Изобретение относится к вирусологии и касается питательных сред для поддержания культур клеток при культивировании,
Известна поддерживающая питательная среда, включающая стандартную среду с 2%-ной сывороткой крупного рогатого скота и биологический стабилизатор липидной природы.
Целью является повышение термоустойчивости культивируемого вируса венесуэльского энцефаломиелита лошадей за счет увеличения концентрации холестерина в среде культивирования.
Цель достигается тем, что поддерживающая питательная среда для культур клеток при культивировании вируса венесуэльского энцефаломиелита лощадей включает
стандартную питательную среду с 2%-ной сывороткой крупного рогатого скота и биологический стабилизатор липидной природы. В качестве стабилизатора используют холестерин из мозга крупного рогатого скота в липидорастворителе при следующем соотношении компонентов:
Холестерин5-25 мг/л
Липидорастворитель0,5-1 мл/л
Стандартная питательная среда с 2%-ной сывороткой КРСДо 1 л В качестве липидораствррителя используют смесь хлороформа с твином 85 в объемном соотношении 10:1.
Питательная среда готовится на основе стандартной питательной среды Игла MEM
4 Ю СО
|Ч)
Hepes с 2%-ной сывороткой крупного рогатого скота. В среду добавляют биологический стабилизатор липидной природы. В качестве стабилизатора используют холестерин, полученный из мозга КРС в концентрации 5-25 мг/л. Холестерин вводят в среду культивирования в липидораствори- теле в концентрации (0,5-1) мл/л. Липидо- растворитель содержит хлороформ и твин-85 в объемном соотношении 10:1. Конечное содержание растворителя в среде не превышает 0,1 об.%. Полученную смесь встряхивают, после чего среда готова к применению. Двухсуточные монослои перевиваемых клеток почки зеленой мартышки vero, выращенные во флаконах на базовой среде с добавлением 10%-ной сыворотки крупного рогатого скота, заражают 0,1 мл вируссодержащей жидкости на основе штамма ТС-83 вируса венесуэльского энцефаломиелита из расчета 1-10 БОЕ/кл. После адсорбции (40 мин) монослои заливают предлагаемой в заявке поддерживающей питательной средой. После инкубации при 37°С в течение 3 сут образцы с полученной ВСС выдерживают при 37°С 5 сут с последующим тестированием инфекционности на первичной культуре клеток ФЭК под твердым агаровым покрытием.
Составы поддерживающих питательных сред приведены в табл. 1.
Контрольный состав содержит среду Игла MEM Hepes с 2%-ной сывороткой КРС 1 л,
Тестирование инфекционного штамма ТС-83 вируса осуществляют для каждого состава питательных сред. После анализа пол- ученных данных получают динамику инактивации штамма ТС-83 вируса в суспензии (фиг.1-4).
Константы скоростей инактивации вируса при 37°С приведены в табл. 2.
Для расчета констант скоростей инактивации использовалась модель вида
С Со ехр(-Кин t),(1)
где Кин - константа скорости гибели вируса;
Со и С - соответственно исходная и текущая концентрации вирусов;
t - время экспозиции.
В соответствии с (1) строились линейные регрессии для функции
T lgC
T a + bt(2)
Тогда коэффициент инактивации
КИН -Ь Ig 10(3)
Для определения коэффициентов модели (1) используют взвешенный метод наименьших квадратов.
Исследования показывают, что концентрация холестерина в предложенной среде
до 5 мг/л определяется присутствием сыворотки КРС. Увеличение концентрации холестерина до 50 мг/л (фиг.4) приводит к отрицательному эффекту при хранении вируса в суспензии по сравнению с контролем. Из фиг. 1-3 следует, что холестерин в концентрации 5-25 мг/л оказывает стабилизирующее действие на сохранение инфекционности вируса венесуэльского
0 энцефаломиелита лошадей в суспензии при 37°С. При исходно равных значениях титра инфекционности для всех образцов, исключая образец, содержащий 50 мг/л холестерина, в котором исходный титр ниже,
5 наблюдают более медленную инактивацию вируса. Разница между титрами опытных и контрольных образцов составляет к концу 5 сут хранения 0,5-1,5 Ig БОЕ/мл. Концентрация холестерина 50 мг/л среды приводит к
0 ускоренной инактивации вируса (фиг.4). Константы скоростей инактивации для концентраций холестерина 5-25 мг/л статистически значимо отличаются от контроля и имеют более низкие значения, а для концен5 трации 50 мг/л превышают или неотличимы от контрольных образцов, где концентрация холестерина менее 5 мг/л или отсутствует вообще. Диапазон концентраций липидора- створителя в питательной среде составляет
0 0,5-1 мл/л. При концентрации растворителя более 1 мл/л на клетки культуральной среды оказывается токсическое воздействие. Концентрация растворителя менее 0,5 мл/л ограничена возможностью растворе5 ния в нем холестерина. Соотношение хлороформа с твином 85 (10:1) в растворителе подобрано также из соображения наименьшего токсического воздействия на клетки культуральной среды и оптимальности рас0 творения холестерина и последующего его перевода в водную фазу при смешении с питательной средой.
Формула изобретения Поддерживающая питательная среда
5 для культур клеток при культивировании вируса венесуэльского энцефаломиелита лошадей, включающая стандартную питательную среду с 2%-ной сывороткой крупного рогатого скота и биологический
0 стабилизатор липидной природы, отличающаяся тем, что, с целью повышения термоустойчивости культивируемого вируса, в качестве стабилизатора используют холестерин из мозга крупного рогатого скота
5 в липидорастворителе, представляющем смесь хлороформа с твином 85 в объёмном соотношении 10:1 при соотношении компонентов
Холестерин5-25 мг
Липидорастворитель0,5-1 мл
Стандартная питательная среда с 2%-ной сывороткой
крупного рогатого скота
До 1л Таблица 1
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ СТАБИЛИЗАЦИИ ВИРУСА ВЕНЕСУЭЛЬСКОГО ЭНЦЕФАЛИТА ЛОШАДЕЙ | 1991 |
|
RU2035508C1 |
Способ получения вирусов венесуэльского энцефаломиелита лошадей и Марбург | 1991 |
|
SU1803425A1 |
ИНАКТИВИРОВАННАЯ ВАКЦИНА ПРОТИВ ВЕНЕСУЭЛЬСКОГО ЭНЦЕФАЛОМИЕЛИТА ЛОШАДЕЙ И СПОСОБ ЕЕ ПОЛУЧЕНИЯ | 1991 |
|
RU2035191C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЖИВОЙ КОРЕВОЙ ВАКЦИНЫ ДЛЯ ПЕРОРАЛЬНОГО ПРИМЕНЕНИЯ И СПОСОБ ИММУНИЗАЦИИ ПРОТИВ КОРИ | 1997 |
|
RU2133625C1 |
СПОСОБ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ВАКЦИНЫ ПРОТИВ БЛЮТАНГА КРУПНОГО И МЕЛКОГО РОГАТОГО СКОТА (ВАРИАНТЫ) И ВАКЦИНА ПРОТИВ БЛЮТАНГА КРУПНОГО И МЕЛКОГО РОГАТОГО СКОТА | 2008 |
|
RU2391114C1 |
СРЕДСТВО ДЛЯ ДИАГНОСТИКИ ЛЕЙКОЗА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА И СПОСОБ ЕГО ПРИМЕНЕНИЯ | 2014 |
|
RU2560684C1 |
Способ культивирования штамма-продуцента вируса иммунодефицита человека I типа | 1988 |
|
SU1597388A1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ СУБСТАНЦИИ РЕКОМБИНАНТНОГО ЭРИТРОПОЭТИНА ЧЕЛОВЕКА И НАНОКАПСУЛИРОВАННАЯ ФОРМА РЕКОМБИНАНТНОГО ЭРИТРОПОЭТИНА ЧЕЛОВЕКА С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ СУБСТАНЦИИ, ПОЛУЧЕННОЙ УКАЗАННЫМ СПОСОБОМ | 2012 |
|
RU2518329C1 |
СПОСОБ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ИНАКТИВИРОВАННОЙ БИВАЛЕНТНОЙ ВАКЦИНЫ ПРОТИВ ВИРУСНОЙ ДИАРЕИ И АДЕНОВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИИ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА | 2008 |
|
RU2362585C1 |
Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS L. - продуцент моноклональных антител против белка р24 вируса лейкоза крупного рогатого скота | 1988 |
|
SU1627557A1 |
Изобретение относится к вирусологии и касается питательных сред для поддержания культур клеток при культивировании РНК-соде ржа щих почкующихся вирусов, в частности вируса венесуэльско го энцефаломиелита лощадей. Цель изобретения - повышение термоустойчивости культивируемого вируса. Для этого используется поддерживающая питательная среда, содержащая стандартную питательную среду с 2%-ной сывороткой крупного рогатого скота и биологический стабилизатор липид- ной природы. В качестве стабилизатора используют холестерин из мозга крупного рогатого скота в липидорастворителе при следующем соотношении компонентов, мг/л: холестерин 5-25; липидорастворитель 0,5-1; стандартная питательная среда с 2%- ной сывороткой КРС до 1 л. В качестве ли- пидорастворителя используют смесь хлороформа с твином 85 в объемном соотношении 10:1. 4 ил., 2 табл. сл С
Таблица 2
-I Ј rt fnfl Л t
3
-ftil /
Я tfy) з
«r /U- S. CytC (f. ЛЛ ic. .- XCJfCnjefurc с t-. ifC J
,
b1
Simpson R.W | |||
Hauser R.E | |||
Influence of lipids on the Viral Phenotype.- Virology | |||
Двухтактный двигатель внутреннего горения | 1924 |
|
SU1966A1 |
Способ обработки медных солей нафтеновых кислот | 1923 |
|
SU30A1 |
МЕХАНИЧЕСКИЙ КАЛЕНДАРЬ | 1914 |
|
SU684A1 |
Методы /Под ред | |||
Б.Мейхи | |||
М.: Мир, 1988, с | |||
Счетный сектор | 1919 |
|
SU107A1 |
Авторы
Даты
1992-03-30—Публикация
1989-07-12—Подача