Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии, а именно к лабораторной диагностике висна-мэди овец, и может быть использовано для первичного выделения, идентификации, титрования вируса висна-мэди, накопления антигена при получении диагностических препаратов, а также сохранения антигенных и иммуногенных свойств вируса.
Целью изобретения является повышение выхода вируссодержащего материала, упрощение и удешевление способа.
П р и м е р 1. Для получения культуры клеток используют клинически здоровых, хорошо развитых ягнят 1-15-дневного возраста. Баранчиков кастрируют в хозяйстве открытым способом по общепринятой методике. Стерилизацию проводят в первой половине рабочего дня. Ягненка фиксируют спинкой вниз. Кожу мошонки дезинфицируют, стерильными ножницами вскрывают мошонку, захватив анатомическим пинцетом, подтягивают один из тестикулов, перевязывают стерильной шелковой нитью семенной канатик и отрезают его. Так же получают второй тестикул.
Извлеченные тестикулы помещают в стерильный флакон, содержащий 100-150 мл среды Хенкса с антибиотиками (пенициллин 500 ЕД/мл, стрептомицин 500 мкг/мл) и доставляют в лабораторию.
После доставки материала тестикулы тщательно (4-5 раз) промывают раствором Хенкса с антибиотиками, переносят в чашку
О
ел о
-N vj
СЛ
Петри, удаляют белочную оболочку и патологически измененные участки, разрезают тестикулы вдоль, вылущивают ткань и измельчают ее острыми ножницами до размеров частиц 1-3 мм. Измельченную ткань переносят в колбу для трипсинизации, промывают (4-6 раз) раствором Хенкса с антибиотиками для удаления обрывков ткани и эритроцитов.
Измельченную и промытую ткань заливают диспергирующей жидкостью (смесь 0,25%-ного раствора трипсина и 0.02%-но- го раствора версена в соотношение 9:1), подогретой до 37°С, после чего в колбу опускают стерильный магнит и ставят ее на магнитную мешалку, Дезагрегацию гкзни проводят дробно с интервалом 7-10 мин до полного истощения ткани при комнатной температуре. Для инактивации трипсина в полученную суспензию добавляют 5% сыворотки крови без консерванта. После каждого слива флакон с суспензией клеток помещают в холодильник. Взвесь клеток центрифугируют в течение 10 мин в рефрижераторной центрифуге при 800-1000 об/мин, надосадочную жидкость сливают, а осадок ресуспендируют в небольшом (30-50 мл) объеме подогретой до 37°С питательной среды, содержащей 0,5%-иый гидрализзт лактоальбумина на растворе Хенкса и среду Игла в соотношении 1:1 с добавлением 15- 20% сыворотки крупного рогатого скота и антибиотиков.
Полученную концентрированную клеточную суспензию тщательно перемешивают и отбирают 0,2 мл для подсчета числа клеток в камере Горяева. Окрашивают 0,5%-ным водным раствором трипанового синего, выдерживают 5 мин и заряжают камеру Горяева.
Полученную при дезагрегации ткани концентрированную суспензию клеток разводят ростовой средой до 250-300 тыс. клеток в 1 мл. При трипсинизации одной пары тестикул ягнят 1-15-дневного возраста получают 110-140 млн живых клеток.
Посевы культур клеток проводят в пробирки и матрасы, делают отметку верхней поверхности засеянных сосудов с указанием наименования ткани и даты посева, помещают в термостат при 37°С в горизонтальном положении. Через 18-24 ч инкубирования образуются островки клеток различной величины. Через 24-48 ч для под- держаня роста клеток проводят смену ростовой среды. Ростовую культуру помещают в термостат при 37°С. Сплошной монослой клеток тестикулов ягнят 1-15-дневного возраста образуется на 3-5 сут. Жизнеспособность клеток 90-95%.
Пересев клеток осуществляют после образования сплошного монослоя, Для этого из матраса с выросшим монослоем клеток удаляют питательную среду, монослой промывают стерильным раствором Хенкса с антибиотиками (пенициллин 100 Ед/мл, стрептомицин 100 мкг/мл) для освобождения от сыворотки, после чего вносят подогретую до 37°С смесь растворов версена
0,02% с трипсином 0,25% в соотношении 9:1. После смачивания монослоя половину жидкости сливают, матрасы помещают в термостат на 5-10 мин при 37°С. После отделения клеток от стекла во флаконы вносят
питательную среду с добавлением 10-15% сыворотки крупного рогатого скота и антибиотиков. Сыворотку предварительно инак- тивируют при 5о°С в течение 30 мин, Полученную суспензию клеток пересевают
бесцентрифужным способом с коэффициентом пересева 1:1,5-1:2.
При субкультивировании используют концентрацию клеток 200-250 тыс,/мл. Монослой формируется через 3-5 сут.
Первично трипсинизированные клетки
тестикулов ягнят но обнаруживают резких различий по структуре монослоя и представлены клетками эпителио- и фибробластоло- добного типз. На окрашенных препаратах
эпителиоподобные клетки имеют полигональную форму, границы клеток плотно примыкают друг к другу. Ядро клеток крупное, округлой формы с ядрышками. Количество ядрышек от 3 до 5, реже больше.Хроматин
ядра имеет крупносетчатую структуру, цитоплазма - с мелкой вакуолизацией. Фиб- робластоподобные клетки имеют форму веретена или вытянутой пирамиды, удлиненное ядро и многочисленные ядрышки.
Митомический индекс в культурах подсчитывают по общепринятой методике, Величина митотического индекса в культуре клеток тестикулов ягнят 1-15-дневного возраста изменяется от 12,4% а первые дни
культивирования до 25,5% на 3-4 сут роста. Средний митотический индекс составляет 22-25%.
П р и м е р 2. Перед заражением моно- слойные культуры клеток просматривают макро- и микроскопически. Макроскопически среда в культуральных сосудах должна быть прозрачной, иногда с легкой опалес- ценцией, красновато-розового цвета; мик- роскопически культура должна покрывать культуральную поверхность стекла сплошным пластом с преобладанием эпителиогю- добных клеток.
Заражение культур клеток проводят следующим образом.
Ростовую среду из сосудов сливают, мо- нослой клеток отмывают от сыворотки, ополаскивая его трижды раствором Хенкса с антибиотиками, вносят 10%-ную суспензию вирусосодержащего материала в объеме 20% от количества питательной среды, оставляют на 2-3 ч для контакта при 37°С. После этого матрас освобождают от внесенной суспензии и заливают в него поддержи- вающую среду. Инкубируют в течение 24-48 ч при 37°С.
Для ускорения проявления цитопатиче- ского действия вируса, повышения титра его накопления проводят повторное внесе- ние в сосуд с культурой клеток вирусного материала. Для этого культуру клеток тести- кулов ягненка освобождают от питательной среды, вносят 10%-ную суспензию вирусосодержащего материала, оставляют на 2-3 ч при 37°С. После этого удаляют суспензию из матрасов и вносят поддерживающую среду. Инкубируют при 37°С.
Вирус висны-мэди репродуцируется с проявлением цитопатического действия, началом которого в семенной клеточной культуре считают образование округлых и веретенообразных одноядерных клеток, затем многоядерных симпластов, которые на неокрашенных препаратах выглядят как звездчатые гигантские клетки с большим ко- личествпм отростков. Характерной чертой поликариоцитов в инфицированной культуре клеток является концентрирование ядер в розетки. Наиболее характерные признаки
цитопатического действия при выделении вируса зисны-мэди из патологического материала от больных овец (кусочки легких, мозга, региональные лимфатические узлы, кровь) отмечают на 4-6 пассажах. При заражении вирусом висны-мэди клеточной культуры тестикулятов ягнят 1-15-дневного возраста вновь синтезированный вирус обнаруживают на 42 ч после инокуляции. Титр вируса возрастает к 60 часу и достигает максимального значения на 120 ч после инокуляции. Титр вируса висны-мэди составляет 10 6 5ТЦД50/Мл.
Примерз. Данные, касающиеся чувствительности культур клетоктестикулов ягнят з зависимости от возраста, приводятся в табл.1.
П р и м е р 4. Сравнительные данные средних величин основных показателей эффективности данного и известных способов культивирования вируса висны-мэди приводятся в табл. 2.
Формула изобретения Способ культивирования вируса висна- мэди, включающий внесение вирусного материала в культуру клеток, выращиваемую на питательной среде, отличающийся тем, что, с целью повышения выхода вирусосодержащего материала, упрощения и удешевления способа, в качестве культуры клеток используют тестикулы ягнят 1-15- дневного возраста, а внесение вируса осуществляют двукратно с интервалом 24-48 ч.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Штамм культивируемых клеток тестикул эмбриона быка, используемый для накопления вирусов крупного рогатого скота | 1989 |
|
SU1664842A1 |
ШТАММ КУЛЬТИВИРУЕМЫХ КЛЕТОК ГОНАД CAPRA HIRCUS L-ПРОДУЦЕНТ ВИРУСОВ ЖИВОТНЫХ | 1994 |
|
RU2061753C1 |
ШТАММ ДИПЛОИДНЫХ КЛЕТОК СИНОВИАЛЬНОЙ МЕМБРАНЫ ЯГНЕНКА Ovis aries, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ВИРУСОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ | 2012 |
|
RU2507255C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЭПИТЕЛИОПОДОБНЫХ КЛЕТОК ЛЕГКОГО ПЛОДА БУЙВОЛИЦЫ ДЛЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ ВИРУСОВ | 2011 |
|
RU2496870C2 |
ВАКЦИНА ДЛЯ ПРОФИЛАКТИКИ ЧУМЫ, ИНФЕКЦИОННОГО ГЕПАТИТА, АДЕНОВИРУСНЫХ ИНФЕКЦИЙ И ПАРВОВИРУСНОГО ЭНТЕРИТА У СОБАК И СПОСОБ ПРОФИЛАКТИКИ ЧУМЫ, ИНФЕКЦИОННОГО ГЕПАТИТА, АДЕНОВИРУСНЫХ ИНФЕКЦИЙ И ПАРВОВИРУСНОГО ЭНТЕРИТА У СОБАК | 1991 |
|
RU2030917C1 |
СПОСОБ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ВИРУСВАКЦИНЫ ПРОТИВ КЛАССИЧЕСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ | 2007 |
|
RU2332234C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ СТАБИЛЬНЫХ КЛЕТОЧНЫХ КУЛЬТУР | 2008 |
|
RU2392318C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ КОНЦЕНТРАТОВ ВИРУСОВ, ВЫЗЫВАЮЩИХ ГЕМОРРАГИЧЕСКИЕ ЛИХОРАДКИ И ОБЛАДАЮЩИХ ИММУНОГЕННОЙ И ПРОТЕКТИВНОЙ АКТИВНОСТЬЮ | 1991 |
|
RU2029561C1 |
Способ внутритиповой дифференциации полиовирусов | 1988 |
|
SU1583441A1 |
Маркер оценки аттенуации вирусов полиомиелита | 1990 |
|
SU1799598A1 |
Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии, а именно к лабораторной диагностике вируса висна-мэди овец, и может быть использовано для первичного выделения, идентификации, титрования вируса висна-мэди, накопления антигена при получении диагностических препаратов, а также сохранения антигенных и иммуногенных свойств вируса. С целью повышения выхода вирусосодержа- щего материала, упрощения и удешевления способа вирус культивируют в культуре клеток тестикулятов ягнят 1-15-дневного возраста, с использованием питательных растворов - 0,5%-ного гидролизата лакто- .альбумина на растворе Хенкса и среды Игла в соотношении 1:1, а заражение культуры клеток вирусосодержащей суспензией осуществляют дважды с интервалом 24-48 ч. 2 табл.
Таблица 1
Чувствительность культуры клеток тестикулов ягнят в зависимости от возраста
Выход клеток Жизнеспособность, % Средний митотический индекс, %
Время формирования монослоя, сут. Структура монослоя
Титр вируса, ТЦЦ50/М
10
70-100 50-60
12-13
10
3-56-7
Смешанного типа с Смешанного типа с преобладанием эпи-преобладанием эпи- телиоподобных телиоподрбных 10-6,5to4 -
Таблица 2
Сравнительная эффективность предлагаемого и известных способов культивирования вируса висны-мэди
1-4-10 30-50
6-8
70-75-10 80-87
18
7-104-5
Фибробластопо- Смешанного типа с добного типа преобладанием фиб- робластоподобных
10
.,-5,0-6,0
10
Образование округлых и веретенообразных одноядерных клеток, а также многоядерных симпластов, которые на неокрашенных препаратах выглядят как звездчатые гигантские клетки с большим количеством отростков. Ядра поликарциоцитов концентрируются в розетки
110-140-10 90-95
22-25
3-5
Смешанного типа с преобладанием эпителиоподобных
10
6, Г
Печь для непрерывного получения сернистого натрия | 1921 |
|
SU1A1 |
Welnchold E.//Vlsna-Vlrus-ahnllche Partikel In der Kultur von Plexus chorlodens- Zellen elner Ziege mlt Visna- Symptomen//zbl.Vet.Med., Bd | |||
Выбрасывающий ячеистый аппарат для рядовых сеялок | 1922 |
|
SU21A1 |
s | |||
Способ образования коричневых окрасок на волокне из кашу кубической и подобных производных кашевого ряда | 1922 |
|
SU32A1 |
Thormar H.//An electron mlcroscople study of tissue cultures infected with visna- virus//Virology | |||
Судно | 1925 |
|
SU1961A1 |
vol | |||
Топливник с глухим подом | 1918 |
|
SU141A1 |
Приспособление для автоматического перевода стрелок машинистом | 1922 |
|
SU463A1 |
Авторы
Даты
1991-06-30—Публикация
1988-10-13—Подача