Изобретение относится к медицине, а именно к иммунологии.
Наиболее близким техническим решением, к изобретению является способ ис- пользования 2,5-и опека-донатора аминогрупп для аминирооания стекла.
На обезжиренную стеклянную поверхность чашек типа Орион наносят 2,5%- ный водный раствор 2,5-ионена с ФЗФ (рН 7,4) в количестве 4 мл на одну чашку. Экспозиция с целью электростатического прикрепления поликатиона к стеклу составляет 2 ч при комнатной температуре. После экспозиции поликатион сливают, чашки отмывают ФЗФ без поликатиона и наносят на них 4%-ную взвесь отмытых эритроцитов в ФЗФ. Экспозиция прикрепления эритроцитов составляет 45 мин при комнатной температуре. После экспозиции оритроци- тэрной взаеси чашки тщательно отмывают
для удаления неадгезированных эритроцитов.
Полученный монослой используют согласно поставленной цели. Время получе ния монослоя составляет 3 ч. Прикрепление эритроцитов к стеклу происходит вследствие того, что суммарный заряд стекла является отрицательным, поликатион заряжен положмтельно, поверхность эритроцита суммарно заряжена отрицательно.
Однако в известном способе получения монослоя эритроцитов имеются существенные недостатки. Прикрепление эритроцитов к поверхности стекла недостаточно прочное, поскольку нанесение на поверх- Hocib стекла 2,5-ионсна предполагает образованно двух слоео электростатических связей: первый слой - отрицательно заряженные группировки стекла и положительно заряя елные группы 2,5-ионенэ, второй слол
О
00
,го to
- отрицательно заряженные группировки эритроцитов и положительно заряженные группы 2,5-ионена. Два слоя зарядов не обеспечивают прочность фиксации клетки к стеклу, поэтому для сохранения целостности монослоя требуется особая осторожность при отмывании его от эритроцитов буфером, особая осторожность при наслоении лимфоцитов на монослой и отмывание от непрекрепившихся лимфоцитов. Несмотря на это, добиться образования сплошного монослоя на 100% поверхности стекла все же не удается. Все это создает трудности работы с монослоем, увеличивает материальные и временные затраты на получение монослоя, превышающие обычные для этого метода 3 ч. В итоге трудоемкость получения монослол велика. Кроме того, стоимость препарата достаточно высока - для обработки одной чашки требуется реактив стоимостью около 25 долларов.
Цель изобретения - ускорение и улучшение качества целевого продукта.
Указанная цель достигается использованием в качестве донатора аминогрупп для получения положительно заряженной поверхности стекла у-амииопропилтриэток- сисилана.
Способ осуществляется следующим образом.
На тщательно обезжиренную стеклянную поверхность чашки Петри наносят 5-10 мл 2,5%-ного водного раствора у-амннопро- пилтриэтоксисилана. Чашку помещают в су- ховоздушный шкаф при 100°С на 15 мин. После прогревания раствору-аминопропил- триэтоксисилана сливают и он может Ьыть использован многократно. Чашку промывают тщательно дистиллированной водой и два раза ФЗФ (рН 7,2-7,4). На подготовленную тагам образом стеклянную поверхность наносят 4%-ную взвесь отмытых эритроцитов любого животного или человека. Обьем эритроцитарной взвеси составляет 4-10 мл.
Экспозиция для связывания эритроцитов составляет 5 мин. Неадгезированные эритроциты тщательно отмывают ФЗФ (рН 7,4). Полученный монослой эритроцитов готов к использованию в зависимости от поставленной цели. Время получения монослоя предлагаемым способом составляет 35-40 мин. Качество получаемого монослоя определяется под микроскопом при увеличении объектива в 200 раз (отмечается наличие свободно плавающих в растворе эритроцитов, непрерывность монослоя э полях зрения, Качество монослоя отмечается знаками:
0
5
0
5
0
-неудовлетворительный монослой (занимает 40% площади стекла, в полях зрения плавающие эритроциты).
+монослой занимает 80% площади стекла, в полях зрения плавающие эритроциты.
++монослей занимает 100% площади стекла, в полях зрения плавающие эритроциты отсутствуют,
Т-Аминопропилтриэтоксисилан используется для создания ковэлентно-за- крепленных аминогрупп на силаиольной поверхности (силохром, силикагель, пористое стекло и др.), что позволяет в дальнейшем использовать их как основу для модификации с целью иммобилизации бе/5 ко в.
Таким образом, у-аминопропилтриэ- токсисилан применяется для приготовления сорбентов на основе силохромовых матриц. Использование у-аминопропилтриэтокси- силана с целью получения монослоя клеток неизвестно.
Предложенное вещество обеспечивает модификацию стекла таким образом, что аминогруппы находятся в прочной ковален- тной связи с ним и в несколько раз большем количестве на единицу площади, Этим объясняется поочность прикрепления эритроцитов к стеклу, так как связь представляет собой не два слоя электростатических взаимодействий, а лишь один:
с т о к л о
э
р
и
т
р о
ц и
т
С целью отработки оптимальных режи- мов для получения эритроцитарного монослоя от морской свинки использовали 1; 2,5; 5; 10; 25%-ные водные растворы уами- нопропилтриэтоксисилана с целью амини- рования поверхности стекла. При этом концентрация эритроцитарной взвеси морской свинки оставалась постоянной.
В дальнейшем были использованы различные временные интервалы процесса аминировэния: 2, 5, 15 и 30 мин и темпера- тура 100и22°С.
Для определения длительности инкуби- рооания ОМС на аминированной поверхности стекла задавались временные интервалы: 5,10,20 и 45 мин при сохранении постоянства времени и температуры аминирования,
концентрации эритроцитарной взвеси и температуры инкубирования.
Таким образом, оптимальными режимами получения эритроцитарного монослоя на стеклянной поверхности являются использование 2,5%-ного водного раствора у-ами- нопропилтриэтоксисилана с целью аминирования стекла при 100°С в течение 15 мин с последующей отмыпкой и нанесением 4%-ной эритроцитарной взвеси при 22°С в течение 5 мин. Использование меньших концентраций и температур снижает качество монослоя, а повышение используемых концентраций приводит к непроизвольному расходу реактивов.
Предлагаемый способ получения монослоя эритроцитов может быть использован для выделения спонтанных розеткообразу- ющих лимфоцитов у крыс.
Известные способы выделения спонтанных РОК не позволяют получать их в неизменном виден в достаточном количестве.
Предлагаемый способ получения монослоя эритроцитов позволяет получать достаточное количество немодифицированных РОК крысы.
Пример. Лимфоциты тимуса, селезенки, лимфатических узлов брыжейки тонкой кишки, пеоиферической крови в концентрациях соответственно 5,3,3,2 10бкл/мл в объемах по 10 мл наслаивают на монослой эритроцитов, полученный предлагаемым способом. Инкубируют чашки Петри 30 мин при комнатной температуре, затем 1 ч при 4°С в присутствии 20%-ной декомплементи- рованной сыворотки морской свинки. Лим- фоцитарную взвесь сливают, чашки тщательно отмывают средой 199 от непрек- репившихся лимфоцитов к монослою, монослой лизируют 2 мл дистиллированной воды в течение 15 с, разводят избытком среды,
отмывают один раз этой же средой, ресус- пендируют клетки в объеме 1 мл этой же среды, подсчитывают снятые с монослоя лимфоциты в камере Горяевг. Подсчет ведут
в 100 больших квадратах камеры и производят перерасчет на 1 мкл.
Повторное розеткообразование с лимфоцитами, выделенными с монослоя эритроцитов, составило 95% РОК.
Таким образом, предлагаемый способ получения монослоя эритроцитов отличается от известного сокращением в 4,5 раза времени получения монослоя, снижением трудоемкости процесса. Способ позволяет
получать высокое качество монослоя эритроцитов, снимать с монослоя достаточное для использования число клеток лимфоид- ных органов, используя феномен розеткооб- разованич. Стоимость предлагаемого
реактива в 100 раз меньше, чем у известных способов (см. таблицу).
Анализ жизнеспособности клеток селезенки, снятых с эритроцитарного монослоя, определяемой с помощью 0,5%-ного раствора трипанового голубого, выявил 99% жизнеспособных лимфоцитов.
Формула изобретения Способ получения монослоя эритроцитов для иммунологических исследований путем покрытия поверхности стекла водным раствором аминирующего агента, его экспозиции и последующего нанесения на него взвеси эритроцитов, инкубации и отмывки, отличающийся тем, что, с целью ускорения и улучшения качества целевого продукта, в качестве аминирующего агента используют 2,5%-ный раствор У-эминопро- пилтриэтоксисилана, экспозицию осуществляют при температуре 100°С в течение 15 мин, а инкубацию эритроцитов - в течение 5-10 мин
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Способ получения монослоя эритроцитов для проведения иммунологических реакций | 1983 |
|
SU1182397A1 |
СПОСОБ ВЫЯВЛЕНИЯ ОСТРОГО РАДИОАКТИВНОГО ЗАРАЖЕНИЯ ОРГАНИЗМА | 1996 |
|
RU2104544C1 |
Способ определения активности гормонов тимуса | 1987 |
|
SU1622820A1 |
Способ определения Т @ - лимфоцитов человека | 1988 |
|
SU1561041A1 |
ПРОДУКТ, ОБЛАДАЮЩИЙ ИММУНОКОРРИГИРУЮЩИМИ СВОЙСТВАМИ | 1995 |
|
RU2099967C1 |
СПОСОБ ОДНОВРЕМЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ КЛЕТОК С РЕЦЕПТОРАМИ К БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫМ ВЕЩЕСТВАМ И ИХ ПОПУЛЯЦИОННОЙ ПРИНАДЛЕЖНОСТИ | 1994 |
|
RU2081418C1 |
СПОСОБ ДИАГНОСТИКИ МИАСТЕНИИ | 1998 |
|
RU2138811C1 |
ДИАГНОСТИКУМ ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ПАПРИНА И СПОСОБ ЕГО ПРИГОТОВЛЕНИЯ | 1991 |
|
RU2008020C1 |
СПОСОБ ДИАГНОСТИКИ МИАСТЕНИИ | 1997 |
|
RU2128340C1 |
ЭРИТРОЦИТАРНЫЙ ДИАГНОСТИКУМ И СПОСОБ ДИАГНОСТИКИ ХРОНИЧЕСКОЙ ИНТОКСИКАЦИИ НЕОРГАНИЧЕСКИМИ СОЕДИНЕНИЯМИ ВАНАДИЯ | 2002 |
|
RU2235326C2 |
Использование: изобретение относится к медицине, а именно к иммунологии, и может быть использовано в клинической диагностике. Целью изобретения является ускорение и улучшение качества целевого продукта. Сущность изобретения заключается о обработке поверхности стекла годным раствором аминирующего агента, его эксплуатации и последующим нанесении на него взвеси эритроцитов, последующей инкубации и отмывки, причем в качестве амп- пирующего агента используют 2,5%-ныи растоор у-аминопропилтриэтоксисилзна, экспозицию осуществляют при температуре 100°С в течение 15 мин, а инкубацию .эритроцитов в течение 5-10 мин. Положитепь- ный эффект заключается в ускорении процесса в 4,5 раза с сохранением 09% жизнеспособных клеток. i I- т
Иммунология, 1980, № 5, с | |||
Капельная масленка с постоянным уровнем масла | 0 |
|
SU80A1 |
Авторы
Даты
1992-08-23—Публикация
1990-06-11—Подача