводят в течение различных временных промежутков от J до 24 ч при 37°С. Пробы наносят на фильтры

вень синтеза рестриктазы и метилазы SsoII в штамме, содержащем плазмиду d24, не менее 350000 и 400000 ед. на 1 г биомассы соответственно.

Формула изобретения

1. Рекомбинантная плазмидная ДНК d24, кодирующая синтез рестриктазы и метилазы SsoII мол.м. 4,5 ЭДД и размером 7,1 тпо, содержащая:

плазмидная ДНК вектора pUC19 размером 2,7 тпо;

плазмидная ДНК Р4 с геном рестриктазы и метилазы SsoII размером 4,4тпо$

по одному участку расщепления эн- донуклеазами Bglll, Clal, EcoRV, SacII, PstI, SphI, Findlll, SaGI, Kpnl, Smal, BamHI, Xbalj

по два участка узнавания эндонук- леазами - CfrlOl, Said;

четыре участка расщепления EcoRI;

bla ген, кодирующий /г -лактамазу;

фрагмент гена lac, соединенный с синтетическим полилинкером, расположенный по обе стороны клонированной ДНК плазмиды РА;

t гены рестриктазы и метилазы SsoII, расположенные на клонированной ДНК

плазмиды Р4, фланкированной сайтами SalGl, детерминирующие синтез рестриктазы и метилаэы SsoII.

2. Штамм бактерий Fscherichia coll ГЙСК-178 - продуцент рестриктазы и метилазы SsoII.

Похожие патенты SU1539205A1

название год авторы номер документа
Рекомбинантная плазмидная ДНК @ 33, кодирующая метилазу S @ 11, и штамм бактерий ЕSснеRIснIа coLI - продуцент метилазы S @ 11 1988
  • Дебов Сергей Сергеевич
  • Карягина Анна Станиславовна
  • Лунин Владимир Глебович
  • Лопатина Надежда Георгиевна
  • Грубер Ирина Мироновна
  • Поляченко Вера Михайловна
  • Никольская-Санович Ирина Игоревна
SU1532585A1
Рекомбинантная плазмидная ДНК рУК11, кодирующая рестриктазу и метилазу Е coRII, способ ее конструирования и штамм бактерий ЕSснеRIснIа coLI - продуцент рестриктазы и метилазы Е coRII 1987
  • Косых В.Г.
  • Витенене И.В.
  • Бурьянов Я.И.
SU1453896A1
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК ECO 1831KI, ОПРЕДЕЛЯЮЩАЯ СИНТЕЗ ЭНДОНУКЛЕАЗЫ РЕСТРИКАЦИИ ECO 1831KI, ШТАММ БАКТЕРИЙ ESCHERICHIA COLI - ПРОДУЦЕНТ ЭНДОНУКЛЕАЗЫ РЕСТРИКЦИИ ECO 1831KI 1992
  • Кравец Анатолий Николаевич[Ua]
  • Солонин Александр Сергеевич[Ru]
  • Деньмухаметов Марат Минхатович[Ru]
  • Захарова Марина Викторовна[Ru]
  • Белецкая Ирина Викторовна[Ru]
  • Синева Елена Валерьевна[Ru]
RU2054042C1
РЕКОМБИНАТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК PECO29KI, ОПРЕДЕЛЯЮЩАЯ СИНТЕЗ ЭНДОНУКЛЕАЗЫ РЕСТРИКЦИИ ECO29KI И ШТАММ ESCHERICHIA COLI - ПРОДУЦЕНТ ЭНДОНУКЛЕАЗЫ РЕСТРИКЦИИ ECO29KI 1992
  • Кравец Анатолий Николаевич[Ua]
  • Солонин Александр Сергеевич[Ru]
  • Перцев Александр Владимирович[Ru]
  • Захарова Марина Викторовна[Ru]
  • Белецкая Ирина Викторовна[Ru]
RU2054037C1
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК PRO PF 5, ОПРЕДЕЛЯЮЩАЯ СИНТЕЗ КАПСУЛЬНОГО АНТИГЕНА FI ВОЗБУДИТЕЛЯ ЧУМЫ И ПРОТЕКТИВНОГО АНТИГЕНА ВОЗБУДИТЕЛЯ СИБИРСКОЙ ЯЗВЫ, И СПОСОБ КОНСТРУИРОВАНИЯ РЕКОМБИНАНТНОЙ ПЛАЗМИДНОЙ ДНК PRO PF5 1995
  • Алимов А.П.
  • Павлов В.М.
RU2110575C1
Способ получения плазмидной рекомбинантнойдНК, СОдЕРжАщЕй гЕНы РЕСТРиКТАзыи МЕТилАзы 1979
  • Косых Валерий Григорьевич
  • Бурьянов Ярослав Иванович
  • Баев Александр Александрович
SU852939A1
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК P UA BC22, КОДИРУЮЩАЯ МОДИФИЦИРОВАННЫЙ АКТИВАТОР ПЛАЗМИНОГЕНА УРОКИНАЗНОГО ТИПА, НЕТРАНСЛИРУЕМЫЙ ДНК-ЭЛЕМЕНТ - ИСКУССТВЕННАЯ МЕЖГЕННАЯ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЬ МГП14 И ШТАММ БАКТЕРИЙ ESCHERICHIA COLI - ПРОДУЦЕНТ МОДИФИЦИРОВАННОГО АКТИВАТОРА ПЛАЗМИНОГЕНА УРОКИНАЗНОГО ТИПА 1999
  • Бибилашвили Р.Ш.
  • Белогуров А.А.
  • Дельвер Е.П.
  • Гурский Я.Г.
  • Минашкин М.М.
  • Чигаева С.М.
  • Григорьева Н.В.
  • Логунова Н.А.
  • Мялкин А.А.
RU2140453C1
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК PSTH 2191, КОДИРУЮЩАЯ СИНТЕЗ СОМАТОТРОПИНА ЧЕЛОВЕКА, И ШТАММ ESCHERICHIA COLI - ПРОДУЦЕНТ СОМАТОТРОПИНА ЧЕЛОВЕКА 1986
  • Рубцов П.М.
  • Свердлова П.С.
  • Чернов Б.К.
  • Чупеева В.В.
  • Шляпников С.В.
  • Скрябин К.Г.
  • Баев А.А.
SU1387414A1
Рекомбинантная плазмидная ДНК @ 435,кодирующая синтез ДНК-лигазы фага Т 4.способ ее конструирования и штамм @ . @ ВКМ в-1449-продуцент ДНК-лигазыфага Т4 1981
  • Таняшин В.И.
  • Солонин А.С.
  • Трояновский Б.М.
  • Баев А.А.
SU1122003A1
Рекомбинантная плазмидная ДНК @ ,способ конструирования плазмидной ДНК и штамм-продуцент эндонуклеазы рестрикции @ 1983
  • Баев Александр Александрович
  • Кравец Анатолий Николаевич
  • Солонин Александр Сергеевич
  • Кузьмин Николай Петрович
  • Мороз Антонина Федоровна
  • Глатман Лариса Иосифовна
  • Таняшин Валерий Иванович
SU1130602A1

Реферат патента 1990 года Рекомбинантная плазмидная ДНК @ 24, кодирующая синтез рестриктазы и метилазы S @ 11 и штамм бактерий ЕSснеRIснIа coLI - продуцент рестриктазы и метилазы S @ 11

Изобретение относится к биотехнологии, в частности к генетической инженерии, и представляет собой рекомбинантную плазмидную ДНК, обуславливающую синтез рестриктазы и метилазы SSOII и штамм, содержащий эту рекомбинантную ДНК - продуцент рестриктазы и метилазы SSOII. Цель изобретения - увеличение уровня синтеза рестриктазы и метилазы SSII. Изобретение позволяет получить штамм с продукцией рестриктазы и метилазы SSOII - 350000 и 400000 ед. на 1 г сырой биомассы соответственно. 1 табл.

Формула изобретения SU 1 539 205 A1

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 1990 года SU1539205A1

Молекулярная генетика, микробиология и вирусология, 1987
Способ гальванического снятия позолоты с серебряных изделий без заметного изменения их формы 1923
  • Бердников М.И.
SU12A1

SU 1 539 205 A1

Авторы

Дебов Сергей Сергеевич

Карягина Анна Станиславовна

Лунин Владимир Глебович

Лопатина Надежда Георгиевна

Грубер Ирина Мироновна

Поляченко Вера Михайловна

Никольская-Санович Ирина Игоревна

Даты

1990-01-30Публикация

1988-03-18Подача