Штамм культивируемых клеток кожи и мышц эмбриона африканской зеленой мартышки для размножения вирусов Советский патент 1990 года по МПК C12N5/00 

Описание патента на изобретение SU1583440A1

Изобретение относится к области вирусологии, биотехнологии, и касается получения нового клеточного штамма из кожи и мышц эмбриона зеленой мартышки 4921, изучения его свойств, аттестации в качестве безопасного клеточного субстрата и оценки пригодности для применения в вирусологической практике, в том числе и в вакцинном производстве.

Цель изобретения - установление нового отечественного штамма перевийаемых клеток кожи и мышц эмбриона Африканской зеленой мартышки с неограниченным количеством субкучьти- йирований - удобной и доступной лабораторной модели, пригодной как для вакцинного производства, так и для научно-исследовательской работ

Проведена криоконсервация штамма на различных уровнях пассажей: & жидком азоте хранится более 6 млрд (слеток. Штамм 4921 хранится во Всесоюзной специализированной коллект (елеточных культур Института медици г ежой генетики АМН СССР на уровне 42 пассажа (10 пассаж после трансфорнь ции), ему присвоен регистрационный номер 11-0(15/3/9). Из эмбриона африканской зеленой мартышки, зарегистрированной в виварии под № 4321, попу чено два вида культур - штамм дипло f ных клеток„ обозначенный 4921D и штамм гетероплоидных клеток - 4921. , Проведена криоконсервация штамма 4921D на ранних уровнях пассажей: в Жидком азоте находится более 4 млрд. клеток. Штамм 4921D хранится во Все Союзной Специализированной коллекции неточных культур Института медицин- Јкой генетики АМН СССР на уровне 9 пассажа, ему присвоен регистрационный номер 12-D(15/3/9)

Штамм 4921 получают следующим образом. Первичную культуру готовят из ; мбриона африканской зеленой мартышки (cercophithecus aethiops), выделенного путем кесарева сечения в кпинике рбезьяноИПВЭ АМН СССР, Обезьяна 4921 прошла 45-дневный карантин и была клинически здорова,,

Дискретные клетки получают с п.ло- щыо метода щадящей тринсинизации лл- мельченных кусочков кожи и мышц эмбриона 0„25%-ным раствором трипсина при чередующихся контактах с питательнрй средой. Клетки ресуспендируют в среде Игла MEM с 10%| сыворотки крупного рогатого скота (СКРС) и эксплантируют в два полуторалитровых матраса с концентрацией клеток 12«10V ui. Сосуды с клетками инкубируют при 37°С. В первичной культуре монослой формируется на сутки о В зависимости от срока формирования монослоя проводится первое субкультивирование, а все последующие - по четкому графику: два раза в неделю, так что интервал между перевивками клеток постоянно

S

составляет 3-4 суток. Используют соеду того не состава,

Отделение клеток от стекла осуществляют 0 ,25%-ным раст вором трипсина. Криоконсервируют клетки с использованием 10Ј глицерина, 15% СКРС и 15% среды роста. При восстановлении после замораживания используют среду роста. Жизнеспособность клеток колеблется от 51 до 89%.

Культуральные свойства. Штамм 492ID характеризируется следующими признаками. Жизненный цикл диплоидного штамма составляет пассажей. Фазы роста: становлениь - 1-3 пассаж, активный рост - 3-30 пассаж, старение - 30-50 пассаж. Кратность рассева в первых двух фазах 1:3 реже 1:2, в третьей - 1:1,5, 1:1. Посевная доза 100-120«103 в 1 мл. Среднее чиспо число популяционных удвоений 50, среднее время удвоения популяции 60 ч. В фазе старения .эти показатели составляют 10 и 73 соответственно. При изучении видовой, принадлежности показано, что изофер- менты лактатдегидрогеназа и глкжозо- б-фосфат дегидрогеназа - энзимограм- мы обезьян.

Морфологические признаки. В первичной культуре монослой состоит из фибробластоподобных клеток с примесью эпителиоподобных клеток. По мере культивирования количество последних уменьшается, но полностью они никогда не исчезают, 8 фазе активного роста преобладают фибробластоподобные клетки, в некоторых пассажах культура кажется мономорфной.

Кариологическая характеристика. Кармологический анализ проводят на „ровне 12S 19, 28, 57 пассажей по 1000 метафаз. Кариотип 2п - 60, XX. Число клеток с отклонениями в наборе хромосом колеблется в пределах и в число диплоидных клеток входят метафазы с пробелами и разрывами, но с числом хромосом 60„

Контроль штамма 4921D на посторонние контаминаиты. На уровнях 10, 14, 24 и 37 пассажей клетки штамма 492ID и собранную с них культуральную жидкость испытывают на безопасность. В опытах на животных и чувствительных (снеточных системах, а также методом электронной микроскопии посторонних агентов не обнаружено. Тесты йа онко- генность на уровне 10, 20, 31, 43

пассажей, проведенные на линейных мышах СВА, отрицательны.

Клетки штамма 492ID чувствительны к заражению вакцинными штаммами Сэ- бина вируса полиомиелита, титры которых составили 7,21 lg БОЕ/мл для I типа; 6,50 - для II типа и -7,64 для III типа. После длительного хранения в жидком азоте клеток штамма 4921D на уровне 32 пассажа получен штамм гетероплоидных клеток 4921 с высокой пролиферативной активностью.

Штамм 4921 характеризируется следующими свойствами.

Культуральные свойства. После восстановления клеток штамма 4921D на уровне 32 пассажа монослой сформируется за 5 суток. После перевивки с кратностью рассева 1:2 монослой образуется уже за 1 сутки. Отмечено, что на уровне 34 пассажа мочослой состоит из мелких фибробластоподоб- ных клеток, которые не встречаются в культуре 492ID. В процессе становления штамма 4921 регистрируют увеличение числа эпителиоподобных клеток, но, начиная с 39 пассажа, в культуре преобладают фибробластоподобные клетки. При кратности рассева 1:3 монослой формируется за сутки, а после его уплотнения на 3 сутки в 1,5 л матрасной колбе на уровне 38 и 39 пассажей содержится 97 и 90 х 10 клеток соответственно.

В одной серии опытов проводят 112 последовательных пассажей. При этом культура в основном состоит из фибро- бластоподобных клеток, но при изменении условий культивирования - смена серий сывороток и среды вызывает изменение внешнего вида культуры. Например, на уровне 59,84 и 90 пассажей количество эпителиоподобных клеток в монослое значительно увеличивается. На 113 пассаже культура помещена в жидкий азот при сохранении высокой пролиферативной активности клеток. Последняя в 2-3 раза выше, чем у клеток штамма 4921D.

Для перевивок применяют среду Игла MEM с 10% СКРС. В качестве крио- протектора используют 10% глицерина, клетки ресуслендируют в среде Игла MEM содержащей 10% СКРС, с концентрацией 4 10е/мл. Жизнеспособность клеток составляет 82+5%.

Морфологические признаки. Штамм 4921 изучают с использованием цито,

5834406

логических методов на уровнях 51, 59 и 102 пассажей. Для характеристики динамики формирования монослол окрашенные гематоксилином и эозином

5 препараты фиксируют на 1, 2 и 3 сутки после посадки клеток.

Характер роста, форма клеток и ядер отличаются от морфологии диJQ плоидных клеток штамма 4921D; представленных в основном веретеновидны- ми фибробластоподобными клетками с удлиненными ядрами.

На первые сутки роста в культуре

15 51 пассажа наряду с фиброблзстоподоб- | ными клетками присутствуют s значительном количестве эпителиоидные клетки с округлыми ядрами и пластин- чатой цитоплазмой. На 2-3 сутки 51,

20 а также 59 и 102 пассажей эпителио- подобные клетки преобладают. Наблюдается их значительный полиморфизм. Культура состоит из эпителиоидных полигональных клеток, отличающихся

25 по форме и величине. Полиморфизм

увеличивается с пассажами, что характерно для трансформированных культур.

Цитоплазма эпителиоидных клеток всех уровней пассажей имеет пластинЗо чатый характер, ядра округлые преимущественно с 1-2 ядрышками. На разных участках препаратов встречаются клетки с увеличенными ядрами, а также клетки с 2-3 и большим числом ядер (1-5%). Среди митозов имеются аномальные деления (многополюсные), с неправильным расположением и расхождением хромосом, местами неравномерным делением ядер. Внутриядерных и

.Q цитоплазматических включений, вакуолизации и других признаков контаминации клеток не обнаружено.

Кариологическая характеристика. При кариологическом изучении штамма

д5 4921 на уровне 43 и 56 пассажей установлено, что штамм - гетероплоидный. Число хромосом колеблется от 57 до 63. Модальный класс - с 61 хромосомой.

Контроль штамма 4921 на посторонние контаминанты. При обследовании клеток штамма 4921 на стерильность (наличие бактерий, грибов, микоплазм) были получены отрицательные результаты на уровнях 34-112 пассажей.

При исследовании культуральных жидкостей и самих клеток на уровнях 39, 51, 72, 104 пассажей в чувствительных клеточных системах - в пер50

55

7

вичной культуре клеток почек африканских зеленых мартышек, в двух штамма диплоидных клеток эмбриона человека и первичной культуре клеток почек кролика, а также в реакции гемадсорб ции с эритроцитами морской свинки вирусы-контаминанты не выявлены.

При обследовании клеток штамма 4921 на тех же уровнях пассажей в опытах на новорожденных и взрослых белых мышах, кроликах, морских свинках, на куриных эмбрионах и иммуно- депрессированных мышах линии СВА посторонних агентов, в том числе онко- генных, не обнаружено.

Чувствительность к вирусам. Определена чувствительность штамма 4921 к заражению энтеровирусами человека. К первичному заражению без адаптации культура чувствительна к вакцинному штамму Сэбина трех типов вируса полиомиелита, Коксака А-7, Э, 14, 16.

П р и м е р 1. Способ культивирования вируса полиомиелита, штамм Сэбина тип I.

В матрасную колбу вместимостью 1,5 л с монослоем клеток штамма 4921 на уровне 39 пассажа вносят подогретую до 37°С смесь 0,25%-ного раствора трипсина и 0,02%-ного раствора версена в равных объемах (общее количество 20 мл). Монослой ополаскивают несколько раз, жидкость удаляют а культуру помещают в термостат при 37°С на 2-3 мин. Затем колбу встряхивают до полного отделения клеток и вносят 500 мл среды роста, клеточную взвесь энергично встряхивают и разливают в 20 флаконов вместимостью 100 мл по 25 мл в каждый В качестве среды роста используют среду Игла МЈ с 10% CKPC. Культуру инкубируют при 37°С в течение 3 суток до момента формирования монослоя.

При заражении питательную среду удаляют, клеточный слой однократно промывают рабочим раствором Эрла и вирус полиомиелита вносят в разведении 10-з с 15 мл среды ГЛАЭМ (0,52 гидролизата лактальбумина на растворе Эрла с равным количеством среды Игла). Инфицированные культуры инкубируют при . Учет результатов проводят, начиная с 2 суток после заражения. Титр вируса полиомиелита штамм Сэбина I типа был равен - 7,49 lg БОЕ/мл.

8

П р и м е р 2. Способ культивирования вируса полиомиелита штамм Сэбина II типа.

Культуру клеток штамма 4921 на уровне 40 пассажа получают и заражают вирусом по способу, описанному в примере 1, при этом титр вируса составил 7,55 lg БОЕ/мл.

5

0

5

5

0

5

ПримерЗ. Способ культивирования вируса полиомиелита штамм Сэ- бина III типа.i

Культуру клеток штамма 4921 на уровне 40 пассажа получают и заражают вирусом по способу, описанному Е примере 1, при этом титр вируса составил 7,66 lg БОЕ/мл.

П р и м е р 4. Способ культивирования вируса Коксаки А-7.

В матрасную колбу вместимостью 1,5 л с монослоем клеток штамма 4921 на уровне 55 пассажа вносят подогретый до 37° С 0,25%-ный раствор трипсина в объеме 20 мл. Монослой ополаскивают несколько раз, жидкость удаляют, а колбу помещают на аналогичный сосуд, заполненный подогретой до 38°С водой. Через 2-3 мин колбу энергично встряхивают до полного отделения клеток от стекла и вносят 400 мл среды роста. Клеточную взвесь энергично встряхивают и разливают на 200 пробирок по 2 мл в каждую. В качестве среды роста используют среду Игла MEM с 10% СКРС. Культуру инкубируют при 37°С в течение 2 суток до момента формирования монослоя.

При заражении питательную среду удаляют, клеточный слой однократно промывают рабочим раствором Эрла, и вирус вносят в соответствующем разведении на растворе Эрла по 0,2 мл. Время адсорбции 40 мин при комнатной температуре . Затем вносят 1,8 мл среды ГЛАЗИ. Инфицированную культуру инкубируют при 37°С, Учет результата проводят, начиная с 3 суток после заражения. Титр вируса Коксаки А-7 равен &,70 lg ТЦДгв/мл.

П р и м е р 5. Способ культивирования вируса Коксаки А-9.

Культуру клеток штамма 4921 на уровне 55 пассажа получают и заражают вирусом по способу, описанному в примере 4, при этом титр вируса , составляет 8,70 lg ТЦ%в/мл.

П р и м е р 6 Способ кульТивиро- вания вируса Коксаки А-14,

91583МОio

Культуру клеток штамма 921 на Таким обоазом, предлагаемая «спе- уровне 55 пассажа получают и заража- точная система 4921 представляет ноют вирусом по способу, описанному ввый отечественный штамм гетероплоид- примере Ц, при этом титр вируса сое-ных перевиваемых клеток кожи и мышц тавляет 8,36 lg . эмбриона африканской зеленой мартышПример. Способ культивиро-ки. вания вируса Коксаки А-16.

Культуру клеток штамма 921 наФормула изобретения уровне 55 пассажа получают и заража- JQ Штамм культивируемых клеток кожи

ют вирусом по способу, описанному ви мышц эмбриона африканской зеленой

примере 4, при этом титр вируса сое-мартышки BCKK-D № 11D (15/3/9) для

тавляет 7,70 lg .размножения вирусов.

Похожие патенты SU1583440A1

название год авторы номер документа
Штамм культивируемых клеток сердца и языка эмбриона СеRсорнIтнесUS аетнIорS, используемый для выращивания вирусов 1989
  • Миронова Любовь Леонидовна
  • Гольдрин Нина Ефремовна
  • Кашликова Валентина Ивановна
  • Кузнецова Нина Васильевна
  • Кудинова Светлана Ивановна
  • Стобецкий Владимир Иванович
  • Хороших Елена Михайловна
  • Мирютова Татьяна Львовна
  • Чернышев Владимир Иванович
  • Кармышева Валентина Яковлевна
  • Попова Валентина Дмитриевна
  • Алпатова Галина Александровна
SU1693044A1
Штамм культивируемых клеток кожи и мышц эмбриона человека для изготовления диагностических препаратов 1988
  • Миронова Любовь Леонидовна
  • Преображенская Нина Константиновна
  • Мартынова Валентина Николаевна
  • Крючкова Галина Петровна
  • Стобецкий Владимир Иванович
  • Кармышева Валентина Яковлевна
  • Кудинова Светлана Ивановна
  • Попова Валентина Дмитриевна
  • Алпатова Галина Александровна
SU1518370A1
Штамм диплоидных клеток кожи и мышц эмбриона человека,используемый для культивирования вирусов 1985
  • Миронова Любовь Леонидовна
  • Преображенская Нина Константиновна
  • Грачев Виктор Павлович
  • Стобецкий Владимир Иванович
  • Крючкова Галина Петровна
  • Иванникова Нина Максимовна
  • Малыгина Ирина Георгиевна
  • Попова Валентина Дмитриевна
  • Ральф Нелли Михайловна
  • Алпатова Галина Александровна
  • Дзагуров Сослан Григорьевич
  • Ломанова Галина Александровна
  • Шалунова Нина Васильевна
  • Николаева Марина Алексеевна
SU1317021A1
ШТАММ КУЛЬТИВИРУЕМЫХ КЛЕТОК ПОЧКИ ЭМБРИОНА ОВЦЫ ДЛЯ РАЗМНОЖЕНИЯ ВИРУСОВ 1987
  • Конюшко О.И.
  • Миронова Л.Л.
  • Попова В.Д.
  • Кармышева В.Я.
  • Алпатова Г.А.
  • Соболев С.Г.
SU1559700A1
Способ культивирования вирусов 1979
  • Миронова Л.Л.
  • Гольдрин Н.Е.
  • Грачев В.П.
  • Орлова Т.М.
  • Чернышев В.И.
SU764390A1
Способ культивирования вирусов 1979
  • Миронова Л.Л.
  • Гольдрин Н.Е.
  • Грачев В.П.
  • Орлова Т.М.
SU764391A1
Линия перевиваемых клеток селезенки взрослой зеленой мартышки 455,используемая для культивирования вирусов 1981
  • Миронова Л.Л.
  • Хапчаев Ю.Х.
  • Попова В.Д.
SU984214A1
Штамм диплоидных клеток легкого эмбриона человека ЛЭЧ-4(81),используемый для диагностики вирусных инфекций 1983
  • Глинских Нина Поликарповна
  • Колесникова Галина Григорьевна
  • Устьянцев Василий Павлович
  • Закирова Сания Фазыловна
  • Власова Людмила Валентиновна
  • Станиславская Валентина Кондратьевна
SU1147748A1
СПОСОБ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ КЛЕТОК ПЛОДОВ СВИНЬИ ДЛЯ ВИРУСОЛОГИИ 2021
  • Федотова Ольга Семеновна
  • Захарова Юлия Александровна
  • Шмелева Наталья Анатольевна
  • Вылых Иван Владимирович
  • Остапчук Анна Владимировна
RU2795135C2
ВНК-21/13-13-ПЕРЕВИВАЕМАЯ МОНОСЛОЙНО-СУСПЕНЗИОННАЯ СУБЛИНИЯ КЛЕТОК ПОЧКИ НОВОРОЖДЕННОГО СИРИЙСКОГО ХОМЯЧКА, ПРЕДНАЗНАЧЕННАЯ ДЛЯ РЕПРОДУКЦИИ ВИРУСА ЯЩУРА И ВИРУСА БЕШЕНСТВА 2014
  • Елисеев Анатолий Константинович
  • Зенов Николай Иванович
  • Красуткин Сергей Николаевич
  • Мельник Николай Васильевич
  • Хайкина Людмила Сергеевна
  • Литенкова Ирина Юрьевна
  • Ельников Василий Викторович
  • Крюкова Елена Николаевна
RU2553552C1

Реферат патента 1990 года Штамм культивируемых клеток кожи и мышц эмбриона африканской зеленой мартышки для размножения вирусов

Изобретение относится к вирусологии, биотехнологии и касается получения нового штамма гетероплоидных клеток из кожи и мышц эмбриона зеленой мартышки 4921, изучение его свойств, аттестации в качестве безопасного клеточного субстрата и оценки пригодности для применения в вирусологической практике, в том числе и вакцинном производстве. Цель изобретения - установление нового отечественного штамма перевиваемых клеток кожи и мышц эмбриона африканской зеленой мартышки с неограниченым количеством субкультивирований. Штамм 4921 установлен из штамма диплоидных клеток 4921Д. В качестве среды роста применена среда Игла МЕМ с 10% сыворотки крупного рогатого скота. Штамм 4921 гетероплоидный обладает устойчивыми биологическими и морфологическими свойствами, видовая принадлежность подтверждена кариологическим анализом. Создан банк посевных клеток на уровне 42 пассажа. Он состоит из 286 ампул, содержащих 6 .10 6 клеток в каждой, и отконтролирован на безопасность. Кроме того, имеется 6 млрд.клеток на различных уровнях пассажей, заложенных в крупногабаритные контейнеры. Штамм свободен от посторонних агентов - микробов, грибов, вирусов, микоплазм, не онкогенен. Он удовлетворяет всем требованиям ВОЗ, предъявляемым в вакцинным клеточным субстратам, и пригоден для производства лечебно-диагностических препаратов. Установлена чувствительность штамма 4921 к заражению энтеровирусами человека, титр вируса полиомиелита штамм Сэбина 1 типа 7,49LG,П типа 7,55LG,Ш типа-7,66LG, титры вируса Коксаки А колебалис 6 от 7,7 до 8,7 LG Тцд 050/мл.

Формула изобретения SU 1 583 440 A1

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 1990 года SU1583440A1

Способ культивирования вирусов 1979
  • Миронова Л.Л.
  • Гольдрин Н.Е.
  • Грачев В.П.
  • Орлова Т.М.
  • Чернышев В.И.
SU764390A1
Способ гальванического снятия позолоты с серебряных изделий без заметного изменения их формы 1923
  • Бердников М.И.
SU12A1

SU 1 583 440 A1

Авторы

Миронова Любовь Леонидовна

Гольдрин Нина Ефремовна

Кудинова Светлана Ивановна

Стобецкий Владимир Иванович

Орлова Татьяна Михайловна

Чернышев Владимир Иванович

Попова Валентина Дмитриевна

Кармышева Валентина Яковлевна

Алпатова Галина Александровна

Баранова Галина Петровна

Даты

1990-08-07Публикация

1987-12-24Подача