Изобретение относится к биотехнологии и касается нового штамма бактерий Escherichia coli, который может быть использован для получения эндонуклеазы рестрикции (рестриктазы), узнающей и расщепляющей последовательность нуклеотидов 5'-GPuGCPy! C-3' в составе двухцепочечной ДНК. Рестриктаза Eco75kI, продуцируемая предлагаемым штаммом, является изошизомером известной рестриктазы Banll (1) и может найти применение в геноинженерных исследованиях в экспериментах по конструированию рекомбинантных ДНК in vitro, при изучении первичной структуры ДНК и т. д.
В статье Sugisaki H. с соавторами [1] описана рестриктаза Banll, полученная из штамма Bacillus anenrinolyticus, которая узнает и расщепляет участок ДНК 5'-GPuGCPy!C-3'. Также известны изошизомеры рестриктазы Banll, например, HgiJll [2] Eco261 [3] Bvul [4] EcoT381 [5] выделенные из различных штаммов, в том числе и из Escherichia coli. Наиболее близким к предлагаемому штамму является штамм Escherichia coli RFL26, продуцирующий рестриктазу Eco261. Выход очищенного фермента Eco261 составляет 200 ед/г сырой биомассы.
Задачей, на решение которой направлено предлагаемое изобретение, является получение штамма, продуцирующего рестриктазу заданной специфичности с более высоким выходом, быстро растущего на обычных питательных средах.
Предлагаемый штамм Escherichia coli 75к был получен в результате целенаправленного поиска штаммов продуцентов рестриктаз среди клинических изолятов (г. Киев) при помощи разработанного нами метода тестирования активности в экстрактах, полученных из отдельно взятых колоний, выросших на агаризованной среде, с последующим электрофорезом продуктов расщепления ДНК в агарозном геле. Содержание рестриктазы Eco75kI в предлагаемом штамме 200000 ед/г сырой биомассы клеток.
Штамм депонирован во Всесоюзной коллекции микроорганизмов при ИБФМ РАН и хранится в ней под номером ВКМ В-2007Д.
Штамм Escherichia coli ВКМ В-2007Д имеет следующие характеристики.
Культурально-морфологические признаки.
Клетки прямые, палочковидные, размером 0,7-0,8 мкм в поперечнике и 2-3 мкм, иногда 5 мкм в длину, подвижные, грамотрицательные, с латеральными жгутиками. Располагаются одиночно, парами или цепочками, неспороносные.
Штамм хорошо растет на обычных питательных средах (МПА, МПБ, LB-бульон и LB-агар). При росте на мясопептонном агаре или LB-агаре колонии гладкие, круглые, прижатые, блестящие, мутные. При росте в жидких средах: в МПБ-бульоне или LB-бульоне образуют ровную интенсивную муть.
Физиолого-биохимические признаки.
Клетки растут в пределах от 4 до 50оС, оптимальная температура роста 37оС, оптимум pH 6,8-7,4.
В качестве источника углерода используют многие углеводы, спирты, органические кислоты, в частности альфа-глюкозу, альфа-фруктозу, галактозу, арабинозу, лактозу, трегалактозу.
В качестве источника азота используют как минеральные соли в аммонийной и нитратной форме, так и в органической форме в виде пептона, аминокислот.
Нитраты восстанавливают до нитритов.
Желатину не разжижают.
Индол не образуют.
Условия хранения штамма.
Штамм бактерий Escherichia coli ВКМ В-2007Д хранят на чашках и косяках. Пересевы на свежие среды один раз в месяц. Может храниться не менее года в 15%-ном глицерине при -20-70оС, в лиофильно-высушенном состоянии с сахарожелатиновым агаром или в полужидкой агаризованной среде LB под вазелиновым маслом.
П р и м е р 1. Тестирование ферментов рестрикции. Для поиска рестриктаз использовали экспресс-метод, представляющий собой модификацию метода Белавина и соавт. [6] для этого одну-две большие колонии (около 5х106-1х107 клеток) суспендируют в 20 мкл буфера А (20 мМ трис-HCl, pH 7,6, 12,5 мМ ЭДТА, 100 мМ NaCl, 10 мМ 2-меркаптоэтанола), содержащего 10 мг/мл лизоцима, и инкубируют при комнатной температуре (18оС). Через 30 мин добавляют равный объем буфера В (20 мМ трис-HCl, pH 7,6, 2% тритон Х-100, 10 мМ 2-меркаптоэтанола) и инкубируют еще 60 мин при 4оС. Клеточную суспензию (1 и 4 мкл) смешивают с 2 мкг ДНК фага ⊘ 80 vir в 40 мкл буфера C (10 мМ трис-HCl, pH 7,6, 10 мМ MgCl2, 10 мМ 2-меркаптоэтанола, 50 мМ NaCl). Гидролиз проводят при 37оС в течение 10 мин. Кроме того, 4 мкл клеточной суспензии дополнительно инкубируют в 40 мкл буфера С без субстрата с целью проверки возможного наличия в растворе экстрахромосомной ДНК. Реакцию останавливают экстракцией равным объемом водонасыщенного фенола. Для электрофоретического анализа используют 20 мкл гидролизата.
П р и м е р 2. Получение и очистка рестриктазы.
Культуру клеток E. coli 75k выращивают в 1 л LB-бульона (5г дрожжевого экстракта, 10 г NaCl, 10 г бактотриптон на 1 л воды) при 37оС до титра 4х109 кл/мл. Клетки осаждают центрифугированием (6000 об/мин 15 мин). 1 г сырой биомассы суспендируют в 5 мл буфера, содержащего 10 мМ трис-HCl, pH 7,5, 150 мМ NaCl, 10 мМ ЭДТА, 10 мМ 2- меркаптоэтанола. Клетки разрушают ультразвуком, экстракт получают центрифугированием при 2оС (48000g).
Для определения активности рестриктазы Eco75kI готовят серийные разведения супеpнатанта: 1/2, 1/4, 1/8, 1/16, 1/32, 1/64, 1/128 в буфере (10 мМ трис-HCl, pH 7,5, 50 мМ NaCl, 1,0 мМ ЭДТА, 7 мМ 2-меркаптоэтанол). В инкубационную смесь (9 мкл), содержащую 10 мМ трис-HCl, pH 8,0, 10 мМ MgCl 2, 1 мМ ЭДТА, 1,0 мМ ДТТ, 1 мкг ДНК фага лямбда, добавляют 1 мкл соответствующего разведения экстракта и инкубируют при 37оС в течение 1 ч. Результаты гидролиза проверяют с помощью электрофореза в 0,8%-ном агарозном геле.
За единицу активности берут количество фермента, необходимое для полного специфического расщепления 1 мкг ДНК фага лямбда в течение 1 ч.
Уровень активности рестриктазы Eco75kI, определенный в бесклеточном экстракте штамма E. coli 75 k, около 200000 ед. в пересчете на 1 г биомассы.
Рестриктаза Eco75kI может быть очищена фракционированием клеточного экстракта на колонке с DEAE-целлюлозой (DE-52 Whatman) с последующей хроматографией на фосфоцеллюлозе P-11 (Whatman), ДНК-агарозе [7] и гидроксилапатите. Препарат фермента окончательно концентрируют при диализе против бефера 50 мМ NaCl, 10 мМ трис-HCl, pH 7,5; 1 мМ ЭДТА; 7 мМ 2-меркаптоэтанол; 50% глицерин. Выход очищенного фермента составляет 4000 ед/г биомассы клеток.
Очищенный фермент стабилен при -20оС в течение полугода. При 0оС фермент сохраняет 95% своей активности в течение 2 недель, при 25оС сохраняет 90% активности в течение 4 дн и при 65оС теряет 95% активности в течение 15 мин. Рестриктаза пригодна для анализа структуры ДНК и для молекулярного клонирования.
П р и м е р 3. Определение последовательности нуклеотидов, узнаваемой рестриктазой Eco75kI, и места гидролиза ДНК.
Для определения последовательности узнавания рестриктазы проводят сравнение величин длин фрагментов, по- лученных экспериментально при гидролизе ДНК фага лямбда рестриктазой, с величинами длин фрагментов, рассчитанных на ЭМВ по соответствующим программам для различных последовательностей нуклеотидов. Была обнаружена только одна последовательность -5'-GPuGCPyC-3', для которой рассчитанные величины фрагментов совпадали с экспериментальными и были локализованы в следующих районах: 586, 10091, 19766, 21575, 24777, 25882, 39458.
Для подтверждения полученных данных проводят картирование участков узнавания рестриктазной Eco75kI на ДНК pBR322, используя совместный гидролиз с рестриктазами BamHl и SalI. Показано, что рестриктаза Ecо75kI гидролизует эту ДНК в позициях 476 и 490.
Для определения места гидролиза ДНК рестриктазой Ecо75kI была использована ДНК M13tg 130. После отжига с универсальным синтетическим праймером и реакции полимеризации матрицу обрабатывают эндонуклеазой рестрикции Eco75kI. Часть пробы вторично подвергают полимеризации и оба полученных препарата исследуют в условиях, предложенных Сэнгером, с использованием 8%-ного денатурирующего полиакриламидного геля, что позволило определить место гидролиза.
Полученные опыты позволяют сделать однозначный вывод, что рестриктаза Eco75kI является истинным изошизомером рестриктазы Banll и узнает и расщепляет последовательность нуклеотидов ДНК:
5'-GPuGCPy!C-3'
Кроме того, полученная рестриктаза Eco75kI характеризуется следующими оптимальными условиями реакции: pH для действия рестриктазы 7,5; температура действия 37оС.
Таким образом, полученный штамм E. coli ВКМ В-2007Д, как продуцент специфической эндонуклеазы Eco75kI, обеспечивает высокий уровень содержания фермента не менее 200000 ед/г сырого вещества биомассы клеток, что достаточно для получения рестриктазы в препаративных количествах. Выход очищенного фермента составляет 4000 ед/г биомассы клеток, что в 20 раз превышает выход известной рестриктазы Eco261, выделенной из штамма E. coli RFL26, являющегося прототипом предлагаемого штамма.
Использование: биотехнология - для получения эндонуклеазы рестрикции Есо 75 кI, узнающей и расщепляющей последовательность нуклеотидов 5′-GPuGCPy!C-3′. Рестриктаза, продуцируемая предлагаемым штаммом, является изошизомером рестриктазы BanII и может найти применение в геноинженерных исследованиях. Сущность изобретения: предлагаемый штамм Escherichia coli ВКМ В-2007Д выделен из клинических изолятов (г.Киев) и обеспечивает высокий уровень содержания фермента не менее 200000 ед/г сырого вещества биомассы клеток. Выход очищенного фермента составляет 4000 ед/г биомассы клеток.
Штамм бактерий Escherichia coli ВКМ В-2007 Д-продуцент эндонуклеазы рестрикции Eco 75 kI.
Печь для непрерывного получения сернистого натрия | 1921 |
|
SU1A1 |
Sugisaki H., et al | |||
Nucl | |||
Acids | |||
Res., 1982, 10, 5747-5752 | |||
Аппарат для очищения воды при помощи химических реактивов | 1917 |
|
SU2A1 |
Roberts R.I | |||
et al., Nucl | |||
Acids | |||
Res., 1983, 11, 135-167 | |||
Переносная печь для варки пищи и отопления в окопах, походных помещениях и т.п. | 1921 |
|
SU3A1 |
Янулайтис А.А | |||
и др | |||
Изучение специфичности новых рестриктаз и метилаз | |||
Очаг для массовой варки пищи, выпечки хлеба и кипячения воды | 1921 |
|
SU4A1 |
Молекулярная биология, 1984, т.18, N 1, с.115-129 | |||
Очаг для массовой варки пищи, выпечки хлеба и кипячения воды | 1921 |
|
SU4A1 |
Beaty J.S., Gene, 1982, 18, с.61-67 | |||
Кипятильник для воды | 1921 |
|
SU5A1 |
Mise K., et al | |||
Gene | |||
Пневматический водоподъемный аппарат-двигатель | 1917 |
|
SU1986A1 |
Приспособление для точного наложения листов бумаги при снятии оттисков | 1922 |
|
SU6A1 |
Белавин П.А | |||
и Дедков В.С | |||
Прикладная биохимия и микробиология, 1988, с.24, 6, 129-132 | |||
Способ восстановления хромовой кислоты, в частности для получения хромовых квасцов | 1921 |
|
SU7A1 |
Shaller H., Wusslein C, Bonhoeffer F.J | |||
et all., Eur | |||
J | |||
Biochem., 1972, 26, с.474-481. |
Авторы
Даты
1996-01-27—Публикация
1993-07-15—Подача