Способ активации тканевого активатора плазминогена (его варианты) Советский патент 1990 года по МПК C12N15/12 C12P21/00 

Описание патента на изобретение SU1607689A3

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для получения активного плазминогена.

Целью изобретения является улучшение качества конечного продукта за счет более полного восстановления его нативных свойств.

П Р и м е Р 1 о

а) Приготовление refractile bodies.

100 г влажной клеточной массы Е. coli в 1,5 л 0,1 моль/л трис/НС1 I

и 20 ммоль/л ЕДТА гомогенизируют (Ultra-Turrax 10 с) и добавляют 0,25 мг/мл лиозима. После 30 мин инкубации при комнатной температуре вновь гомогенизируют и охлаждают до . Разложение клеток осу1цеств ляют путем дисперсии при высоком давлении (550 кг/см ). Затем проводят промьшку 300 мг/л 0,1 моль/л трис/ /НС1 (рН 6,5) и 20 ммоль/л ЕДТА. После центрифугирования (2ч для 27000 g, ) гранулы вводят в

9) О 9д 00 СО

О4

1,3 л 0,1 моль/л трис/HCl (рН 6,6), 20 ммоль/л ЕДТА и 2,5%.тритон-Х-100 и гомогенизируют. После повторного центрифугирования (30 мин для 27000 g, А С} гранулы вводят в 1,3 л 0,1 моль/п трисНС (рН 6,5), .20 ммоль/л ЁДТА и 0,5% тритон-Х-100 и гомогенизируют Чередование центрифугирования (30 мин для 27000g, ) и гомогенизации гранул в 1 л 0,1 моль/л трис/НС (рН 6,5) и 20 ммоль/л ЕДТА проводят еще трижды Содержание tPA reftactile bodies

г) Повторное окисление/активация без отделения денатурирующее средство/восстановитель

Белок инкубируют при концентрации 1,25 мг/мл в 0,1 моль/л трис/НС1 (рН 8,6), 6 ммоль/л гуанидингидро- хлорида, 0,2 моль/л ДТЕ и 1 моль/л ЕДТА в течение 2 ч при комнатной температуре. Затем сразу же проводят повторное окисление 1:100 разбавлени ем в 0,1 моль/л трис/НС (рН 10,5), ,, 1 ммоль/л ЕДТА, 1 мг/мл BSA, 0,3 моль/л L-аргинина и в указанных в табл. 1

10

определяют по SDS-PAGE, идентификацию 5 количествах GSSG. Дополнительно в акtPA-полос по Westirn-blotting ден- ситометрическим анализом Refracti- 1е bodies по SDS-PAGE и Westirrl- blotting.

Анализ показьюает плотную tPA полосу с мол о весом около 60 кДт Доля tPA в общем содержании протеина retractile bodies составляет OK оло 21%,

б)Растворение/восстановление refractile bodies..

Белок инкубируют при концентра- ции 1-5 мг/мл в 0,1 моль/л трис/HCl (рН 8,6), 6 моль/л гуахшдингидрохло- рида 0,15-0,4 моль/л ДТЕ и 1 ммоль/л ЕДТА в течение 2-3 ч при комнатной температуре Затем нерастворенный материал (фрагменты стенок клеток и т.п.) отделяют центрифугированием (30 мин для 35000-50000 g. , 40°С) . Величину рН надосадочной жидкости устанавливают концентрированной соляной кислотой до рН Зо Денатурирующее средство и восстановитель отделяют i диализом против 0,01 моль/л НС1 при 4°Со

в)Повторное окисление/активация.

Повторное окисление/активацию проводят 1:50 - 1 :200, разбавлением буфером Ojl моль/л трис/HCl (рН10,5),

1 ммоль/л ЕДТА, 1 мг/мл BSA, . 0,5 моль/л L-аргинина, 2 ммоль/л GSH, 0,2 ммоль/л GSSG.

После 17-24 ч активации при 20 С определяют активность в сравнении с активностью естественного гликоли- зированного tPA из эвкарионтов, - Выход готового продукта в пересчете на общее содержание протеина 2,5iO,5%, стимулируемость 10i:5.

Выход готового продукта в пересчете на количество tPA примерно 12%.

20

25

тивирующей добавке находится остаточная концентрация 0,06 моль/л гуани- дингидрохлорида и 2 ммоль/л ДТЕ .

Зависимость выхода активаций от GSSG-концентрации при активации без отделения денатурирующее средство/ восстановитель показана в табл 1.

Пример 2. Около 5 мг белка инкубируют в 1 мл 0,1 моль/л трис/HCl (рН 8,6), 6 моль/л гуанидингидрохло- рида и 0,15-0,2 моль/л ДТЕ в течение 2-3 ч при комнатной температуре. Не- растворенньй материал (фрагменты стенок клеток и т од.) отделяют центрифугированием (20 мин при 17000 g). - Денатурирующее средство и восстановитель удаляют гелевой фильтрацией через Sephadex С. 25 в 0,01 моль/л НС1о При этом проба разбавляется на коэффициент 5-10, Восстановленный 35 материал растворяют в 0,01 моль/л

30

НС1 при -204,.

40

Таблица 1

45

50

55

Выход активного tPA в пересчете на общее содержание-протеина refractile bodies.

07689л

г) Повторное окисление/активация без отделения денатурирующее средство/восстановитель

Белок инкубируют при концентрации 1,25 мг/мл в 0,1 моль/л трис/НС1 (рН 8,6), 6 ммоль/л гуанидингидро- хлорида, 0,2 моль/л ДТЕ и 1 моль/л ЕДТА в течение 2 ч при комнатной температуре. Затем сразу же проводят повторное окисление 1:100 разбавлени ем в 0,1 моль/л трис/НС (рН 10,5), ,, 1 ммоль/л ЕДТА, 1 мг/мл BSA, 0,3 моль/л L-аргинина и в указанных в табл. 1

10

количествах GSSG. Дополнительно в ак

тивирующей добавке находится остаточная концентрация 0,06 моль/л гуани- дингидрохлорида и 2 ммоль/л ДТЕ .

Зависимость выхода активаций от GSSG-концентрации при активации без отделения денатурирующее средство/ восстановитель показана в табл 1.

Пример 2. Около 5 мг белка инкубируют в 1 мл 0,1 моль/л трис/HCl (рН 8,6), 6 моль/л гуанидингидрохло- рида и 0,15-0,2 моль/л ДТЕ в течение 2-3 ч при комнатной температуре. Не- растворенньй материал (фрагменты стенок клеток и т од.) отделяют центрифугированием (20 мин при 17000 g). - Денатурирующее средство и восстановитель удаляют гелевой фильтрацией через Sephadex С. 25 в 0,01 моль/л НС1о При этом проба разбавляется на коэффициент 5-10, Восстановленный материал растворяют в 0,01 моль/л

НС1 при -204,.

40

Таблица 1

Выход активного tPA в пересчете на общее содержание-протеина refractile bodies.

Пример ЗоВ табп 2-15 пока з.ано влияние различных параметров на активацию и стимулируемость tPA, Дпя эксперимента повторного окисления восстановленкьй протеин, растворенный по примеру 2, больше, не очи-. щают.

Восстановленный протеин (в 0,01 моль/л НС1) активируют растворением 1:10 - 1:500 в буфере повторного окисления, Активацию определят после 22-48 ч.инкубации при комнатной температуре Активация окисенного повторно протеина по отношению к стандартному повторному окисению (100%) в 0,1 моль/л трис/НС1 (рН 10,5) + 1 ммоль/л ЕДТА, 0,5 моль/л -аргинина, 1 мг/мл BSA, 0,5 моль/л SH (восстановленный глютатион), 0,5 ммоль/л GSSG (дисульфид глютати- она) .

1. Зависимость выхода активации от добавки L-аргинина или гуанидингид- рохлорида.

Повторное окисление в 0,1 моль/л , трис/НС (рН 10,5), 1 ммоль/л ЕДТА, 1 мг/мл L-аргинина, 0,5 ммоль/л BSA, 0,5 ммоль/л GSSG.

Зависимость выхода активации от концентрации L-аргинина представлена в табЛо 2,

Таблица 2

Зависимость активации от добавки мочевины следуюшая:

Мочевина моль/л

1

1.5 2

2,5 3

А

Активность, %

59

126

162

141

72

12

Зависимость активации от добавметилмочевины:

Метилмочевина Активность, моль/л .%

0,5

1

1,5

2

2,5

3

22

174

313

375

332

215

Зависимость активации от добавки этилмочевины:

Этилмочевина Активность, моль/л%

0,5

1

1,5

46

212

323

35

2300

2,5107

Зависимость активации от добавки диметилмочевины представлена в табл. Зо

Таблица 3

Похожие патенты SU1607689A3

название год авторы номер документа
ФРАГМЕНТ ДНК, КОДИРУЮЩИЙ ПОЛИПЕПТИД К2Р СО СВОЙСТВАМИ АКТИВАТОРА ПЛАЗМИНОГЕНА, ПОЛИПЕПТИД К2Р СО СВОЙСТВАМИ АКТИВАТОРА ПЛАЗМИНОГЕНА, РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК РА27.3, КОДИРУЮЩАЯ ПОЛИПЕПТИД К2Р СО СВОЙСТВАМИ АКТИВАТОРА ПЛАЗМИНОГЕНА И ФАРМАЦЕВТИЧЕСКАЯ КОМПОЗИЦИЯ, ОБЛАДАЮЩАЯ ФИБРИНОЛИТИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТЬЮ 1990
  • Анне Штерн[De]
  • Ульрих Конерт[De]
  • Райнер Рудольф[De]
  • Штефан Фишер[De]
  • Ульрих Мартин[De]
RU2107094C1
Способ определения глутаматоксалацетаттрансаминазы или глутаматпируваттрансаминазы 1979
  • Ульферт Денеке
  • Петер Шталь
  • Вальтер Шнайдер
SU1276269A3
Способ определения активности химотрипсина или трипсина в кале 1982
  • Геральд Меллер
  • Клаус Петер Каспар
SU1367866A3
Способ получения рекомбинантного активированного белка С человека 1988
  • Нильс Ульрик Бэнг
  • Хармут Джозеф Эрлих
  • Брайан Вилльям Гриннелл
  • Стэнли Ричард Яскунас Мл.
SU1830081A3
Способ получения дигиталис-антител 1984
  • Ханс-Георг Бац
  • Херберт Юнгфер
  • Хельмут Ленц
  • Альберт Бедер
SU1455999A3
Способ определения активности антитромбина-ВМ 1982
  • Хельмут Лилль
  • Юрген Шренк
  • Петер Вундервальд
SU1271379A3
Способ получения клона бактерий ЕSснеRIснIа coLI,трансформированного плазмидой pBR322,содержащей вставку РSт-1,кодирующую интерферон @ или @ 1983
  • Эва Дворкин-Растл
  • Марк-Брус Дворкин
  • Гюнтер Адольф
  • Петер Мейндл
  • Герхард Бодо
  • Петер Светлый
SU1346048A3
Способ определения пирувата в биологических объектах 1984
  • Эрих Элстнер
  • Карл-Хайнц Шлейфер
  • Фридрих Гец
  • Барбара Зедевиц
  • Альберт Редер
  • Ханс Меллеринг
  • Ханс Зайдель
SU1322984A3
СПОСОБ СОЗДАНИЯ МОДЕЛИ ПЕРЕКИСНОГО ОКИСЛЕНИЯ ЛИМФОЦИТОВ 2013
  • Канская Наталья Викторовна
  • Степовая Елена Алексеевна
  • Федорова Нина Александровна
  • Носарева Ольга Леонидовна
  • Позднякова Ирина Анатольевна
  • Канский Александр Викторович
  • Твердохлебов Сергей Иванович
  • Иванов Владимир Владимирович
RU2541771C2
Способ получения штаммов бактерий ЕSснеRIснIа coLI и РSеUDомоNаS рUтIDа-продуцентов креатинамидиногидролазы 1986
  • Гюнтер Шумахер
  • Петер Букель
  • Клаус Бокамп
SU1523055A3

Реферат патента 1990 года Способ активации тканевого активатора плазминогена (его варианты)

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для получения активного плазминогена. Целью изобретения является улучшение качества конечного продукта за счет более полного восстановления его нативных свойств. Способ активации тканевого активатора плазминогена - T PA, полученного в результате экспрессии гена T PA в клетках ESCHERICHIA COLI и PSEUDOMONAS PUTIDA, предусматривает проведение реакции реактивации при PH 9 - 11, концентрации G SSG 0,05 - 3 ммоль/л и концентрации G SH 0,1 - 20 ммоль/л. В качестве слабого денатурирующего раствора используют раствор L-аргинина в концентрации 0,05 - 1 моль/л или мочевины в концентрации 1 - 4 моль/л, или метилмочевины в концентрации 0,5 - 3 моль/л, или демитилмочевины в концентрации 0,5 - 1 моль/л, или этилмочевины в концентрации 0,25 - 0,75 моль/л, или формамида в концентрации 0,5 - 5 моль/л, или этилформамида в концентрации 0,5 - 5 моль/л, или ацетамида в концентрации 0,5 - 4 моль/л, или бутирамида в концентрации 0,5 - 1 моль/л. 2 с. и 5 з.п. ф-лы, 24 табл.

Формула изобретения SU 1 607 689 A3

Зависимость выхода активации от концентрации гуанидинхлорида следующая:

Гуанидинхлорид, Активность, моль/л(%)

0,25 22

0,553

0,7558

2. Зависимость активации от добавки мочевины и производных мочевины.

Повторное окисление в О,1 моль/л трис/НС (рН 10,5), 1 ммоль/л ЕДТА, 1 мг/мл BSA, 5 ммоль/л GSH, 0,2 ммоль/л GSSG.

45

50

Зо Зависимость активности от добавки амидов жирных кислот

Повторное окисление в 0,1 моль/л трис/НС (рН 10,5) 1 ммоль/л ЕДТА, 1 мг/мл BSA, 5 ммоль/л GSH,0,2 ммоль/л GSSG,

Зависимость активации от добавок формамида:

ормамид моль/л

0,5

1

1,5

2

2,5

3

4

5

Активность,

%

59

175

245

325

423

444

416

341

Зависимость активации от добавок метилформамида:

Метилформамид, Активность, моль/л% .

0,5

1

1,5

2

2,5

3

4

5

100 135 304 389 466 452 425 121

Зависимостьактивации от добавок цетамида;

Ацетамид,Активность,

моль/л%

72

134

207

261

204

237

4198

5141 Зависимость активации от добавок

пропионанида:

Пропионамид, Активность, моль/л %

95

99

197

150

101

39

2

Зависимостьактивации от добавок бутирамида:

Бутирамид, Активность, моль/л %0,555

152

4i Зависимость выхода активности от величины рН.

Повторное окисление в 0,1 моль/л трис/HCl, 1 ммоль/л ЕДТАа 0,5моль/л

L-аргинина, 1 мг7мл В А, 0,5ммоль/л GSH, 0,5 ммоль/л GSSG.

Зависимость активности от величины рН представлена в табл.4,

Т аблица 4

5. Зависимость выхода активности от GSH/GSSG концентрации

Повторное окисление в 0,1 ммоль/л трис/НС (рН 10,5), 1 ммоль/л ЕДТА, 0,5 ммоль/л L-аргинина, 1 мг/мл BSA,

а) I ммоль/л GSH.

Зависимость активности от концентрации GSH представлена в табл, 5.

Таблица 5

40

б) 0,2 ммоль/л GSSG. зависимость активности от концентрации GSSG представлена в табл« 6

Таблица

45 --Пример Д-. Активация tPA сме- шанньии дисульфидами tPA и глютатио- на.

Испольэоваиие refractile bodies, полученных по одному из предвдущих примеров. Восстановление refractile

bodies проведено за 2 ч инкубации

при комнатной температуре в 0,1 моль/л трис/ЧС (рН 8,6), 1 ммоль/л ЕДТА, 6 моль/л Gdn НС1, 0,2 моль/л ДТЕ при концентрации протеина около 1 мг/мл

Диализированный 0,01 мл/л НС1, восстановленный протеин разбавляют в соотношении 1:1 0,1 моль/л трис/НС1, рН 9,3, 9 моль/л мочевины и 0,2 моль/л GSSG и инкубируют 5 ч при комнатной температуре

После подкисления концентрированной соляной кислотой до рН 3 проводя диализ 0,01 моль/л НС1 при.. После диализа общая концентрация проте ина составляет 0,35 мг/мл. Таким образом получают tPASSG,

а) рН - оптимум активации tPASSG,

Здесь, как и в. последуювдх экспериментах по оптимизации условной реактивации, не применяют GSSG и активацию проводят через 17 ч путем разбавления в 0,1 моль/л трис, 1 ммоль/л ЕДТА, 0,5 моль/л Ь-аргини- на, 1 мг/мл BSA и ммоль/л GSH при изменении величины рН (табЛо 7),

Таблица 7

Выход готового продукта определен по проценту активности tPA в пересчете на введенное количество протеина

б) Воспроизводимость результатов активации tPASSG,

Все данные активации суммируют ; после 1:100 или 1:200 разбавления в 0,1 моль/л трис/НС (рН 8,5),

1 ммоль/л ЕДТА, 0,5 моль/л L-арги- нина, 1 мг/йл BSA и 2 Ммоль/л GSH (табл. 17),

Воспроизводимость результат ов активации tPA ,SSG представлена в табл. 8.

to

15

20

25

в) Стабильность активированного протеина о

Активацию проводят в 1:200 разбавлении в 0,1 моль/л трис/НС1, 1 ммоль/л ЕДТА, 0,5 моль/л L-арги- нина, 1 мг/мл BSA и 2 ммоль/л GSH.

Данные о стабильности активированного протеина приведены в

Пример 5о Активация полученного генной технологией интерферона-.

Восстановление/растворенис прово- дят следующим образом: осадок инкубируют 3 ч при 25°С в 10 мл 9,1 моль/л трис/НС (рН 8,6), 6 моль/л Gdn НС1, 1 1-1Моль/л ЕДТА и 0,2 моль/л ДТЕ и после 30 мин центрифугирования при и 48000 g величину рН надосадоч11

ной жидкости устанавливают концентрированной НС1 около 3. Затем проводят гелевую фильтрацию через Sephadex G25 в 0,01 моль/л НС1.

Эяюат исследуют-на.проводимость, концентрацию протеина и реактивируемое ть.

Активацию повторно окисленного протеина определяют по стандартной активации ( 100%) в 0,1 моль/л трис/НС (рН 10,5), 1 ммояь/л ЕДТА, 5 ммоль/л GSH, 0,5 ммоль/л GSSG и 0,25 моль/л L-аргинина,

а)Зависимость выхода активации от добавки L-аргинина.

Элюат разбавлен 0,1 моль/л трис/ НС1 (рН 8,5), 1 ммоль/л ЕДТА, 5 ммоль/л GSSG и активирован 20 ч при О С,

Зависимость активации от L-аргинина следующая:

L-аргинин,Активность,

моль/л%

0,258

0,515

0,7515

б)Зависимость выхода активации от добавки мочевины.

Раствор активации соответствовал раствору по пункту а), однако активацию проводят 17 ч при О С.

Зависимость активации от добавки мочев.ины:

очевина,

моль/л

о

0,5 1

1.5

Активность,

%

13 100 200

100

в) Зависимость выхода активации от добавки формамида.

Активация как в пункте а); пробы исследуют после 17 ч активации при

0°t,

Зависимость выхода активации от

добавЛи формамида:

Формамид,,Активность,

моль/л

О 13

4 . 13

213

г) Зависимость выхода активации от окислительно-восстановительного

буфера.

т

160768912 I

Элюат разбавляют 1:50 буфером 0,1 моль/л трис/НС1 (рН 8,5), 1 ммоль/л ЕДТА и 0,25 моль/л L-аргинина и пробу исследуют после 17 ч активации при 0°С.

Зависимость активации от добавки GSH/GSSG представлена в табл. 10,

to

Таблица 10

20

д) Зависимость выхода активации от добавки BSA.

Элюат разбавляют 1:50 буфером 0,1 мйль/л трис/НС (рН 8,5), 1 ммоль/л ЕДТА, 5 ммоль/л GSH, 0,5 ммоль/л GSSG и 0,25 моль/л L-аргинина и исследуют через 17 ч активации при .

Зависимость активации от добавки BSA:

BSA, мг/мл

О

1 2 5

Активность, %

13 13 25 13

е) Зависимость выхода активации от рН.

Элюат равняют 1:50 буфером 0,1 моль/л трис/НС 1 ммоль/л ЕДТА, 5 ммоль/л L-аргинина и исследуют через 17 ч активации при О С.

Зависимость активации от вел1Р1и- ны рН:

5

рН

6,5 7,5 8,5 9,5 10,5

Активность, %

О

6

13

50 . 100

Формула изобретения

1. Способ активации тканевого ак- тиватЪра плазминогена, включающий экспрессию гена tPA в клерках Esche- richia .coli или Pseudomonas putida, включающий суспендирование и разрушение бактериальных клеток в буферном растворе, отделение нерастворимых составных частей, салобилизацию в растворе, содержащем 6 моль/л гуани- динхлорида в присутствии 0,15- 0,2 моль/л DTE, очистку с отделением денатурирующего средства и восстановителя, реактивацию в слабом денатурирующем растворе путем обработки окисленной - gSSg и восстановимой - gSH, отличающийс я тем, что стадию реактивации осуществляют при рН 9-11, при концентрации gSSg 0,05-3 ммоль/л и концентрации gSH 0,1-20,0 ммоль/л, а в качестве сла20 richia coli или Pseudomonas putida, включающий суспендирование и разрушение бактериальных клеток в буферном растворе, содержащем 6 моль/л гуанидинхлорида в присутствии 0,5бого денатурирующего раствора используют раствор L-аргинина в концентра- 25 о,2 моль/л ДТЕ, очистку с отделением ции 0,05-1,0 моль/л, или мочевиныденатурирующего средства и восстанов концентрации 1-4 моль/л, или метил- мочевины в концентрации 0,5-3 ,0 моль/л, или диметилмочевины в .концентрации 0,5-1,0 моль/л, или этилмочевины в концентрации 0.25-0,75 моль/л, или формамида в концентрации 0,5- 5,0 моль/л, или этилформамида в концентрации 0,5-5,0 моль/л, или ацет- амида в концентрации 0,5-4,0 моль/л.

30

35

вителя с последующей реактивацией, отличающийс я тем, что после отделения гуанидинхлорида белок переносят на смешанньй дисульфид инкубацией с gSSg при концентрации 0,1 моль/л в присутствии 4,5 моль/л мочевины, а реактивацию проводят при рН 7-10,5 путем обработки gSH в концентрации 1-3 ммоль/л в присутствии 0,5 моль/л L-аргининао

или бутирамида в концентрации 0,51,0 моль/л.

2, Способ по п. 1,отлича- ю щ и и с я тем, что стадия реактивации концентрации - gSH составляет 0,2-10,0 ммоль/л и/или концентрация gSSHg 0,05-1,0 моль/л.

3.Способ по п, 1 или п. 2, отличающийся тем, что перед реактивацией проводят дополнительную стадию очистки.

4,Способ по п. 1 или п. 2, отличающийся тем, что реактивацию проводят в присутствии денатурирующего средства и восстановителя, при этом реакционную смесь после процедуры денатурации - восстановителя разбавляют буфером реактивации так, чтобы при последующей реактива1Ц5и концентрация gSSg превосходила остаточную концентрацию ДТЕ.

5 о Способ активации тканевого активатора плазминогена, включающий экспрессию гена tPA в клетках Escherichia coli или Pseudomonas putida, включающий суспендирование и разрушение бактериальных клеток в буферном растворе, содержащем 6 моль/л гуанидинхлорида в присутствии 0,5о,2 моль/л ДТЕ, очистку с отделением денатурирующего средства и восстано

вителя с последующей реактивацией, отличающийс я тем, что после отделения гуанидинхлорида белок переносят на смешанньй дисульфид инкубацией с gSSg при концентрации 0,1 моль/л в присутствии 4,5 моль/л мочевины, а реактивацию проводят при рН 7-10,5 путем обработки gSH в концентрации 1-3 ммоль/л в присутствии 0,5 моль/л L-аргининао

6 о Способ поп. 5, отличающий с я тем, что стадию реак-. тивацик проводят в сьшороточном аль бумине BSA.

7. Способ по п. .1 или п. 6, отлича-ющийся тем, что суспендирование и разрушение бактериальных клеток проводят в С,1 М

трис-буферном растворе с рН 6,5,

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 1990 года SU1607689A3

Способ присоединения под водой элементов конструкций к трубчатым свайным опорам 1955
  • Яковлев Б.А.
SU114506A1
Способ гальванического снятия позолоты с серебряных изделий без заметного изменения их формы 1923
  • Бердников М.И.
SU12A1

SU 1 607 689 A3

Авторы

Райнер Рудольф

Штефан Фишер

Ральф Маттес

Даты

1990-11-15Публикация

1987-06-22Подача