СЛ
С
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Способ получения амида | 1984 |
|
SU1530101A3 |
Способ получения амидов | 1988 |
|
SU1838416A3 |
Способ получения ацетонциангидрина | 1970 |
|
SU486506A3 |
Способ получения диметиламина | 1984 |
|
SU1416054A3 |
Способ получения частично гидролизованного полиакриламида | 1984 |
|
SU1271373A3 |
Способ культивирования бактерий | 1989 |
|
SU1838408A3 |
Способ получения азотсодержащего полисахарида, промотирующего чувствительность к лекарствам у бактерий, устойчивых к антибиотикам | 1978 |
|
SU793408A3 |
Устройство для перемешивания частиц гидрогеля водорастворимого полимера | 1984 |
|
SU1729279A3 |
Способ получения аденозин-5 -трифосфата | 1980 |
|
SU1144619A3 |
Способ получения антибиотика 2188 и штамм плесневого гриба РеNIсILLIUм RUGULоSUм FERM ВР-142,используемый для получения антибиотика 2188 | 1983 |
|
SU1419521A3 |
Изобретение относится к способам гидратации нитрильного соединения под действием нитрилазы, вырабатываемой микроорганизмами для превращения нитрильного соединения в соответствующее амидное соединение Целью изобретения является повышение выхода целевого продукта Для этого нитрильное соединение подвергают воздействию штаммов микроорганизмов Corynebacterlum sp PERM ВР- 959, или Corynebacterium sp PERM BP-960, или Nocardla sp. PERM BP-961, или Mlcrococcus sp CRS-497 74, или Brevibactenum sp CBS-717,73, Bacillus sp CBS-494 74, или Bacterlcllum sp CBS- 49674 7табл
Изобретение относится к способу гидратации нитрильного соединения под действием нитрилазы, вырабатываемой микроорганизмами для превращения нитрильного соединений в соответствующее амидное соединение.
Цель изобретения - повышение выхода целевого продукта.
Пример 1. Для реализации способа используют следующие микроорганизмы Corynebacterium sp PERM BP-959, Corynebacterium sp. PERM 960, Nacardia sp. PERM BP-961. Micrococcus sp CBS-497.74. Bacteridium sp. CBS 49674, Brevibactenum sp. CBS 717.73, Bacillus sp CBS 494 74
Смесь (рН 7,2), включающую глюкозу 1%, пептон 0,5%. экстракт дрожжей 0,3%. солодовый экстракт 0,3% и сульфат железа
7 гидрат 0 05%, помещают в 500 мл колбу Эрленмейера После стерилизации в смесь вводят штамм N-774 (Corynebacterium) и культивируют его в течение 2 дней при температуре 30°С Затем культивируемые клетки собирают центрифугированием, промывают О 05М фосфатнымiбуфером (рН 7,7) и получают промытые клетки. Эти клетки диспергируют в 0.05М фосфатном буфере и получают суспензию клеток с концентрацией 17,3 г сухих клеток/литр. Суспензию клеток оставляют при температуре 0°С в темном месте на 3-4 дня.
Клетки стоящие в темноте, облучают при температуре 0°С в течение 1 ч светом с энергией 57 мкэ/г клеток-сек. используя лампу дневного света. 100 мл суспензии клеток, стоящих в темноте (или на свету).
XI
СЛ
XI
4 х| GO
СО
трижды в темноте пропускают через французский пресс при давлении 1300 кгУсм- длр разрушения клеток, получают 90 мл раствора, содержащего разрушенные клетки, который далее называют раствором разрушенных клеток. 50 мл раствора разрушенных клеток центрифугируют со скоростью 15000 об/мин, используя высокоскоростную центрифугу, и получают 45 мл жидкого экстракта, из которого выделяют остаток клеток. В соответствии с обычным способом из жидкого экстракта удаляют фракции нуклеиновой кислоты и сульфата аммония и получают 15 мл сырого раствора фермента, который удаляют с помощью диализа и принадлежащий фракции, полученной 50-60%- ным насыщением сульфата аммония. Все вышеописанные операции быстро осуществляют в комнате с низкой температурой 4°С, при интенсивности светового облучения 0,02 мкВ/м2 с или меньше, за исключением особо оговоренных случаев, Затем 0,2 мл суспензии клеток, или раствора разрушенных клеток, или жидкого экстракта, или сырого раствора фермента и 4,8 мл 0,05М фосфатного буфера (рН 7,7) смешивают и затем 5 мл 0.05М фосфатного буфера (рН 7,7), содержащего 5 мас.% акрилонитрила, добавляют в эту смесь. Смесь вводят в реакцию при температуре 0°С. После завершения реакции полученный акриламид подвергают количественному анализу с помощью газовой хроматографии для определения скорости реакции. Для осуществления реакции используют светонепроницаемые реакционные трубы с черными полосками. Скорость образования акриламида (далее АА) представлена через количество АА, полученное за 10 мин.
Сравнительные данные по скорости реакции для каждого из описанных источников нитрилазы представлены в табл. 1.
Пример 2. Клетки, стоящие в темноте, раствор клеток, стоящих в темноте, жидкий экстракт и сырой раствор фермента, приго- тобленные из указанных клеток, получают так по примеру 1. Каждый препарат подвергают облучению светом в течение 10 мин, используя лампу дневного света, описанную в примере 1, и определяют количество АА, полученное за 10 мин.
В табл. 2 приведены результаты сравнения количества АА, полученного за 10 мин с количеством АА, полученным в случае отсутствия облучений указанных веществ.
Пример 3. Каждый из препаратов: облученные светом клетки, жидкий экстракт и сырой раствор фермента, полученные в примере 2, выдерживают в темном месте
при температуре 0°С и затем определяют отношение остаточной активности,
Результаты представлены в табл. 3, где количество АА, полученное за 10 мин при
немедленном использовании после облучения, обозначают как 100%, а отношение остаточной активности - сравнительной величиной.
Пример 4. 5 мл каждого из жидких
экстрактов из клеток, стоящих в темноте, полученных по примеру 1, помещают в 50 мл стальные сосуды и подвергают облучению светом с длиной волны 300-400 нм в течение 3 мин, используя лампу ультрафиолетового света, причем световую энергию регулируют с использованием фильтров с различной оптической площадью, помещенных в верхней части сосудов. В результате получают несколько образцов жидкого экстракта с различным количеством световой энергии и определяют скорость реакции.
Влияние общего количества световой энергии на скорость реакции выражают как отношение к 1, что представляет собой относительную величину, выражающую скорость реакции в случае, когда использованный жидкий экстракт не получает светового облучения.
В табл. 4 показана зависимость скорости реакции от общего количества световой энергии.
Пример 5. 5 мл каждого из жидких
экстрактов клеток, стоящих в темноте, полученных по примеру 1, помещают в стальные сосуды емкостью по 50 мл и подвергают облучению светом с использованием лампы дневного света, примененной э примере 1,
причем часть света с длиной волны 430 нм отводят при помощи цветных стеклянных фильтров, каждый реактор имеет одинаковое оптическое окно, расположенное в верхней части реактора, а время облучения
разное для каждого образца. Скорость реакции измеряют, как в примере 1 для каждого образца, получившего различное количество световой энергии.
Влияние общего количества световой
энергии на скорость реакции выражают че- рзз отношение к 1, за которую принимают относительную величину, выражающую скорость реакции в случае, когда используют жидкий экстракт, не подвергавшийся облучению, что показано в табл. 5.
Пример 6. Жидкие экстракты, приготовленные по примеру 1 из клеток, стоящих в темноте, разных классов бактерий, а именно Bacillus (CBS 494), Bacteridium (CBS-496), Micrococcus (CBS-497), Brevibacterlum (CBS-717) и Nocardla (N-775), облучают светом, как в примере 1. Скорости реакции измеряют как в случае облученных, так и в случае не облученных экстрактов.
Скорость реакции для облученных экстрактов выражают как отношение к 1, которая выражала скорость реакции для необлученных экстрактов, что представлено в табл. 6.
Пример 7. Используют жидкий экстракт из штамма N-774 клеток, стоящих в темноте, полученных как в примере 1, которые облучают светом как в примере 2, реакционные растворы готовят по рецептуре, представленной в табл. 7. Реакцию проводят при 0°С в темном месте. Скорость реакции для каждого вещества, приведенного в табл. 7, определяют, измерив количество израсходованного исходного нитрила или соответствующее количество полученного амида, используя газовую хроматографию или эффективную жидкостную хроматографию.
Вид клеток
Вещество, используемое при определении активности
Клетки х
Раствор разрушенных клеток
Жидкий экстракт
Сырой раствор фермента
Клетки х
Раствор разрушенных клеток
Жидкий экстракт
Сравнительный пример.
Сравнительный пример.
Отношение скорости реакции облученного экстракта к скорости реакции необлученного экстракта приведено в табл. 7. Формула изобретения
Способ получения амидного соединения микробиологической трансформацией нитрильного соединения содержимым разрушенных клеток микроорганизма, или внутриклеточного вещества, отличающ и и с я тем, что, с целью повышения выхода целевого продукта, в качестве мик- роорганизма используют штамм Corynebacterlum sp PERM BP-959, или Corynebacterium sp. PERM BP-960, или
Nacardia sp PERM BP-961, или Mlcrocdccus sp. CBS-497.74, или Brevlbacterlum sp CBS- 717.73. Bacillus sp CBS 494.74, или Bacteridlum sp CBS-496.74, которые во время трансформации и/или до нее обрабатывают светом с энергией по крайней мере 10 мкэ/г микробных клеток.
Таблица 1
Количество АА, полученное за 10 мин, %
0,017 0,017 0,011 0,015 0.863 0,871 0.687
Таблица2
ТаблицаЗ
Таблица 4
Таблицзб
Таблица 7
ДВИГАТЕЛЬ ВНУТРЕННЕГО ГОРЕНИЯ | 1929 |
|
SU17918A1 |
Машина для формования фрезерного торфа | 1933 |
|
SU38118A1 |
Способ гальванического снятия позолоты с серебряных изделий без заметного изменения их формы | 1923 |
|
SU12A1 |
Авторы
Даты
1992-08-23—Публикация
1986-01-10—Подача