Изобретение относится к биохимии и может найти пр именение в клинической диагностике.
Цель - повышение чувствительности способа.
Пример 1. Культивирование Chainia purpurogena DSM-43156.
В колбе для встряхивания организм ( культивируют в сложной среде указанного состава:5 г дрожжевого экстракта; 3 г пептона (типично переваренный); 2 г NaCl; 0,24 г MgS04-«7HtO; 0,014 г СаС1а х7НгО; 2 г глюкозы; 10 г саркозина; 1 л воды; рН 7,0. Выращенная при 28°С культура через .30 ч показывает активность около 400 V/л. Пример 2. Выделение саркози- ноксидаэы Е.С.1„5.3.1 из Chainia purpurogena.
О4
2,9 кг влажной массы Chainia pur- purogena DSM-43156 (получена в результате обработки 95 л культуры) суспендируют в 15 л фосфатного буферного раствора с концентрацией 20 ммоль/л, рН 8,0, после чего суспензию в течение 4 ч выдерживают при 25° С с 4 г лизоцима. К обработанной суспензии Прибавляют такое количество 10% раст- вора полиэтиленимина (Polymin-G-20// //BASF), чтобы произошло полное отделение нуклеиновых кислот и посторонних белков„ Саркозиноксидаэу, которая Находится в надосадочной жидкости,, Связывают слабоосновным анионоообмен- ником (ДЕАЕ-Сефадекс), после чего элюируют с возрастающим солевым градиентом. Прибавлением сульфата аммония элюат доводят до концентрации 0,6 моль/л. Фермент присоединяют к фенил-сефароэе, после чего проводят Хроматографирование с возрастающим градиентом сульфата аммония (указанный фосфатный буферный раствор). Элю- ат, содержащий более 4 V/мг белка, прибавлением твердого сульфата аммония доводят до концентрации - 2,4 моль/л. Осадок обрабатывают 0,1 моль/л фосфатным буферным раствором, после чего саркозиноксидазу дополнительно очищают пропусканием через молекулярные сита (Sephacryl-S- -200, Pharmacia). Очищенный фермент имеет удельную активность 5,5 V/мг.
П р и м е р 3. Выращивание Chairiia ochraceae DSM-43155.
Организм культивируют во встряхиваемой колбе в комплексной среде следующего состава: 5,00 г/л дрожжевого экстракта; 3,00 г/л пептона (типично переваренный); 2,00 г/л Nad; 0,24 г/л MgS04 7Н,0; 0,014 г/л CaCl гх ЛЦО; 2,00 г/л глюкозы; 10,00 г/л саркозина; рН 7,0. Разводимая при 28° С культура через 30 ч дает активность саркозиноксидазы около 200 мочевины/л.
П р и м е р 4. Выделение саркозиноксидазы из Chainia ochraceae.
2,6 кг влажной массы Chainia ochra ceae (DSM-43155) из 81 л культуры (200 мочевины/л, разведенной по примеру 3) суспендируют с 14 л 20 ммоль/ фосфатного буфера, рН 8,0. и растворяют в течение 4 ч при 35 С с 3,8 г лизоцима. После этого, как описано в примере 2, проводят негативное осаждение полиэтиленимина и хроматографирование ДЕАЕ-Сефадекс. Элюат смешивают с сульфатом аммония до 3,0 моль/л, рН 8,0. Выпавшую саркозиноксидазу центрифугируют и перевесят в фосфатный буфер (20 ммоль/л, рН 8,0). Частично очищенный фермент имеет удельную активность 2,1 мочевины/л.
П р и м е р 5. Выращивание Strep- tomyces flocculus DSM-40327.
Организм культивируют во встряхиваемой колбе в комплексной среде следующего состава: 5,00 г/л дрожжевого экстракта; 3,00 г/л пептона (типично переваренный); 2,00 г/л NaCl; 0,24 г/ MgS04 7Н70; 0,014 г/л CaCl2 7Н20; 2,00 г/л глюкозы; 10,00 г/л саркозина; рН 7,0. Выращиваемая при 28СС культура через 30 ч делает активность саркозиноксидазы около 30 мочевины/л.
Пример 6. Выделение саркозиноксидазы из Streptomyces flocculus,
3,1 кг влажной массы Streptomyces flocculus (DSM-40327) из 98 л культуры (30 мочевины/л, по примеру 5) растворяют по аналогии с примером 4 и выделяют фермент через осаждение полиэтиленимином, хроматографию ДЕАЕ-Сефадекс и осаждение сульфатом аммония. Частично очищенный фермент имеет удельную активность около 0,35 мочевины/мг протеина.
Пример 7. Применение саркозиноксидазы для определения креатини- на. Реактив I. Реактив для определения контрольного значения пробы: Фосфат калия
(рН 7,9), ммоль/л, 150
(или 0,1 моль/л TES/KOH, рН 7,9)
4-Аминоантипирин, ммоль/л0,8
2,4,6-Трибром-
-3-оксибензойная кислота,
ммоль/л8,6
K4Fe(CN)
мкмоль/л10
Na-холат,
ммоль/л
Lutensol%N 50,
(вес/об.)%0,5
Креатинаминогидролаза, ед/мл 12
Саркозиноксидаза по примеру 2, ед/мл
6,5
Пероксидаза,-
ед/мл2
Липазч, ед/мп2
Аскорбатоксидаза,
ед/мп10
Реактив (II) (пробный реактив): реактив I плюс 25 ед/мл креатинамидо- гидролазы.
Осуществление теста (смесь для определения): длина волны 546 нм; Т 25°С (или 37°С); толщина слоя 1 см; измерение по отношению к воздуху (см. табл. 1).
Инкубирование проводят в течение 20 мин при 25 или 37°С, а затем измеряют экстинкции Е f - Е4
Е (Е4 - ЕЭ) - (Е7-Е,).
Расчет концентрации креатинина пробе: через совместно введенный ный стандартный образец 2 мг/дд Для этого стандартный образец приняют в такой же смеси для опредения, что и пробу.
Примерв. Применение сарк ноксидазы для определения саркози Реактив I (реактив для определе холостой пробы):
Фосфат калия
(рН 7,9),
ммоль/л150
(или 0,1 моль/л TES/KOH, рН 7,9)
4-Аминоантипирин, ммоль/л 0,8
2,4,6-Трибром-2-оксибензойная кислота,
ммоль/л8,6
K4Fe(CN)t,
ммоль/л10
Холат натрия,
мкмоль/Лр 5
Lutensol
ON 50,
(вес/об.)%0,5
Пероксидаза,
ед/мл2
Аскорбатоксидаза,ед/мл10
Липаза, ед/мл2
Реактив II (реактив для проб): реактив 1+6,5 ед/мл саркозинокси дазы.
Осуществление теста (смесь для ределения) : длина волны 546 нм; Т (или 37°С); толщина слоя
5
0
0
5
0
5
5
0
5
0
1 см; измерение по отношению к воздуху (см. табл. 2).
Инкубируют в течение 20 мин при 25 или 37°С, затем измеряют экстинкции Et-Et
Е ()-(E1-EO.
Расчет концентрации саркозина в пробе: через совместно введенный водный стандарт (2 мг/дл). Стандарт при этом должен вводиться в определяемую смесь как проба.
Л р и м е р 9. Применение саркози- ноксидазы для определения креатина.
Реактив I (реактив для определения холостой пробы):
Фосфат калия
(рН 7,9),ммоль/л 150
(или 0,1 моль/,л TES/KOH, рН 7,9)
4-Аминоантипирин, ммоль/л0,8
2,4,6-Трибром-3-оксибензойная кислота,
ммоль/л8,6
K4Fe(CN) ,
мкмоль/л-10
Холат натрия,
ммоль/л 5
Lutensol
ON 50,
(вес/об. )#,0,5
Саркозиноксидаза согласно
примеру 2,
ед/мл6,5
Пероксидаза,
ед/мл2
Липаза,
ед/мл2
Аскорбатоксидаза, ед/мл10
Реактив II (реактив для проб): реактив 1+12 ед/мл креатинамидогидро- лазы.
Осуществление теста (смесь для определения): длина волны 546 нм; Т 25°С (или 37°С); толщина слоя 1 см; измерение по отношению к воздуху (см. табл. 3).
Инкубируют в течение 20 мин при 25 или 37°С, затем измеряют экстинкции Е ,-Е 4
Е - (Е4-КЭ)-(Ё2-Е,).
Расчет концентрации креатина в пробе: через совместно введенный вод- j ный стандарт (2 мг/мл)
Стандарт при этом должен вводиться в определяемую смесь как проба.
Формула изобретения
Способ определения содержания кре- атинина, креатина и capКозина в биологической жидкости путем инкубации пробы с реагентом, содержащим буфер- 15 ное вещество, 4-аминоантипирин, пе- роксидазу и саркозиноксидазу с последующим измерением интенсивности окраски полученной смеси в сравнении со стандартным образцом, отличаю- 20 щ и и с я тем; что, с целью увеличения чувствительности способа, используют два реагента, инкубацию трех
15829938
проб проводят при соотношении (по объему) пробы: реагент 0,05-1, реагент I содержит буфер с рН 7,9, 4-ами- ноантипирин 0,8 ммоль/л, пероксидазу 2 ед/мл, в соответствующем случае саркозиноксидазу ,6,5 ед./мл и дополнительно халат натрия 5 ммоль/л, 2,4,6-три- бром-3-оксибензойную кислоту 10 8,6 ммоль/л, железо-синеродистый калий 10 мкмоль/л, Lutensol®ON 50 0,5% (мае./об.), липазу 2 ед./мл, ас- корбатоксидазу 10 ед./мл и в соответствующем случае креатинаминогидролазу 12 ед./мл, а реагент II содержит в соответствующем случае саркозиноксидазу 6,5 ед./мл и креатинаминогид-- ролазу 25 ед„/мл, измерение интенсивности окраски проводят при 546 нм, при этом используют саркозиноксидазу из Chainia purpurogena DSM-43156, Chainia ochraceae DSM-43155, Strepto- myces flocculus DSM-40327.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Способ определения пирувата в биологических объектах | 1984 |
|
SU1322984A3 |
Реактив для определения глицерина фотометрическим методом | 1981 |
|
SU1554765A3 |
Способ определения перекиси водорода при ферментативной реакции | 1981 |
|
SU1338787A3 |
Способ получения штаммов бактерий ЕSснеRIснIа coLI и РSеUDомоNаS рUтIDа-продуцентов креатинамидиногидролазы | 1986 |
|
SU1523055A3 |
Способ определения креатинина в сыворотке крови | 1972 |
|
SU1144629A3 |
Способ получения креатинамидиногидролазы | 1988 |
|
SU1731066A3 |
Способ определения глутамат-пируват- и глутамат-оксалоацетаттрансаминазы | 1984 |
|
SU1431690A3 |
Способ определения активности антитромбина-ВМ | 1982 |
|
SU1271379A3 |
Способ получения производных резоруфина | 1986 |
|
SU1621811A3 |
Способ выделения фермента, катализирующего превращение креатинина в креатин и фермента, катализирующего превращение креатина в саркозин и мочевину | 1972 |
|
SU532341A3 |
Изобретение относится к биохимии и может найти применение в клинической диагностике. Цель изобретения - повышение чувствительности способа. Содержание креатина, креатинина и саркозина в биологической жидкости определяют путем инкубации 3-х проб с двумя реагентами при соотношении по объему проба: реагент 0,05 - 1, при этом реагент 1 содержит буфер с PH 7,9, 4-аминоантипирин 0,8 ммоль/л, пероксидазу 2 ед/мл, в соответствующем случае саркозиноксидаду - 6,5 ед/мл и дополнительно холат натрия 5 ммоль/л, 2,4,6-трибром-3-оксибензойную кислоту 8,6 ммоль/л, железо-синеродистый калий 10 мкмоль/л, LUTENSOL @ ON 50 0,5 мас/об.%, липазу 2 ед/мл, аскорбатоксидазу 10 ед/мл и в соответствующем случае креатинаминогидролазу 12 ед/мл, а реагент II содержит в соответствующем случае саркозиноксидазу 6,5 ед/мл и креатинами - ногидролазу 25 ед/мл с последующим измерением интенсивности окраски в полученной смеси при 546 нм в сравнении со стандартным образцом, при этом используют CHAINIA PURPUROGENA DSM - 43156, CHAINIA OCHARACEAE DSM - 43155, STREPTOMYCES FLOCCULUS DSM - 40327. Применение способа позволяет повысить более чем в три раза чувствительность способа определения креатина, креатинина и саркозина по сравнению с прототипом. 3 табл.
Реактив 11,00
Реактив II
Н200,05
Проба
Таблица 1
Таблица 2
1,00
1,00 0,05
1,00 0,05
I II
1,00 0,05
1582993
Таблица 3
10
1,00 0,05
1,00 0,05
КАРТА ПРИЗНАКОВ УРОЖАЯ ДЛЯ УПРАВЛЕНИЯ ТРАНСПОРТНЫМИ СРЕДСТВАМИ | 2006 |
|
RU2405299C2 |
Способ гальванического снятия позолоты с серебряных изделий без заметного изменения их формы | 1923 |
|
SU12A1 |
Авторы
Даты
1990-07-30—Публикация
1986-05-28—Подача