Изобретение относится к области микробиологической промышленности и заключается в получении нового штамма бактерий. Оксиэтилированные спирты (ОЭС) один из наиболее распространенных классов неионогенных поверхностно-активных веществ, широко применяемый в промышленности и в быту. ОЭС представляют собой эфиры жирных спиртов и полиэтиленгликолей.
Известны аналогичные штаммы микроорганизмов, способные их утилизировать. Например, штамм Pseudomonas mendocina 2S (1) утилизирует смесь трех поверхностно-активных веществ и среди них ОЭС синтанол ДС-10 в концентрации 500 мг/л на 98% за 48 ч. Штамм Pseudomonas fluorescens 5/7 утилизируют за 24 ч синтанол ДС-10 в концентрации 0,5 г/л на 60% В обоих случаях используемый колориметрический метод определения свидетельствует о разрушении оксиэтильной части молекулы; данные о разрушении углеводородной части молекулы и о наличии или отсутствии свободных полиэтиленгликолей (ПЭГ) основного метаболита при разрушении ОЭС отсутствуют.
Наиболее близким к заявленному штамму является штамм Pseudomonas mendocina (2), утилизирующий ОЭС синтанол АЛМ 10 в концентрации 3000 мг/л на 70% за 30 ч. При этом разрушается лишь углеводородная часть молекулы синтанола. Количество свободных полиэтиленгликолей, образовавшихся вследствие неполной деструкции оксиэтильной части молекулы синтанола, достигает концентрации 1200 мг/л.
Целью изобретения является выделение штамма с высокой деструкционной активностью по отношению к ОЭС, разрушающего как углеводородную, так и оксиэтильные части молекулы.
Предлагаемый штамм Preudomonas species ОС-22 депонирован в Центральном музее промышленных микроорганизмов под номером ВКПМ В-6563 и характеризуется следующими свойствами.
Морфологические признаки. В мазках мелкие грамотрицательные палочки, расположенные поодиночке или короткими цепочками. Спор и капсул не образуют, подвижные.
Культуральные свойства. Прототроф, аэроб. Растет на простых питательных средах.
Рост на стандартных твердых средах. На среде общего назначения для всех сапрофитных бактерий мясо-пептонном агаре (МПА) наблюдался хороший рост, в первые сутки вырастали колонии диаметром 1-1,5 мм, на вторые сутки диаметр колоний увеличивался до 2-3 мм. На среде Эшби, используемой для выявления азотфиксаторов, и среде Чапека для выявления микроорганизмов, использующих минеральные формы азота, рост отсутствовал.
Среды имеют следующий состав (г/л дистиллированной воды):
МПА
панкреатический гидролизат кильки 25,0; NaCl 5,0; K2HPO4 1,0; крахмал 0,5; агар 20,0;
среда Эшби
сахароза 20,0; K2HPO4 0,2; MgSO4 0,2; NaCl 0,2; K2SO4 0,1; CaCO3 5,0; агар 20,0;
среда Чапека
сахароза 20,0; NaNO3 2,0; KH2PO4 1,0; MgSO4 0,5; KCl 0,5; CaCO3 3,0; агар 20,0.
Рост штамма наблюдали при температуре 20 35o. Оптимум роста - 28-30oC, при 42oC рост отсутствует. Штамм растет в широком диапазоне pH: min 5, max 9,5. Оптимальный рост при pH 7,0-7,6. На мясо-пептонном агаре после 48 ч роста образует мелкие колонии округлой формы, блестящие, выпуклые, бесцветные, консистенция маслообразная, край ровный; диаметр колоний 2-3 мм. Рост на косом агаре хороший по штриху; при посеве уколом в столбик - интенсивный на поверхности. Рост на мясо-пептонном бульоне обильный с пленкой на поверхности.
Физиолого-биохимические свойства. Оксидазоположителен. Продуцирует каталазу, аргинингидролазу. Не образует уреазу, лецитиназу, желатиназу, орнитиндекарбоксилазу, фенилаланиндезаминазу, нитратредуктазу, индол, сероводород. Растет на средах с глюкозой, арабинозой, ксилозой. На OF-среде с глюкозой и ксилозой наблюдается кислотообразование; с рамнозой, арабинозой, мальтозой и сахарозой кислотообразования не наблюдается. Утилизирует цитрат на среде Симонса. Не растет в присутствии 6,5% NaCl, отсутствует рост на безазотистой среде Эшби и среде Чапека. Не гидролизует крахмал. Не образует пиоцианин и флуоресцирующие пигменты на средах Кинг А и Кинг В. Растет на среде Плоскирева. Не вызывает гемолиз эритроцитов.
Отношение штамма к источникам азота: использует для питания органическую и аммонийную формы азота, не использует нитратную и нитритную формы и газообразный азот.
Чувствительность к антибактериальным препаратам. Штамм устойчив к пенициллину, оксациллину, ампициллину, карбенициллину, эритромицину, олеандомицину, линкомицину, ристомицину, фузидину, левомицетину, полимиксину; штамм чувствителен к тетрациклину, стрептомицину, мономицину, гентамицину, неомицину, канамицину, доксициклину.
Условия хранения. Штамм хранят на столиках с полужидким 0,06% агаром под слоем стерильного вазелинового масла при 4oC.
Патогенные свойства. При внутрибрюшинном заражении беспородных белых мышей (10 животных) взвесью суточной культуры штамма в количестве 1 млрд. микробных тел в 0,5 мл физиологического раствора на животное заболевание не обнаружено. Срок наблюдения 10 дней. Это дало основание считать культуру штамма непатогенной.
На основании комплекса морфолого-культуральных и физиолого-биохимических свойств штамм был идентифицирован как Pseudomonas species.
Пример 1. Получение штамма.
Микроорганизм-деструктор ОЭС выделен методом накопительной культуры из содержащих ОЭС сточных вод металлообрабатывающего предприятия. Материал в количестве 20 мл вносят в колбу Эрленмейера емкостью 500 мл, содержащую 100 мл синтетической минеральной среды следующего состава (г/л): Na2HPO4-6,0; KH2PO4-3,0; NaCl-0,5; NH4Cl-1,0; pH 7,2. В среду добавляют синтанол ДС-10 в концентрации 0,5 г/л. Концентрацию синтанола в среде в процессе культивирования поддерживают на уровне 0,5 г/л отливно-доливным методом. Культивирование проводят на качалке при 160 об/мин и t 28oC. Через 5, 10 и 15 сут. из накопительной культуры отбирают пробы, которые высевают на агаризованную синтетическую среду того же состава. Одновременно пробы анализируют на присутствие синтанола и выделяют чистые культуры бактерий. Деструктивную активность выделенных культур опять проверяют в жидкой синтетической среде. Количественное определение ОЭС проводят колориметрическим методом с фосфорно-молибденовой кислотой.
Культуру отсевают на столбик с полужидким агаром и хранят под слоем вазелинового масла при 4oC. Идентификацию проводят общепринятым способом.
Пример 2. Деструкция оксиэтилированных спиртов при периодическом культивировании.
Культивирование проводят в жидкой минеральной среде вышеуказанного состава. ОЭС добавляют в концентрации 500-1000 мг/л, исходная концентрация клеток составляет 5•108 кл/мл. Инкубируют при 28oC на качалке при 160 об/мин. Контроль осуществляют общепринятым колориметрическим методом с фосфорномолибденовой кислотой.
Результаты представлены в таблице.
Пример 3. Деструкция синтанола ДС-10 штаммом Pseudomonas species ОС-22 при непрерывном культивировании.
Непрерывное культивирование в лабораторных условиях осуществляют в модельном растворе, представляющем собой жидкую минеральную среду с добавлением синтанола в концентрации 500 мг/л. Процесс проводят в биореакторе в условиях проточного культивирования. Аэрацию осуществляют компрессором при подаче воздуха 1 л на литр среды за минуту, t составляет 25oC. Модельный раствор подают в биореактор со скоростью 0,04 ч-1. Для заселения биореактора культурой штамма-деструктора последнюю выращивают на мясо-пептонном агаре и полученную биомассу иммобилизуют на носителе в установке. Очищенная вода содержит синтанол в концентрации 5-10 мг/л. Эффективность очистки составляет, таким образом, 98-99% (по данным калориметрического анализа).
Пример 4. Анализ разрушения структурных компонентов молекулы ОЭС штаммом ОС-22.
В качестве тест-субстрата используют синтанол ДС-10. Культивирование проводят в жидкой минеральной среде с добавлением синтанола в концентрации 500 мг/л. Периодическое культивирование проводят в условиях, описанных в примере 2, непрерывное культивирование в биореакторе, как описано в примере 3.
Разрушение вещества исследуют методом ИК-спектроскопии. По данным этого метода при периодическом культивировании разрушение вещества составляет 92% при непрерывном 98% причем деструкции подвергаются как углеводородная, так и оксиэтильная часть молекулы синтанола. Не происходит накопление свободных полиэтиленгликолей, основного метаболита ОЭС, т.к. они тоже утилизируются предлагаемым штаммом.
Таким образом, предлагаемый штамм разрушает оксиэтилированные спирты в концентрации 500-1000 мг/л на 76-98% разрушая при этом как углеводородную, так и полиэтиленгликолевую части молекулы.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
ШТАММ БАКТЕРИЙ PSEUDOMONAS PUTIDA - ДЕСТРУКТОР НЕИОНОГЕННЫХ ПОВЕРХНОСТНО-АКТИВНЫХ ВЕЩЕСТВ | 1993 |
|
RU2069691C1 |
ШТАММ БАКТЕРИЙ ALCALIGENES SPECIES - ПРОДУЦЕНТ НИТРИЛАЗЫ | 1995 |
|
RU2081169C1 |
ШТАММ БАКТЕРИЙ CORYNEBACTERUM SPECIES-ДЕСТРУКТОР АРОМАТИЧЕСКИХ СОЕДИНЕНИЙ | 1993 |
|
RU2061752C1 |
Штамм бактерий РSеUDомоNаS рUтIDа - 106 - деструктор диметилфенилкарбинола и фенола | 1990 |
|
SU1759794A1 |
Штамм бактерий РSеUDомоNаS рUтIDа - деструктор ароматических соединений и окиси мезитила | 1991 |
|
SU1792925A1 |
Штамм бактерий РSеUDомоNаS pSeUDoaLcaLIGeNeS, используемый для очистки сточных вод от ароматических соединений | 1988 |
|
SU1597346A1 |
Штамм бактерий ВRеVIвастеRIUм Sp., используемый для очистки сточных вод от акриламида и акриловой кислоты | 1989 |
|
SU1752727A1 |
Штамм бактерий RноDососсUS RноDоснRоUS - продуцент нитрилгидратазы | 1990 |
|
SU1731814A1 |
Способ получения биокатализатора в полисахаридном носителе | 1990 |
|
SU1742330A1 |
ГАЗОХРОМАТОГРАФИЧЕСКАЯ КАПИЛЛЯРНАЯ КОЛОНКА | 1992 |
|
RU2045062C1 |
Использование: изобретение относится к микробиологии. Сущность изобретения: предложен штамм бактерий Pseudomonas species ВКПМ В-6563, утилизирующий эфиры жирных спиртов и полиэтиленгликолей, которые широко применяются в промышленности и быту и являются наиболее распространенными загрязнителями окружающей среды. Предлагаемый штамм разрушает оксиэтилированные спирты в концентрации 500-1000 мг/л на 76-98%, при этом деструкции подвергаются как углеводородная, так и полиэтиленгликолевая часть молекулы. 1 табл.
Штамм бактерий Pseudomonas species ВКПМ В-6563 деструктор оксиэтилированных спиртов.
Печь для непрерывного получения сернистого натрия | 1921 |
|
SU1A1 |
Штамм бактерий РSеUDомоNаS меNDосINа, используемый для очистки сточных вод от сульфонола, синтамида и синтанола | 1989 |
|
SU1640155A1 |
Способ гальванического снятия позолоты с серебряных изделий без заметного изменения их формы | 1923 |
|
SU12A1 |
Аппарат для очищения воды при помощи химических реактивов | 1917 |
|
SU2A1 |
Скипина И.М., Хамитов Б.Р., Чирко Е.П | |||
Печь-кухня, могущая работать, как самостоятельно, так и в комбинации с разного рода нагревательными приборами | 1921 |
|
SU10A1 |
Актуальные проблемы современной биологии: Материалы зональной конференции молодых ученых-биологов | |||
- Казань, 1980, с | |||
Топочная решетка для многозольного топлива | 1923 |
|
SU133A1 |
Веялка-сортировка | 1926 |
|
SU7214A1 |
Авторы
Даты
1997-07-10—Публикация
1993-07-30—Подача