Изобретение относится к клинической иммунологии и может быть использовано при диагностике нарушения хемотаксиса лейкоцитов у обследуемых лиц.
Целью изобретения является повышение точности и увеличение производительности способа определения хемотаксиса.
Способ осуществляется следующим образом.
Объектом исследования служит гепаринизированная кровь в количестве 2 мл, ко-, торую смешивают с 2 мл 1 %-ной желатины, отстаивают при 37°С в течение 10-15 мин. Надосадок извлекают, отмывают в среде 199, просчитывают клетки и составляют клеточную взвесь с концентрацией 1 млн./мл. . Затем готовят состав для заполнения капилляров. Для этого берут навеску 20 мг порошка агара (Difeo). К ней добавляют 1 мл среды 199. Выдерживают смесь в течение 20 мин
при комнатной температуре для набухания и пропитывания агара. Затем агар в среде 199 помещают в водяную баню, где при температуре кипящей воды происходит расплавление агара. Далее золю агара дают остыть до 50-55°С и в него вносят при перемешивании 1 мл среды 199, содержащей 0,16 мл (8%) эмбриональной телячьей сыворотки,0,0008 г(0,04%)глютаминовой кислоты и 0,0172 мг(из расчета 0,86 мг на 10 мл среды) М-формилметиониловых пептидов.
Капилляры плоские, 5-канальные,0,25 мм, заполняют агаровым золем, для чего их опускают в вертикальном положении в вышеописанный состав, представляю1ций собой жидкость (t-50-55°C). Для застывания жидкости в капилляре их оставляют при комнатной температуре, после чего извлекают. Далее клеточную взвесь раскапывают по 0,1 мл в лунки планшет. Туда же в вертикальной позиции помещают,капилляры опытные и контрольные. Инкубируют 10 ч, извлекают капилляры и измеряют длину пробега мигрировавших клеток с помощью микроскопа с окуляром-микрометром (ув. 10x25).
П р и м е р -1. Нейтрофильную взвесь получают путем седиментации на градиенте плотности MPR-M. Чистота/выделенных нейтрофилов составила 95-98%, жизнеспособность 98% по исключению трипанового синего. Осуществление способа отличается от описанного в примере тем, что нейтрофилы вносят в лунки планшет В количестве 1,5 млн/мл.
Капилляры заполняют смесью следующего состава: эмбриональная телячья сыворотка 13 мл, глютаминоаая кислота 0,06 г. N-формилметиониловые пептиды 0,0086 мг, агар 0,8 г, среда 199 до 100мл, а инкубацию проводят в течение 8 ч. ,
Результаты опыта по определению длины пробега в 10 каналах капилляров представлены в табл.1.
Результаты миграции нейтрофилов из чистой взвеси представлены в табл. Nfe 2. Результату, указанные в таблицах и примерах, соответствуют числу делений линейки в окуляре при увеличении, окуляр 10, обьектив - 25. При необходимости для перевода результатов в миллиметры, полученные значения делят на 25. Разбросы определения миграций в каналах капилляра составляют 1,6-3%, Результат фиксируется в виде средней арифметической,
Сравнительный анализ предлагаемого способа и способа-прототипа представлен в табл. 3.
Под порядковыми номерами (1,2 и т.д.) представлены по способу-прототипу абсолютное количество мигрированных клеток на обратной стороне мембраны, а по предлагаемому способу - длина пробега с помощью окуляра-микрометра (ув. 10X25).
Как видно из таблицы, ошибка опыта способа-прототипа превосходит ошибку предлагаемого способа в 3-5 раз при определении хемотаксиса, т.е. точность предлагаемого способа в 3-5 раз выше по .сравнению со способом-прототипом.
Формула изобретения
Способ определения хемотаксиса лейкоцитов, включающий их выделение и определение длины пробега мигрирующих клеток, отличающийся тем. что, с целью повышения точности способа и увеличения его производительности, лейкоциты в количестве 1,0-1,5 млн.наносят в лунки планшет с питательной средой, в них в вертикальной позиции размещают капилляры, заполненные средой, содержащей в 100 мл эмбриональную телячью сыворотку 8-13 мл, глютаниновую кислоту 0,04-0,06 г, N-формил-метиониловые пептиды 0,0086-0,86 мг, агар 0,8-1 f, инкубируют в течение 8-10 ч, извлекают капилляры и измеряют длины пробега мигрирующих клеток с помощью микроскопа с окуляром-микрометром.
Таблица
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Способ определения розеткообразующих клеток в биологических жидкостях | 1985 |
|
SU1364986A1 |
СРЕДСТВО ДЛЯ ИММУНОСТИМУЛЯЦИИ | 1998 |
|
RU2145500C1 |
Способ определения естественной киллерной активности клеток | 1989 |
|
SU1730592A1 |
СРЕДСТВО, СТИМУЛИРУЮЩЕЕ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ СИНТЕЗ ИММУНОГЛОБУЛИНОВ | 1995 |
|
RU2108096C1 |
Способ определения индивидуальной чувствительности к иммуномодулятору | 1988 |
|
SU1658094A1 |
СПОСОБ ВЫЯВЛЕНИЯ НАРУШЕНИЯ ФУНКЦИИ ФАГОЦИТОВ ПРИ РАЗВИТИИ РЕЦИДИВИРУЮЩИХ ИНФЕКЦИОННЫХ ПРОЦЕССОВ | 2007 |
|
RU2362997C2 |
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ПАТОЛОГИЧЕСКИХ НАРУШЕНИЙ В ОРГАНИЗМЕ | 1995 |
|
RU2086982C1 |
Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS L. - продуцент моноклональных антител к антигену кортикальных тимоцитов человека | 1988 |
|
SU1576561A1 |
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ФАГОЦИТАРНОЙ АКТИВНОСТИ НЕЙТРОФИЛОВ ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ КРОВИ ЖИВЫХ ОРГАНИЗМОВ | 2003 |
|
RU2242763C1 |
Способ диагностики вирусного гепатита | 1981 |
|
SU1061799A1 |
Изобретение относится к медицине, в частности к иммунологии. Целью изобретения является повышение точности и производительности определения миграцииклеток при иммуноэпидемиологических исследованиях. Выделенные из крови обследуемых лиц лейкоциты в количестве 1,0-1,5 млн/мл вносят в лунки планшет, содержащие питательную среду, с размещенными в них несколькими капиллярами. Капилляры предварительно заполняют составом, содержащим агар и питательную среду при их соотношении соответственно равном
М 23,6,- (,1: т-0,66. Ошибка опыта Р - 100 % 2,7 %.
М + т
Таблица 2
М 727.000 (.620 .663 Р 9% С внесением ХА.
Таблица 3
М 23.6 (.2 m 0.66 Р - 2.7 %
Иммунологические методы | |||
Под редакцией Р | |||
Фримеля | |||
М/ | |||
Медицина, 1987, с | |||
Телефонная трансляция с катодными лампами | 1922 |
|
SU333A1 |
Авторы
Даты
1992-02-15—Публикация
1989-11-30—Подача