Способ культивирования вируса висна-мэди Советский патент 1991 года по МПК C12N5/00 C12N7/00 

Описание патента на изобретение SU1659475A1

Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии, а именно к лабораторной диагностике висна-мэди овец, и может быть использовано для первичного выделения, идентификации, титрования вируса висна-мэди, накопления антигена при получении диагностических препаратов, а также сохранения антигенных и иммуногенных свойств вируса.

Целью изобретения является повышение выхода вируссодержащего материала, упрощение и удешевление способа.

П р и м е р 1. Для получения культуры клеток используют клинически здоровых, хорошо развитых ягнят 1-15-дневного возраста. Баранчиков кастрируют в хозяйстве открытым способом по общепринятой методике. Стерилизацию проводят в первой половине рабочего дня. Ягненка фиксируют спинкой вниз. Кожу мошонки дезинфицируют, стерильными ножницами вскрывают мошонку, захватив анатомическим пинцетом, подтягивают один из тестикулов, перевязывают стерильной шелковой нитью семенной канатик и отрезают его. Так же получают второй тестикул.

Извлеченные тестикулы помещают в стерильный флакон, содержащий 100-150 мл среды Хенкса с антибиотиками (пенициллин 500 ЕД/мл, стрептомицин 500 мкг/мл) и доставляют в лабораторию.

После доставки материала тестикулы тщательно (4-5 раз) промывают раствором Хенкса с антибиотиками, переносят в чашку

О

ел о

-N vj

СЛ

Петри, удаляют белочную оболочку и патологически измененные участки, разрезают тестикулы вдоль, вылущивают ткань и измельчают ее острыми ножницами до размеров частиц 1-3 мм. Измельченную ткань переносят в колбу для трипсинизации, промывают (4-6 раз) раствором Хенкса с антибиотиками для удаления обрывков ткани и эритроцитов.

Измельченную и промытую ткань заливают диспергирующей жидкостью (смесь 0,25%-ного раствора трипсина и 0.02%-но- го раствора версена в соотношение 9:1), подогретой до 37°С, после чего в колбу опускают стерильный магнит и ставят ее на магнитную мешалку, Дезагрегацию гкзни проводят дробно с интервалом 7-10 мин до полного истощения ткани при комнатной температуре. Для инактивации трипсина в полученную суспензию добавляют 5% сыворотки крови без консерванта. После каждого слива флакон с суспензией клеток помещают в холодильник. Взвесь клеток центрифугируют в течение 10 мин в рефрижераторной центрифуге при 800-1000 об/мин, надосадочную жидкость сливают, а осадок ресуспендируют в небольшом (30-50 мл) объеме подогретой до 37°С питательной среды, содержащей 0,5%-иый гидрализзт лактоальбумина на растворе Хенкса и среду Игла в соотношении 1:1 с добавлением 15- 20% сыворотки крупного рогатого скота и антибиотиков.

Полученную концентрированную клеточную суспензию тщательно перемешивают и отбирают 0,2 мл для подсчета числа клеток в камере Горяева. Окрашивают 0,5%-ным водным раствором трипанового синего, выдерживают 5 мин и заряжают камеру Горяева.

Полученную при дезагрегации ткани концентрированную суспензию клеток разводят ростовой средой до 250-300 тыс. клеток в 1 мл. При трипсинизации одной пары тестикул ягнят 1-15-дневного возраста получают 110-140 млн живых клеток.

Посевы культур клеток проводят в пробирки и матрасы, делают отметку верхней поверхности засеянных сосудов с указанием наименования ткани и даты посева, помещают в термостат при 37°С в горизонтальном положении. Через 18-24 ч инкубирования образуются островки клеток различной величины. Через 24-48 ч для под- держаня роста клеток проводят смену ростовой среды. Ростовую культуру помещают в термостат при 37°С. Сплошной монослой клеток тестикулов ягнят 1-15-дневного возраста образуется на 3-5 сут. Жизнеспособность клеток 90-95%.

Пересев клеток осуществляют после образования сплошного монослоя, Для этого из матраса с выросшим монослоем клеток удаляют питательную среду, монослой промывают стерильным раствором Хенкса с антибиотиками (пенициллин 100 Ед/мл, стрептомицин 100 мкг/мл) для освобождения от сыворотки, после чего вносят подогретую до 37°С смесь растворов версена

0,02% с трипсином 0,25% в соотношении 9:1. После смачивания монослоя половину жидкости сливают, матрасы помещают в термостат на 5-10 мин при 37°С. После отделения клеток от стекла во флаконы вносят

питательную среду с добавлением 10-15% сыворотки крупного рогатого скота и антибиотиков. Сыворотку предварительно инак- тивируют при 5о°С в течение 30 мин, Полученную суспензию клеток пересевают

бесцентрифужным способом с коэффициентом пересева 1:1,5-1:2.

При субкультивировании используют концентрацию клеток 200-250 тыс,/мл. Монослой формируется через 3-5 сут.

Первично трипсинизированные клетки

тестикулов ягнят но обнаруживают резких различий по структуре монослоя и представлены клетками эпителио- и фибробластоло- добного типз. На окрашенных препаратах

эпителиоподобные клетки имеют полигональную форму, границы клеток плотно примыкают друг к другу. Ядро клеток крупное, округлой формы с ядрышками. Количество ядрышек от 3 до 5, реже больше.Хроматин

ядра имеет крупносетчатую структуру, цитоплазма - с мелкой вакуолизацией. Фиб- робластоподобные клетки имеют форму веретена или вытянутой пирамиды, удлиненное ядро и многочисленные ядрышки.

Митомический индекс в культурах подсчитывают по общепринятой методике, Величина митотического индекса в культуре клеток тестикулов ягнят 1-15-дневного возраста изменяется от 12,4% а первые дни

культивирования до 25,5% на 3-4 сут роста. Средний митотический индекс составляет 22-25%.

П р и м е р 2. Перед заражением моно- слойные культуры клеток просматривают макро- и микроскопически. Макроскопически среда в культуральных сосудах должна быть прозрачной, иногда с легкой опалес- ценцией, красновато-розового цвета; мик- роскопически культура должна покрывать культуральную поверхность стекла сплошным пластом с преобладанием эпителиогю- добных клеток.

Заражение культур клеток проводят следующим образом.

Ростовую среду из сосудов сливают, мо- нослой клеток отмывают от сыворотки, ополаскивая его трижды раствором Хенкса с антибиотиками, вносят 10%-ную суспензию вирусосодержащего материала в объеме 20% от количества питательной среды, оставляют на 2-3 ч для контакта при 37°С. После этого матрас освобождают от внесенной суспензии и заливают в него поддержи- вающую среду. Инкубируют в течение 24-48 ч при 37°С.

Для ускорения проявления цитопатиче- ского действия вируса, повышения титра его накопления проводят повторное внесе- ние в сосуд с культурой клеток вирусного материала. Для этого культуру клеток тести- кулов ягненка освобождают от питательной среды, вносят 10%-ную суспензию вирусосодержащего материала, оставляют на 2-3 ч при 37°С. После этого удаляют суспензию из матрасов и вносят поддерживающую среду. Инкубируют при 37°С.

Вирус висны-мэди репродуцируется с проявлением цитопатического действия, началом которого в семенной клеточной культуре считают образование округлых и веретенообразных одноядерных клеток, затем многоядерных симпластов, которые на неокрашенных препаратах выглядят как звездчатые гигантские клетки с большим ко- личествпм отростков. Характерной чертой поликариоцитов в инфицированной культуре клеток является концентрирование ядер в розетки. Наиболее характерные признаки

цитопатического действия при выделении вируса зисны-мэди из патологического материала от больных овец (кусочки легких, мозга, региональные лимфатические узлы, кровь) отмечают на 4-6 пассажах. При заражении вирусом висны-мэди клеточной культуры тестикулятов ягнят 1-15-дневного возраста вновь синтезированный вирус обнаруживают на 42 ч после инокуляции. Титр вируса возрастает к 60 часу и достигает максимального значения на 120 ч после инокуляции. Титр вируса висны-мэди составляет 10 6 5ТЦД50/Мл.

Примерз. Данные, касающиеся чувствительности культур клетоктестикулов ягнят з зависимости от возраста, приводятся в табл.1.

П р и м е р 4. Сравнительные данные средних величин основных показателей эффективности данного и известных способов культивирования вируса висны-мэди приводятся в табл. 2.

Формула изобретения Способ культивирования вируса висна- мэди, включающий внесение вирусного материала в культуру клеток, выращиваемую на питательной среде, отличающийся тем, что, с целью повышения выхода вирусосодержащего материала, упрощения и удешевления способа, в качестве культуры клеток используют тестикулы ягнят 1-15- дневного возраста, а внесение вируса осуществляют двукратно с интервалом 24-48 ч.

Похожие патенты SU1659475A1

название год авторы номер документа
Штамм культивируемых клеток тестикул эмбриона быка, используемый для накопления вирусов крупного рогатого скота 1989
  • Петручук Елена Мидатовна
  • Шалунова Нина Васильевна
  • Грабовская Ирина Леонидовна
  • Ночевный Виктор Тимофеевич
SU1664842A1
ШТАММ КУЛЬТИВИРУЕМЫХ КЛЕТОК ГОНАД CAPRA HIRCUS L-ПРОДУЦЕНТ ВИРУСОВ ЖИВОТНЫХ 1994
  • Федорова Е.Е.
  • Худяков Г.А.
  • Герасимова Н.И.
  • Герасимов В.Н.
RU2061753C1
ШТАММ ДИПЛОИДНЫХ КЛЕТОК СИНОВИАЛЬНОЙ МЕМБРАНЫ ЯГНЕНКА Ovis aries, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ВИРУСОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ 2012
  • Барышникова Елена Ивановна
  • Колбасова Ольга Львовна
RU2507255C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЭПИТЕЛИОПОДОБНЫХ КЛЕТОК ЛЕГКОГО ПЛОДА БУЙВОЛИЦЫ ДЛЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ ВИРУСОВ 2011
  • Будулов Нурдин Рагимханович
  • Кабардиев Садрутдин Шамшитович
  • Гайдарбекова Ханзадай Мансуровна
  • Магомедов Магомед Назирович
RU2496870C2
ВАКЦИНА ДЛЯ ПРОФИЛАКТИКИ ЧУМЫ, ИНФЕКЦИОННОГО ГЕПАТИТА, АДЕНОВИРУСНЫХ ИНФЕКЦИЙ И ПАРВОВИРУСНОГО ЭНТЕРИТА У СОБАК И СПОСОБ ПРОФИЛАКТИКИ ЧУМЫ, ИНФЕКЦИОННОГО ГЕПАТИТА, АДЕНОВИРУСНЫХ ИНФЕКЦИЙ И ПАРВОВИРУСНОГО ЭНТЕРИТА У СОБАК 1991
  • Уласов В.И.
  • Селиванов А.В.
  • Сулимов А.А.
  • Карпов В.М.
  • Радьков В.Н.
RU2030917C1
СПОСОБ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ВИРУСВАКЦИНЫ ПРОТИВ КЛАССИЧЕСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ 2007
  • Жестерев Виктор Иванович
  • Дмитренко Виктор Владимирович
  • Куриннов Виктор Васильевич
RU2332234C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ СТАБИЛЬНЫХ КЛЕТОЧНЫХ КУЛЬТУР 2008
  • Глинских Нина Поликарповна
  • Бахарев Алексей Анатольевич
  • Устьянцев Павел Васильевич
  • Устьянцев Игорь Васильевич
RU2392318C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ КОНЦЕНТРАТОВ ВИРУСОВ, ВЫЗЫВАЮЩИХ ГЕМОРРАГИЧЕСКИЕ ЛИХОРАДКИ И ОБЛАДАЮЩИХ ИММУНОГЕННОЙ И ПРОТЕКТИВНОЙ АКТИВНОСТЬЮ 1991
  • Агафонов А.П.
  • Стрельцова М.А.
  • Игнатьев Г.М.
  • Твердохлебов А.В.
  • Чепурнов А.А.
  • Калиберов С.А.
  • Кузьмин В.А.
  • Черный Н.Б.
RU2029561C1
Способ внутритиповой дифференциации полиовирусов 1988
  • Спыну Константин Иванович
  • Вуткарев Василий Петрович
  • Грушко Татьяна Петровна
  • Скоферца Петр Григорьевич
  • Кострица Светлана Сергеевна
SU1583441A1
Маркер оценки аттенуации вирусов полиомиелита 1990
  • Спыну Константин Иванович
  • Вуткарев Василий Петрович
  • Грушко Татьяна Петровна
SU1799598A1

Реферат патента 1991 года Способ культивирования вируса висна-мэди

Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии, а именно к лабораторной диагностике вируса висна-мэди овец, и может быть использовано для первичного выделения, идентификации, титрования вируса висна-мэди, накопления антигена при получении диагностических препаратов, а также сохранения антигенных и иммуногенных свойств вируса. С целью повышения выхода вирусосодержа- щего материала, упрощения и удешевления способа вирус культивируют в культуре клеток тестикулятов ягнят 1-15-дневного возраста, с использованием питательных растворов - 0,5%-ного гидролизата лакто- .альбумина на растворе Хенкса и среды Игла в соотношении 1:1, а заражение культуры клеток вирусосодержащей суспензией осуществляют дважды с интервалом 24-48 ч. 2 табл.

Формула изобретения SU 1 659 475 A1

Таблица 1

Чувствительность культуры клеток тестикулов ягнят в зависимости от возраста

Выход клеток Жизнеспособность, % Средний митотический индекс, %

Время формирования монослоя, сут. Структура монослоя

Титр вируса, ТЦЦ50/М

10

70-100 50-60

12-13

10

3-56-7

Смешанного типа с Смешанного типа с преобладанием эпи-преобладанием эпи- телиоподобных телиоподрбных 10-6,5to4 -

Таблица 2

Сравнительная эффективность предлагаемого и известных способов культивирования вируса висны-мэди

1-4-10 30-50

6-8

70-75-10 80-87

18

7-104-5

Фибробластопо- Смешанного типа с добного типа преобладанием фиб- робластоподобных

10

.,-5,0-6,0

10

Образование округлых и веретенообразных одноядерных клеток, а также многоядерных симпластов, которые на неокрашенных препаратах выглядят как звездчатые гигантские клетки с большим количеством отростков. Ядра поликарциоцитов концентрируются в розетки

110-140-10 90-95

22-25

3-5

Смешанного типа с преобладанием эпителиоподобных

10

6, Г

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 1991 года SU1659475A1

Печь для непрерывного получения сернистого натрия 1921
  • Настюков А.М.
  • Настюков К.И.
SU1A1
Welnchold E.//Vlsna-Vlrus-ahnllche Partikel In der Kultur von Plexus chorlodens- Zellen elner Ziege mlt Visna- Symptomen//zbl.Vet.Med., Bd
Выбрасывающий ячеистый аппарат для рядовых сеялок 1922
  • Лапинский(-Ая Б.
  • Лапинский(-Ая Ю.
SU21A1
s
Способ образования коричневых окрасок на волокне из кашу кубической и подобных производных кашевого ряда 1922
  • Вознесенский Н.Н.
SU32A1
Thormar H.//An electron mlcroscople study of tissue cultures infected with visna- virus//Virology
Судно 1925
  • Беньковский Ф.А.
SU1961A1
vol
Топливник с глухим подом 1918
  • Брандт П.А.
SU141A1
Приспособление для автоматического перевода стрелок машинистом 1922
  • Кашинский Б.Б.
SU463A1

SU 1 659 475 A1

Авторы

Поздеева Римма Дмитриевна

Сочнев Василий Васильевич

Сисягин Павел Николаевич

Молявкин Николай Иванович

Гладышева Нина Илларионовна

Даты

1991-06-30Публикация

1988-10-13Подача