Изобретение относится к медицине, в частности к иммунологии, и может быть использовано для характеристики функционального состояния имунной системы.
Цель изобретения.- упрощение и повышение достоверности способа.
Способ осуществляют следующим образом.
10 мл крови, полученной путем пункции вены, смешивают с гепарином (20 ед/мл), для осаждения эритроцитов добавляют 1 мл 10%-ной желатины и помещают в термостат при 37°С на 30 мин.. Плазму, обогащенную лейкоцитами, наслаивают на градиент фи- колла-верографина плотностью 1,077 и центрифугируют 45 мин при 1500 об/мин. После центрифугирования взвесь мононук- леарных клеток, извлеченных из интерфазы, отмывают дважды холодной средой 199. Промытые мононуклеарные клетки затем суспендируют полной питательной средой, состоящей из среды 199 с добавлением 10% сыворотки крупного рогатого скота, 1-тлютамина (300 мг/мл) и гентамицина (0.08 мг/мл).. Клетки разводят до концентрации 8x106 на мл.. ..;
В качестве клеток-мишеней используют аутоэритроциты. Взвесь аутозритроцитов дважды промывают физиологическим раствором, после этого аутоэритроциты обрабатывают папаинрм в течение 10 мин. Промывают один раз физиологическим раствором от папаина. После этого эритроциты разделяют на две пробирки Аи Б. Пробирку А с аутоэритроцитами инкубируют гипериммунной антиэритроцитарной антисывороткой кролика в течение 10 мин. После инкубации эритроциты промывают дважды средой 199 и суспендируют до концентрации 8 х105 на мл, чтобы соотношение эффекторов и клеток-мишеней было 10:1.
Цитотоксический тест определяют в пластиковых 96-луночных планшетах (Ленинград, завод Медполймер). В опытные лунки в триплете добавляют по 0,1 мл ауто- эритроцитов, нагруженных антителами, и
сл
с
sj
0
0,1 мл эффекторных клеток в соответствующих концентрациях, контроль ставят в двух вариантах. Один из них - для спонтанного лизиса, где в лунке 0,1 мл аутоэритроцитов, необработанных антисывороткой, и 0,1 мл зффекторные клетки. Другой для определения общего лизиса клеток-мишеней лунки содержит 0,1 мл аутоэритроцитов и 0,1 мл полной питательной среды. Планшеты инкубируют при 37°С, 18 ч во влажной атмосфере воздуха с 5% СОа. По истечении этого времени содержимое лунок отсасывают в центрифужные пробирки и разводят 2 мл физиологического раствора, а второй контроль разводят 2 мл дистиллированной воды для определения общего лизиса клеток-мишеней. После этого центрифугируют 5 мин при 1500 об/мин. 1 мл надосадка отсасывают во флаконы для определения концентрации калия. Степень лизиса клеток-мишеней .регистрируют по выходу калия из разрушенных аутоэритроцитов. Для определения концентрации калия в надосадке применяют пламенный фотометр ПАЖ-2. Индекс ци- тотоксичности (ИЦ) вычисляют по формуле
х 100%
где А - показания фотометра по содержанию калия в опытной пробе;
В - показания фотометра по содержанию калия в первом контроле (спонтанный лизис клеток-мишеней);
С - показания фотометра по содержанию калия во втором контроле (общий лизис клеток-мишеней).
Пример 1. Больной П., 3.4 года. Диагноз: инфильтративный туберкулез верхней доли правого легкого.
Из вены путем пункции в пробирку с гепарином взяли 10 мл крови, добавили 1 мл 10%-ной желатины. Кровь помещали в термостат при 37°С на 30 мин. Плазму с лейкоцитами отсасывали и помещали-в 2 мл раствора фиколла-верографина плотностью 1,077. Центрифугировали плазму 45 мин при 1500 об/мин, после чего отсасывали интерфазу. Клетки отмывали 2 раза средой 199 и -взвесь клеток помещали в полную питательную среду в концентрации 8x10 на мл.
Аутозритроциты отмывали дважды физиологическим растгаором хлористого натрия и обрабатывали папаином в течение 10 мин. Отмывали один раз от папаина и разделили на две пробирки. Аутоэритроциты первой пробирки инкубировали с гипериммунной антиэритроцитарной антисывороткой кролика. После инкубации аутоэритроциты промывали дважды средой
199 и суспендировали до концентрации 8 хЮ на мл.
В опытные лунки в триплете смешивали 0,1 мл аутозритроцитов, насаженных антителами, и 0,1 мл эффекторных клеток в соответствующих концентрациях, контроль ставили в двух вариантах, один из них для спонтанного лизиса, где 0,1 мл аутоэритроцитов, необработанных антителами, и 0,1 мл
эффекторных клеток, другой для общего лизиса аутоэритроцитов, где в лунке 0,1 мл аутоэритроцитов и 0,1 мл полной питательной среды. Планшет помещали во влажную камеру с 5% СОа на 18 ч при 37°С. Затем из
каждой лунки отсасывали содержимое в центрифужные пробирки и разводили 2 мл физиологического раствора, а второй контроль разводили 2 мл дистиллированной воды. Затем центрифугировали 5 мин при 1500
об/мин. 1 мл надосадка отсасывали во флаконы и определяли содержание калия на пламенном фотометре ПАЖ-2.
Результаты определения; опытная про- ба 69, первая контрольная проба (спонтанный лизис) 57, вторая контрольная проба (общий лизис) 79.
|Л69-57
Индекс цитотоксичности x
х100% 54,5%.
Это свидетельствует о снижении антитело- зависимой клеточной цитотоксичности лимфоцитов данного больного.
Пример 2. Больной А., 43 года. Диагноз: Сепсис.
Результаты определения. Опытная проба 65, первая контрольная проба (спонтанный лизис) 57, вторая контрольная проба
(общий лизис) 79.
Индекс цитотоксичности х
х100% 36,6% .
Полученные данные также указывают о
снижении антителозависимой клеточной цитотоксичности лимфоцитов у больного.
Преимущество предлагаемого способа заключается в том, что он позволяет упростить определение антителозависимой цитотоксичности по сравнению с прототипом, не снижая ее чувствительности и специфичности. При этом отпадает необходимость в обработке клеток мишеней радиактивным изотопом (Сг51) .дорогостоящего оборудования (у-счетчиков) и специального помещения для защиты от у-облучения. Способ может применяться практически в любой клинической лаборатории для оценки функциональной активности иммунной системы.
517251256
Ф ормул а изобретенияклеток-мишеней, о т ли ч а ю щ и и с я тем,
что, с целью упрощения и повышения достоСпособ определения антителозавИси-верности способа, в качестве клеток-мишемой цйтотоксичности лимфоцитов путемней используют аутоэритро.циты, а
инкубирования лимфоцитов с клетками-5 регистрацию разрушения клеток-мишеней
мишенями, нагруженными антителами, сосуществляютфотометрированием по выхопоследующей регистрацией разрушенияду ионов калия.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Способ определения цитотоксического эффекта лимфоцитов крови | 1981 |
|
SU1057017A1 |
Способ прогнозирования течения псориаза | 1985 |
|
SU1263250A1 |
Способ диагностики миастении | 1990 |
|
SU1778704A1 |
Способ определения естественной киллерной активности клеток | 1989 |
|
SU1730592A1 |
СПОСОБ ДИАГНОСТИКИ РАССЕЯННОГО СКЛЕРОЗА | 1991 |
|
RU2007714C1 |
СПОСОБ ДИАГНОСТИКИ МИАСТЕНИИ | 1997 |
|
RU2128340C1 |
Способ диагностики ювенильного ревматоидного артрита | 1989 |
|
SU1725132A1 |
Способ определения индивидуальной чувствительности к иммуномодулятору | 1988 |
|
SU1658094A1 |
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ СПОНТАННОЙ КЛЕТОЧНОЙ ЦИТОТОКСИЧНОСТИ | 2001 |
|
RU2208786C1 |
СРЕДСТВО, ОБЛАДАЮЩЕЕ ДЕЙСТВИЕМ ПРОТИВ ИНФЕКЦИОННЫХ АГЕНТОВ | 1994 |
|
RU2092177C1 |
Изобретение относится к медицине, в частности к иммунологии, и может быть использовано в различных областях клинической и экспериментальной медицины для характеристики функционального состояния иммунной системы. С цельюупрощения способа в качестве клеток-мишеней используют аутоэритроциты, а регистрация их разрушения проводится : по выходу калия из разрушенных клеток-мишеней с помощью фотометрирования.
Grelss Michel Agaub | |||
Standardisation a homologous antybogydenendent cell mediated citotoxicity assay for blallnlcal use - Med | |||
Lab | |||
Science, 1988 | |||
v | |||
Железобетонный фасонный камень для кладки стен | 1920 |
|
SU45A1 |
Авторы
Даты
1992-04-07—Публикация
1989-11-16—Подача